Снежные плесени: развитие представлений и способы защиты растений

Автор: Ткаченко О.Б., Овсянкина А.В., Щуковская А.Г.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы, итоги

Статья в выпуске: 1 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Возбудители снежных плесеней - низкотемпературные грибные и грибоподобные организмы, которые могут поражать не только травянистые озимые и многолетние растения, но и древесные формы. Как правило, патогены инфицируют культуры осенью, развиваются под снежным покровом и в начале весны, когда сохраняются пониженные температуры. В обзоре показана история возникновения терминологии, используемой при изучении патогенных низкотемпературных грибов, приведены названия различных снежных плесеней и их возбудителей в России. Подробно представлена история работ и современное состояние методов борьбы с возбудителями снежной плесени: агрохимических, химических, биологических и селекционных. В качестве примеров приводятся исследования, проведенные в различных регионах и странах: в Северной Америке (США, Канада), Северной Европе (Швеция, Норвегия, Финляндия), Азии (Япония). Отдельное внимание уделено отечественным работам. К агрохимическим методам, способствующим уменьшению поражения растений снежными плесенями, относятся севообороты с культурами, которые не принадлежат к числу хозяев для возбудителей снежной плесени; глубокая вспашка; ранний или очень поздний сев; размещение материалов черного цвета, поглощающих солнечную энергию, на снегу, что способствует его быстрому таянию весной; ежемесячные подкормки некоторыми компостами. Такой химический метод, как протравливание семян, испытан против снежной плесени и широко используется для борьбы с фузариозной инфекцией семян, вызываемой Microdochium nivale в северной Европе. В России против тифулеза озимых зерновых культур [ Typhula incarnata и T. idahoensis (син. T. ishikariensis )] рекомендовалось протравливание озимых зерновых байтаном универсалом, байтаном, бенлатом (фундазолом), гранозаном и пентиурамом. Опрыскивание фунгицидами экономически выгодно в годы с сильным поражением снежной плесенью, однако эффективность фунгицидов против разных видов возбудителей неодинакова. В статье представлены примеры препаратов, используемых при борьбе с различными видами снежной плесени. При разработке биологических приемов борьбы со снежной плесенью в качестве антагонистов могут использоваться как мезофиллы в период состояния покоя у возбудителей снежных плесеней в летние месяцы, так и низкотемпературные биоагенты, активные во время развития патогенов. В ряде работ против снежных плесеней, вызываемых Typhula spp., использовали как естественные супрессоры (например, компосты), так и антагонистические организмы. Целенаправленной селекции по устойчивости растений к снежным плесеням в России не проводили. Тем не менее, был выполнен ряд исследований по выявлению видов зерновых, устойчивых к различным видам снежных плесеней. Так, на инфекционном фоне проведена иммунологическая оценка 500 сортообразцов мировой коллекции ВИР (г. Санкт-Петербург) и сортов отечественной селекции и отобраны формы, обладающие устойчивостью: Шатиловская тетра, Популяция I-82 тетра, Сибирская крупнозернистая, Таежная, Кировская 89, Вятка 2, Дымка, Росинка, Илим, Фаленская 4, Пурга, Ф4-92, Чулпан 3, Короткостебельная 6, Харьковская 88, Татарская 1, Безенчукская 88, Волхова, Таловская 29; LAD-287 St-2614, Antonnisnie, Leelondzkie Kartowe № 1, Leelondzkie Krotnoslomix х Baltycnie (Польша), Epos, Rerus (ГДР), Inzucht 74/2, Inzucht 108/8 (Швеция), к-10953 (Финляндия), Feniks (Бельгия), к-11385 (Югославия), к-11150, к-11389 (Португалия), к-11306 (Аргентина), к-11179, к-11180 (США), к-11388 (Таджикистан), к-11398 (Грузия), к-11131 (Азербайджан), Белта тетра (Беларусь), Beve (Украина).

