Рост проростков гречихи обыкновенной (Fagopyrum esculentum Moench) и накопление первичных и вторичных метаболитов при различных условиях минерального питания

Автор: Цыпурская Е.В., Казанцева В.В., Фесенко А.Н., Загоскина Н.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Физиология адаптации

Статья в выпуске: 5 т.54, 2019 года.

Бесплатный доступ

Гречиха обыкновенная ( Fagopyrum esculentum Moench) - важная сельскохозяйственная культура. Помимо уникальных пищевых характеристик, для нее характерно образование различных фенольных соединений, в том числе рутина, широко применяемого в медицине. Поскольку фенольные соединения обладают высокой биологической и антиоксидантной активностью, в том числе рассматриваются как потенциальные компоненты функционального питания, изучение их накопления на начальных этапах онтогенеза растений представляет практический интерес. В представленной работе мы показали регуляторное действие макро- и микроэлементов на рост растений и накопление первичных и вторичных метаболитов у гречихи. Впервые охарактеризовано образование первичных и вторичных метаболитов в надземных органах нового и перспективного российского сорта гречихи обыкновенной Даша, внесенного в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию в Российской Федерации, в 2018 году. Целью работы было изучение начальных этапов онтогенеза проростков гречихи обыкновенной, включая оценку их морфофизиологических характеристик в условиях различной обеспеченности элементами минерального питания, а также накопления в семядольных листьях фотосинтетических пигментов, сахаров и фенольных соединений. Объектом исследования служили проростки гречихи обыкновенной сортов Девятка и Даша селекции ВНИИ зернобобовых культур (г. Орел), внесенных в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию в Российской Федерации, соответственно в 2004 и 2018 году. Растения выращивали в лабораторных условиях рулонным способом на воде (контроль) и питательной среде Хогланда-Арнона (опыт) при 24 °C и 16-часовом освещении. Определяли высоту гипокотилей, длину корней и массу семядольных листьев проростков. Оводненность растительного материала анализировали после его высушивания до постоянной массы при температуре 70 °C. Спектрофотометрическим методом определяли количество хлорофиллов a и b (при λ = 665 нм и λ = 649 нм), каротиноидов (λ = 440 нм), сахаров (λ = 490 нм), суммы растворимых фенольных соединений (λ = 725 нм), флавоноидов (λ = 415 нм) и фенилпропаноидов (λ = 330 нм) в этанольных экстрактах, полученных из семядольных листьев проростков разного возраста. Выращивание гречихи на питательной среде Хогланда-Арнона способствовало более быстрому росту надземных органов по сравнению с выращиванием на воде. Рост подземных органов в обоих случаях был одинаковым. Выявлены различия в накоплении фотосинтетических пигментов (хлорофилла a и b, каротиноидов) и сахаров в семядольных листьях у проростков: в опытных вариантах в большинстве случаев эти показатели были выше, чем в контрольных. Накопления фенольных соединений не столь явно зависело от условий минерального питания. Исключением было содержание фенилпропаноидов, которое в семядольных листьях проростков, выращенных на питательной среде, изменялось в большей степени по сравнению с контролем и достигало высоких значений в конце периода исследования. Следует также отметить, что при выращивании проростков гречихи сорта Даша на питательной среде в их семядольных листьях на поздних этапах онтогенеза отмечалось более значительное накопление пигментов (на 20 %, р ≤ 0,05), сахаров (на 33 %, р ≤ 0,05) и фенольных соединений (на 35 %, р ≤ 0,05) по сравнению с сортом Девятка. Таким образом, количество минеральных элементов имеет важное значение для начальных этапов онтогенеза растений гречихи обыкновенной. Более быстрый рост проростков и накопление первичных и вторичных метаболитов в их листьях характерны для опытных вариантов по сравнению с контролем. Использование различных условий минерального питания дает возможность регулировать рост и развитие растений, а также накопление в них различных метаболитов.

