Роль светового десинхроноза в развитии метаболических нарушений у крыс породы Wistar в эксперименте
Автор: Зарубина Елена Григорьевна, Грибанов Игорь Андреевич
Журнал: Вестник медицинского института "РЕАВИЗ": реабилитация, врач и здоровье @vestnik-reaviz
Рубрика: Клиническая медицина
Статья в выпуске: 1 (43), 2020 года.
Бесплатный доступ
Проводилось экспериментальное моделирование светового десинхроноза на 60 крысах самцах породы Wistar в возрасте 6 месяцев, массой 280-300 г для изучения его влияния на углеводный и жировой обмен. Установлено, что длительное нахождение крыс в условиях световой депривации приводит к выраженным нарушениям обменных процессов, приводящих к формированию гиперхолестеринемии и гипергликемии у опытной группы животных.
Световой десинхроноз, жировой обмен, углеводный обмен
Короткий адрес: https://sciup.org/143172304
IDR: 143172304
Текст научной статьи Роль светового десинхроноза в развитии метаболических нарушений у крыс породы Wistar в эксперименте
Биологические ритмы организма неразрывно связаны с воздействиями внешней среды. При этом собственные эндогенные биоритмы организма – это фон, на котором развертывается картина жизнедеятельности и который не обеспечивает последней, если она непрерывно не активируется импульсами из окружающей среды [1–5]. Установлено влияние циркадных ритмов млекопитающих на все аспекты физиологии и поведения, включая циклы сна и бодрствования, регуляцию температуры тела, активность почек, регуляцию работы желудочно-кишечного тракта [6]. В настоящее время рядом экспериментальных и клинических исследований подтверждено патологическое влияние нарушенных эндогенных биологических ритмов на синтез гормонов, качество и структуру сна, отмечались корреляции между нарушением биологических ритмов и снижением продолжительности жизни, а также увеличением риска развития злокачественных заболеваний [6–10].
В связи с этим вопросы, связанные с изучением процессов, развивающихся на фоне десинхроноза являются актуальной проблемой здравоохранения.
Целью данного исследования стало изучение влияния световой депривации на углеводный и жировой обмен в эксперименте.
Материал и методы
Исследование было выполнено на 60 крысах-самцах породы Wistar в возрасте 6 месяцев, массой 280–300 г, с учётом правил лабораторной практики в РФ (РФ ГОСТ Р-53434-2009, принципы надлежащей лабораторной практики, 2010) и директив Европейской Конвенции по защите позвоночных животных (Strasbourg, 1986). Все животные, включенные в эксперимет, случайным способом были разделены на 2 группы по 30 животных: основную и контрольную.
Группа контроля содержалась по 5 особей в клетке в стандартных условиях при естественном световом режиме. Питание осуществлялось гранулированным сбалансированным кормом (стандартный рацион) со свободным доступом к воде и пище. Животные содержались в виварии при относительной влажности воздуха 50–65 % и температуре 20–25 °С.
Опытная группа содержалась в тех же условиях вивария. Однако, для индукции экспериментального десинхроноза животные опытной группы, в отличие от группы контроля круглосуточно находились при искусственном освещении 150 LX (Замощина T.A., 2000).
До включения в эксперимент, в целях адаптации к условиям содержания все подопытные животные были помещены в условия контрольной группы на 10 дней.
Исследование проводилось в весенний период 2017–2018 года (начиная с марта на протяжении 3 месяцев). Все процедуры с животными выполнялись в утренние часы (с 9:00 до 11:00 местного времени) согласно правилам и рекомендациям гуманного обращения с животными, используемым для экспериментальных и иных научных целей (РФ ГОСТ Р-53434-2009).
Полученные данные и их обсуждение
Было установлено, что у опытной группы крыс через 2 месяца световой депривации, по сравнению с группой контроля, отмечалось достоверное ( р ≤ 0,001) повышение уровня глюкозы в крови. При этом к 3-му месяцу наблюдения это повышение достигало уже 30,2 % ( р ≤ 0,001) от исходного уровня (табл. 1).
Подобное повышение уровня глюкозы у животных, находящихся в условиях круглосуточного освещения, возможно, было связано с угнетением продукции мелатонина и снижения его регуляторного влияния на углеводный обмен. Это происходило, по-видимому, из-за того, что гепатоциты и адипоциты имеют рецепторы к мелатонину. Через эти рецепторы эпифизарный гормон фосфорилирует и активирует инсулиновые рецепторы, определяя тем самым чувствительность печени и жировой ткани к инсулину и, соответственно, влияя на плазменный уровень глюкозы. Можно предположить, что измененный под воздействием постоянного освещения суточный ритм секреции мелатонина приводит к уменьшению числа активированных рецепторов, что, в свою очередь, снижает чувствительность гепатоцитов и адипоцитов к инсулину, и приводит к инсулинорезистентности и по- вышению уровня глюкозы в крови. Кроме этого к нарушению углеводного обмена могло привести и зарегистрированное нами нарушение ритмики питания и увеличение объема потребляемого корма у 100 % животных опытной группы, связанное с увеличением продолжительности бодрствования.
Результаты изучения уровня триглицеридов и общего холестерина у подопытных животных также выявили разницу в показателях основной и контрольной групп (табл. 2).
Описанный выше механизм с большой дозой вероятности является причиной нарушения также и жирового обмена у участвующих в эксперименте животных. Помимо этого, изменение уровня триглицеридов стимулируется повышенным потреблением корма, поскольку триглицериды поступают в организм как с кормом (экзогенный путь), так и образуются в самом организме из углеводов, белков, если они поступают в избытке в составе пищи.