Еще

Низкотемпературные грибы, снежная плесень, выпревание, агротехнический метод, химический метод, биологический метод, селекционный метод

Короткий адрес: https://sciup.org/142133564

IDR: 142133564   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.1.16rus

Список литературы Снежные плесени: развитие представлений и способы защиты растений

  • Matsumoto N. Snow molds: a group of fungi that prevail under snow. Minireview. Microbes Environ., 2009, 24(1): 14-20 ( ) DOI: 10.1264/jsme2.ME09101
  • Hoshino T., Xiao N., Tkachenko O.B. Cold adaptation in phytopathogenic fungi causing snow molds. Mycoscience, 2009, 50(1): 26-38 ( ) DOI: 10.1007/S10267-008-0452-2
  • Morita R.Y. Psychrophilic bacteria. Bacteriol. Rev., 1975, 39: 144-167.
  • Hoshino T., Matsumoto N. Cryophilic fungi to denote in the cryosphere. Fungal Biology Reviews, 2012, 26(2-3): 102-105 ( ) DOI: 10.1016/j.fbr.2012.08.003
  • Гуляев В.В. Выпревание сеянцев сосны в лесных питомниках. Труды Татарской лесной опытной станции (Казань), 1948, 9: 44-49.
  • Кузьмина Н.А., Кузьмин С.Р. Устойчивость сосны обыкновенной разного происхождения к грибным патогенам в географических культурах Приангарья. Хвойные бореальной зоны, 2007, XXIV(4-5): 454-460.
  • Туманов И.И., Бородина И.Н., Олейникова Т.В. Роль снежного покрова при перезимовке озимых посевов (выпревание). Труды по прикладной ботанике, генетике, селекции, 1935, 3(6): 3-57.
  • Тупеневич С.М. Выпревание озимых хлебов весной. Труды Всесоюзного научно-исследовательского института защиты растений, 1966, 28: 126-130.
  • Куперман Ф.М., Моисейчик В.А. Выпревание озимых культур. М.-Л., 1977.
  • Данькова Т.Н. Русская сельскохозяйственная терминология конца XX-начала XXI вв. (на материале терминологии растениеводства). Воронеж, 2009.
  • Недолужко А.И. Биологические основы и методы создания исходного материала для селекции садовых хризантем на юге Приморья. Вестник ДВО РАН, 2004, 4: 74-77.
  • Шелепова О.В., Воронкова Т.В., Кондратьева В.В., Данилина Н.Н. Физиолого-биохимические особенности зимующих луковиц тюльпанов в моделируемых условиях выпревания. Физиология и биохимия культурных растений, 2009, 41(5): 384-392.
  • Тупеневич С.М. Снежная плесень при выпревании озимых хлебов весной и обоснование мер борьбы с ней. В сб.: Известия высших курсов по прикладной зоологии и фитопатологии. Л., 1940, 10: 5-108.
  • Hoshino T., Ohgiya S., Shimanuki T., Ishizaki K. Production of low temperature active lipase from the pink snow molds, Microdochium nivale (syn. Fusarium nivale). Biotechnology Letters, 1996, 18(5): 509-510.
  • Nakajima T., Abe J. Environmental factors affecting expression of resistance to pink snow mold caused by Microdochium nivale in winter wheat. Can. J. Bot., 1996, 74(11): 1783-1788 ( ) DOI: 10.1139/b96-215
  • Iriki N., Nakajima T., Kawakami A. Reaction of winter wheat cultivars to artificially inoculated seed-born pink snow mold. Breeding Science, 1992, 52(3): 231-233 ( ) DOI: 10.1270/jsbbs.52.231
  • Hsiang T., Matsumoto N., Millett S.M. Biology and management of typhula snow mold of turfgrass. Plant Disease, 1999, 83(9): 788-798 ( ) DOI: 10.1094/PDIS.1999.83.9.788
  • Vergara G.V., Bughrara S.S., Jung G. Genetic variability of grey snow mould (Typhula incarnata). Mycological Research, 2004, 108(11): 1283-1290.
  • Smith J.D. Snow molds of winter cereals: guide for diagnosis, culture, and pathogenicity. Can. J. Plant Pathol., 1981, 3(1): 15-25 ( ) DOI: 10.1080/07060668109501398
  • Gaudet D.A., Bhalla M.K. Survey for snow mold diseases of winter cereals in central and northern Alberta. Can. Plant Dis. Surv., 1988, 68(1): 15-18.