Еще

Гречиха, проростки, онтогенез, минеральное питание, пигменты, сахара, фенольные соединения, фенилпропаноиды, флавоноиды

Короткий адрес: https://sciup.org/142226263

IDR: 142226263   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2019.5.946rus

Список литературы Рост проростков гречихи обыкновенной (Fagopyrum esculentum Moench) и накопление первичных и вторичных метаболитов при различных условиях минерального питания

  • Hopkins W.G., Hüner N.P.A. Introduction to plant physiology. 4rd Edition. John Wiley & Sons, Inc., NY, 2008.
  • Bouman F., Boesewinkel F.D. The seed: structure and function. In: Seed development and germination /K. Jaime, G. Gad (eds.). CRC Press, 2017.
  • Chauhan B.S., Johnson D.E. Influence of environmental factors on seed germination and seedling emergence of eclipta (Eclipta prostrata) in a tropical environment. Weed Science, 2008, 56(3): 383-388 ( ). DOI: 10.1614/WS-07-154.1
  • Алиева З.М., Самедова Н.Х., Юсуфов А.Г. Реакция растений на стрессы на начальных этапах онтогенеза. Аридные экосистемы, 2013, 19(1): 54.
  • Baxter A., Mittler R., Suzuki N. ROS as key players in plant stress signalling. Journal of Experimental Botany, 2013, 65(5): 1229-1240 ( ). DOI: 10.1093/jxb/ert375
  • Запрометов М.Н. Фенольные соединения. Распространение, метаболизм и функции в растениях. М., 1993.
  • Cheynier V., Comte G., Davies K.M., Lattanzio V., Martens S. Plant phenolics: recent advances on their biosynthesis, genetics, and ecophysiology. Plant Physiology and Biochemistry, 2013, 72: 1-20 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.plaphy.2013.05.009
  • Nannipieri P., Badalucco L. Biological processes. In: Handbook of processes and modelling in the soil-plant system /D.K. Benbi, R. Nieder (eds.). Haworth, Binghamton, 2003.
  • Волынец А.П. Фенольные соединения в жизнедеятельности растений. Минск, 2013.
  • Казанцева В.В., Гончарук Е.А., Фесенко А.Н., Широкова А.В., Загоскина Н.В. Особенности образования фенольных соединений в проростках гречихи (Fagopyrum esculentum Moench) различных сортов. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(5): 611-619 ( ).
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2015.5.611rus
  • Mierziak J., Kostyn K., Kulma A. Flavonoids as important molecules of plant interactions with the environment. molecules, 2014, 19(10): 16240-16265 ( ).
  • DOI: 10.3390/molecules191016240
  • Kumar V., Suman U., Rubal, Yadav S.K. Flavonoid secondary metabolite: biosynthesis and role in growth and development in plants. In: Recent trends and techniques in plant metabolic engineering /S. Yadav, V. Kumar, S. Singh (eds.). Springer, Singapore, 2018: 19-45 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-981-13-2251-8_2
  • Kreft M. Buckwheat phenolic metabolites in health and disease. Nutrition Research Reviews, 2016, 29(1): 30-39 ( ).
  • DOI: 10.1017/s0954422415000190
  • Suzuki T., Morishita T., Kim S.J., Park S.U., Woo S.H., Noda T., Takigawa S. Physiological roles of rutin in the buckwheat plant. Japan Agricultural Research Quarterly: JARQ, 2015, 49(1): 37-43 ( ).
  • DOI: 10.6090/jarq.49.37
  • Высочина Г.И. Фенольные соединения в систематике и филогении семейства гречишных. Новосибирск, 2004.
  • Campbell C.G. Buckwheat: Fagopyrum esculentum Moench. Research Ltd., Morden, Mantitoba, 1997.