Выводы
Таким образом на основании полученных данных можно сделать вывод о том, что длительное нарушение ритмов сна и бодрствования на фоне световой депривации повышает риск развития нарушений углеводного и жирового обмена, что может стать причиной развития метаболического синдрома.
Таблица 1
Уровень глюкозы в крови основной и контрольной группах крыс породы Wistar (ммоль/л)
Сроки наблюдения |
Контрольная группа, n = 30 |
Опытная группа, n = 30 |
Динамика показателя опытной группы по сравнению с группой контроля, % |
р между группами |
|
n |
Значение |
||||
Исходные данные |
4,2 ± 0,3 |
30 |
4,3 ± 0,3 |
≥ 0,05 |
|
Через 10 дней |
4,4 ± 0,2 |
30 |
4,5 ± 0,3 |
≥ 0,05 |
|
Через 1 месяц |
4,2 ± 0,3 |
30 |
4,6 ± 0,2 |
≥ 0,05 |
|
Через 2 месяца |
4,2 ± 0,3 |
30 |
5,2 ± 0,2 |
+ 20,9 |
≤ 0,001 |
Через 3 месяца |
4,3 ± 0,2 |
30 |
5,6 ± 0,3 |
+ 30,2 |
≤ 0,001 |
Таблица 2
Уровень триглицеридов в крови основной и контрольной групп крыс породы Wistar (ммоль/л)
Сроки наблюдения |
Контрольная группа, n = 30 |
Опытная группа, n = 30 |
Динамика показателя опытной группы по сравнению с группой контроля, % |
р между группами |
|
n |
Значение |
||||
Исходные данные |
0,91 ± 0,03 |
30 |
0,90 ± 0,03 |
≥ 0,05 |
|
Через 10 дней |
0,92 ± 0,05 |
30 |
0,93 ± 0,03 |
≥ 0,05 |
|
Через 1 месяц |
0,90 ± 0,04 |
8 |
1,03 ± 0,04 |
+14,4 |
≤ 0,05 |
22 |
0,93 ± 0,07 |
– |
≥ 0,05 |
||
Через 2 месяца |
0,91 ± 0,06 |
14 |
1,12 ± 0,03 |
+16,5 |
≤ 0,05 |
16 |
0,93 ± 0,03 |
– |
≥ 0,05 |
||
Через 3 месяца |
0,91 ± 0,05 |
17 |
1,16 ± 0,06 |
+27,5 |
≤ 0,01 |
13 |
1,05 ± 0,04 |
+15,4 |
≤ 0,05 |
Таблица 3
Уровень общего холестерина в крови основной и контрольной групп крыс породы Wistar (ммоль/л)
Сроки наблюдения |
Контрольная группа, n = 30 |
Опытная группа, n = 30 |
Динамика показателя опытной группы по сравнению с группой контроля, % |
р между группами |
|
n |
Значение |
||||
Исходные данные |
1,47 ± 0,04 |
30 |
1,45 ± 0,03 |
≥ 0,05 |
|
Через 10 дней |
1,46 ± 0,03 |
5 25 |
1,84 ± 0,06 1,49 ± 0,03 |
+26,9 |
≥ 0,05 |
Через 1 месяц |
1,48 ± 0,03 |
8 22 |
2,03 ± 0,04 1,53 ± 0,05 |
+40,0 |
≤ 0,05 ≥ 0,05 |
Через 2 месяца |
1,47 ± 0,02 |
14 16 |
2,34 ± 0,07 1,54 ± 0,04 |
+61,4 |
≤ 0,05 ≥ 0,05 |
Через 3 месяца |
1,48 ± 0,04 |
17 13 |
2,65 ± 0,07 1,55 ± 0,06 |
+82,8 |
≤ 0,01 ≤ 0,05 |
Список литературы Роль светового десинхроноза в развитии метаболических нарушений у крыс породы Wistar в эксперименте
- Halberg F. Chronobiology // Ann Rev Physiol. - 1969. - № 31. - S. 675-725.
- Halberg F. Chronoastrobiology: Vernadsky's future science // Mat. III Mezhdunar. konf. "Bolezni civilizacii v aspekte ucheniya V.I. Vernadskogo". - M.: Izd-vo RUDN, 2005. - S. 4-23.
- Reinberg A. Rytmes des fonctions corticosurrénaliennes et systémes circadiehs. Sympos Inernat Neuroendocrinol. 1966. Р. 75-89.
- Agadzhanyan N.A. Ritmy' zhizni i problema adaptacii // Cirkadny'e ritmy' cheloveka i zhivotny'x. - Frunze: Ilim, 1975. - S. 11-14.
- Alyakrinskij B.S. Osnovy΄nauchnoj organizacii truda i otdy΄xa kosmonavtov. - M.: Medicina, 1975. - 208 s.
- Reppert S.M., Weaver D.R. (2002) Coordination of circadian timing in mammals. Nature 418:935-941
- Penev P.D., Kolker D.E., Zee P.C., Turek F.W. (1998) Chronic circadian desynchronization decreases the survival of animals with cardiomyopathic heart disease. Am J Physiol 275:H2334-H2337
- Fu L., Pelicano H., Liu J., Huang P., Lee C. (2002) The circadian gene Period2 plays an important role in tumor suppression and DNA damage response in vivo. Cell 111:41-50
- Filipski E., King V.M., Li X., Granda T.G., Mormont M.C., Claustrat B., Hastings M.H., Levi F. (2003) Disruption of circadian coordination accelerates malignant growth in mice. Pathol Biol 51:216-219
- Davis S., Mirick D.K. (2006) Circadian disruption, shift work and the risk of cancer: a summary of the evidence and studies in Seattle. Cancer Causes Control 17:539-545