  • Groves J.W., Bowerman C.A. Sclerotinia borealis in Canada. Can. J. Bot., 1955, 33: 591-594.
  • Tomiyama K. Studies on the snow blight disease of winter cereals. Rep. Hokkaido Agric. Exp. Stn., 1955, 47(1): 1-234 (in Japanese with English summary).
  • Saito I. Sclerotinia nivalis, sp. nov., the pathogen of snow mold of herbaceous dicots in Northern Japan. Mycoscience, 1997, 38: 227-236 ( ) DOI: 10.1007/BF02460857
  • Lips P.E. A new species of Pythium isolated from wheat beneath snow in Washington. Mycologia, 1980, 72(6): 1127-1133 ( ) DOI: 10.2307/3759566
  • Lips P.E., Bruehl G.W. Infectivity of Pythium spp. in snow rot of wheat. Phytopathology, 1980, 70: 723-726.
  • Takenaka S., Arai M. Dynamics of three snow mold pathogens Pythium paddicum, Pythium iwayamai, and Typhula incarnata in barley plant tissues. Can. J. Bot., 1993, 71: 757-763 ( ) DOI: 10.1139/b93-087
  • Ткаченко О.Б. Распространение и круг хозяев наиболее опасных возбудителей снежных плесеней -склероциальных грибов Sclerotinia borealis, S. nivalis и Typhula ishikariensis. Бюллетень Главного ботанического сада (М.), 2012, 198(4): 63-70.
  • Hoshino T., Tkachenko O.B., Tronsmo A.M., Kawakami A., Morita N., Ohgiya S., Ishizaki K. Temperature sensitivity and freezing resistance among isolates of Typhula ishikariensis from Russia. Būvisindi, Icel. Agr. Sci., 2001, 14: 61-65.
  • Хохряков М. Малоизвестная болезнь озимых хлебов (склеротиния). Защита растений, 1935, 4: 94-97.
  • Fisher W.R., Bruehl G.W. Efficacy of various blackening agents in hastening snow melt, a possible tool in snow mold control. Phytopathology, 1964, 54(12): 1432.
  • Bruehl G.W., Sprague R., Fischer W.R., Nagamitsu M., Nelson W.L., Vogel O.A. Snow molds of winter wheat in Washington. Washington Agric. Exp. Stn. Bull., 1966, 677: 1-21.
  • Kotter C.M. Ash speeds melt to aid grain growers. Western Hay and Grain Grower, 1979, January: 4-6.
  • Gossen B.D., Hsiang T., Murray T.D. Managing snow mold disease of winter cereals and turf. Plant-microbe interactions at low temperature under snow. Chapter 2. Sapporo, Hokkaido National Agricultural Experiment Station, 2001: 13-21.
  • Holston C.S. Observation and experiments on snow mold of winter wheat in Washington state. Plant Dis. Rep., 1953, 37: 354-359.
  • Loveless A.R. Observations on the biology of clover rot. Ann. Appl. Biol., 1951, 38: 642-664.
  • Gould Ch.J., Byther R.S. Diseases of tulips. Washington State University Cooperative Extension. Extension Bull, 1979, 711.
  • McKey H.C., Reader J.M. Snow mold damage in Idaho's winter wheat. Idaho Agric. Exp. Stn. Bull., 1953, 200.
  • Bruehl G.W. Effect of plant size on resistance to snow mold of winter wheat. Plant Dis. Rep., 1967, 51: 815-819.
  • Bruehl G.W., Cunfer B.M. Physiologic and environmental factors that affect the severity of snow mold of wheat. Phytopathology, 1971, 61: 792-798 ( ) DOI: 10.1094/Phyto-61-792
  • Smith J.D., Jackson N., Woolhouse A.R. Fungal diseases of amenity turf grasses. NY, 1989.
  • Nelson E.B. Craft C.M. Suppression of Typhula blight with top-dressing amended with composts and organic fertilizers. Biol. Cult. Tests, 1992, 7: 107.
  • Huber D.M., McKay H.C. Effect of temperature, crop, and depth of burial on the survival of Typhula idahoensis sclerotia. Phytopathology, 1968, 58: 961-962.