  • Koyama M., Nakamura C., Nakamura K. Changes in phenols contents from buckwheat sprouts during growth stage. Journal of Food Science and Technology, 2013, 50(1): 86-93 ( ).
  • DOI: 10.1007/s13197-011-0316-1
  • Nam T.G., Lee S.M., Park J.H., Kim D.O., Baek N.I., Eom S.H. Flavonoid analysis of buckwheat sprouts. Food Chemistry, 2015, 170: 97-101 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.foodchem.2014.08.067
  • Сорт Девятка®. Режим доступа: https://vniizbk.ru/ru/2017-01-23-11-23-52.html. Дата об-ращения: 21.10.2019.
  • Сорт Даша®. Режим доступа: https://vniizbk.ru/newvarieties.html#dasha. Дата обращения 21.10.2019.
  • Hoagland D.R., Arnon D.I. The water-culture method for growing plants without soil. In: Circular. California agricultural experiment station. University of California, Davis Libraries, 1950.
  • Шлык А.А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев. В сб.: Биохимические методы в физиологии растений. М., 1971: 154-170.
  • Olenichenko N.A., Zagoskina N.V., Astakhova N.V., Trunova T.I., Kuznetsov Y.V. Primary and secondary metabolism of winter wheat under cold hardening and treatment with antioxidants. Applied Biochemistry and Microbiology, 2008, 44(5): 589-594 ( ).
  • DOI: 10.1134/S0003683808050141
  • DuBois M., Gilles K.A., Hamilton J.K., Rebers P.T., Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Analytical Chemistry, 1956, 28(3): 350-356 ( ).
  • DOI: 10.1021/ac60111a017
  • Мартыненко Г.Е., Фесенко Н.В., Фесенко А.Н., Гуринович И.А. Создание холодостойкого детерминантного сорта гречихи Девятка. Вестник аграрной науки, 2010, 25(4): 85-87.
  • Фесенко А.Н., Амелин А.В., Фесенко И.Н., Бирюкова О.В., Заикин В.В. Новый сорт гречихи Даша. Земледелие, 2018, 4: 36-38 ( ).
  • DOI: 10.24411/0044-3913-2018-10411
  • Мокроносов А.Т., Гавриленко В.Ф., Жигалова Т.В. Фотосинтез. Физиолого-экологические и биохимические аспекты. М., 2006.
  • Андрианова Ю.Е., Тарчевский И.А. Хлорофилл и продуктивность растений. М., 2000.
  • Nisar N., Li L., Lu S., Khin N.C., Pogson B.J. Carotenoid metabolism in plants. Molecular Plant, 2015, 8(1): 68-82 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.molp.2014.12.007
  • Sun T., Yuan H., Cao H., Yazdani M., Tadmor Y., Li L. Carotenoid metabolism in plants: the role of plastids. Molecular Plant, 2018, 11(1): 58-74 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.molp.2017.09.010
  • Stange C. Carotenoids in nature: biosynthesis, regulation and function. Springer International Publishing, Switzerland, 2016 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-3-319-39126-7
  • Eveland A.L., Jackson D.P. Sugars, signaling and plant development. Journal of Experimental Botany, 2011, 63(9): 3367-3377 ( ).
  • DOI: 10.1093/jxb/err379
  • Zaprometov M.N., Nikolaeva T.N. Chloroplasts isolated from kidney bean leaves are capable of phenolic compound biosynthesis. Russian Journal of Plant Physiology, 2003, 50(5): 623-626 (doi: 10.1023/A:1025683922953).
  • Нагорный В.Д., Арималала Р.Н. Влияние серы на содержание пигментов в листьях и накопление сухого вещества растениями картофеля в условиях вегетационного опыта. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство, 2016, 3: 7-14.
  • Sharafzadeh S., Khosh-Khui M., Javidnia K. Effect of nutrients on essential oil components, pigments and total phenolic content of lemon balm (Melissa officinalis L.). Advances in Environmental Biology, 2011, 5(4): 639-647.
Еще
Статья научная