  • Lawton M.B., Burpee L.L. Effect of rate and frequency of application of Typhula phacorrhiza on biological control of Typhula blight of creeping bentgrass. Phytopathology, 1990, 80: 70-73 ( ) DOI: 10.1094/Phyto-80-70
  • Sprague R. Wheat snow mold in Eastern Washington 1955 to 1956. Plant Dis. Rep., 1956, 40: 640-642.
  • Olvang H. Chemical control of winter damaging fungi in cereals. Norwegian J. Agric. Sci., 1992, 7: 55-61.
  • Политыко П.М. Тифулез озимых зерновых. Защита растений, 1988, 12: 18.
  • Hoftun H. Lagring av purre: I. Verknad av sortar og ved hausting. Meldinger fra Norges Landbrukshøgskole, 1978, 57: 1-26.
  • Haegermark U. Några broddehandlingeförsök på Hösten i hostvelte med benomyl och triadimefon. Växtskyddsnotiser, 1979, 43: 138-139.
  • Ebenebe C., Fehrman H. Evolution of a number of systemic fungicides for the control of Typhula incarnata in winter barley. PflKrankh, 1974, 12: 711-716.
  • Smith J.D., Stynes B.A., Moore K.J. Benomyl stimulated growth of a Basidiomicetes on turf. Plant Disease Reporter, 1970, 54: 774-775.
  • Hossfeld R. Förderung der Typhula -Fäule an Wintergerate durch Rinsatz von Fungiziden zur Halmbruchbekampfung. Nachrichtenblatt des Deutschen Pflanzenschutzdienstes, 1974, 26: 19.
  • Cavelier M., Maroquin C. Interférence d'une epidemie provoquée pour la premiére foir en Belgique par Typhula incarnata Lasch ex Fr. et d'une recrudescence de la jaunisse nanisante de l'otge sur encourgeon. Caractéresation des symptoms at evaluation de leur incidence respective sur les rendements. Parasitica, 1978, 34: 277-295.
  • Francis B.M. Toxic Substances in the Environment. NY, 1994.
  • Vargas J.M. Management of Turfgrass diseases. CRC Press, Inc., Boca Raton, Florida, USA, 1994.
  • Fushtey S.G., Frank R. Distribution of mercury residues from the use of mercurial fungicides on golf course greens. Can. J. Soil Sci., 1981, 61: 525-527 ( ) DOI: 10.4141/cjss81-060
  • Matthews S.L., McCracken I.R., Lonergau G. Mercury contamination of gold courses due to pesticide use. Bull. Environ. Contain. Toxicol., 1995, 55: 390-397.
  • Список пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации (Приложение к журналу «Защита и карантин растений»). Защита и карантин растений, 2014, 4.
  • Jamalainen E.A., Fenstermacher J.M. Typhula blight, its cause, epidemiology and control. J. Sports Turf Res. Inst., 1969, 45: 6-73.
  • Fushtey S.G. Chemical control of snow mold in bentgrass turf in southern Ontario. Can. Plant. Dis. Surv., 1980, 60: 225-231.
  • Kallio A. Chemical control of snow mold (Sclerotinia borealis) on four varieties of bluegrass (Poa pratensis) in Alaska. Plant Dis. Rep., 1966, 50: 69-72.
  • Saito I., Tkachenko O.B. Low temperature species of Sclerotinia causing plant diseases in winter. Chapter 10. Advances in plant diseases management/Hung-Chang Huang, Surya N. Acharya (eds.). Research Singpost, Kerala, India, 2003: 195-214.
  • Serafinchon A. Snow mold, gray or speckled. Government of Alberta, 2001 (http://www1.agric.gov.ab.ca).
  • Watkins J.E. Turfgrass fungicide trade names. Nebraska Cooperative Extension NF 95-214 (Revised June 1999) (http://ianrpubs.unl.edu/plantdisease/nf214.htm).
  • Левитин М.М., Тютерев С.Л. Грибные болезни зерновых культур. Защита и карантин растений, 2003, 11: 2-46.
  • Серая Л.Г. Возбудитель серой (пятнистой) снежной плесени гриб Typhula ishikariensis S. Imai: биология, экология, патогенез и обоснование приемов защиты. Канд. дис. М., 2001.
  • Сарычева Л.М. Влияние регуляторов роста растений и фунгицидов на патогенез инфекционного выпадения и урожайность озимых зерновых культур. Канд. дис. М., 2010.
  • Костенко Е.С. Совершенствование приемов фитосанитарного мониторинга и защиты газонных травостоев от основных вредных организмов (снежной плесени и жуков щелкунов). Автореф. канд. дис. М., 2012.
  • Frank J.A., Sanders P.L. ICIA5504: a novel, broad-spectrum, systemic turfgrass fungicide. British Crop Protection Conf. «Pests and Diseases». Brighton, U.K, 1994, 2: 871-876.
  • Burpee L.L. Interactions among low-temperature-tolerant fungi: Prelude to biological control. Can. J. Plant Pathol., 1994, 16: 247-250 ( ) DOI: 10.1080/07060669409500762
  • Matsumoto N. Biological control of snow mold. In: Plant cold hardiness/X.P. Li, T. Chen (eds.). Plenum, NY, 1998: 343-350.
  • Nelson E.B., Craft C.M. Supression of Typhula blight with top-dressing amended with composts and organic fertilizers. Biol. Cult. Tests, 1992, 7: 107.
  • Boulter J.I., Boland G.J., Trevors J.T. Assessment of compost for suppression of Fusarium patch (Microdochium nivale) and Typhula Blight (Typhula ishikariensis) snow molds of turfgrass. Biological Control, 2002, 25: 162-172 ( ) DOI: 10.1016/S1049-9644(02)00060-9
  • Nelson E.B. Biological control of turfgrass diseases. Ext. Publ. Inf. Bull. Cornell University, Ithaca, NY, 1992, 220: 78-90.
  • Johansson P.M., Johnsson L., Gerhardson B. Suppression of wheat-seedling diseases caused by Fusarium culmorum and Microdochium nivale using bacterial seed treatment. Plant Pathol., 2003, 52: 219-227 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-3059.2003.00815.x
  • Levendorfs J.P., Eberhard T.H., Levendorfs J.J., Gerhardson B., Hökeberg M. Biological control of snow mould (Microdochium nivale) in winter cereals by Pseudomonas brassicacearum, MA250. BioControl, 2008, 53(4): 651-665.
  • Кузина Е.В., Бурханов Ф.Ф., Давшетшин Т.К., Силищев Н.Н., Логинов О.Н. Биологический метод борьбы со снежной плесенью озимой пшеницы в условиях республики Башкортостан. Аграрная Россия, 2011, 2: 22-24.
  • Harder P.R., Troll J. Antagonism of Trichoderma spp. to sclerotia of Typhula incarnata. Plant Dis. Rep., 1973, 57: 924-926.
  • Matsumoto N., Tajimi A. Preliminary experiments for biological control of snow mold caused by Typhula incarnata and T. ishikariensis. Proc. XV Int. Grassland Congr. Kyoto, Japan, 1985: 787-788.
  • Matsumoto N., Tajimi A. Bacterial flora associated with the snow mold fungi, Typhula incarnata and T. ishikariensis. Ann. Phytopathol. Soc. Japan, 1987, 53: 250-253.
  • Hoshino T., Morita H., Fujiwara M., Higashiyama T., Tkachenko O.B., Saito I., Matsuyama H., Yumoto I. Heat resistant bio-control agents against snow molds (Typhula incarnata and T. ishikariensis) in various materials from several cold regions. Proc. Int. Symp. on identification and use of microbial resources for sustainable agriculture. National Agr. Res. Center for Kyushu Okinawa Region, 2004: 88-97.
  • Burpee L.L., Kaye L.M., Goulty L.G., Lawton M.B. Supression of gray snow mold on creeping bentgrass by an isolate of Typhula phacorrhiza. Plant Disease, 1987, 71: 97-100 ( ) DOI: 10.1094/PD-71-0097
  • Lawton M.B., Burpee L.L. Effect of rate and frequency of application of Typhula phacorrhiza on biological control of Typhula blight of creeping bentgrass. Phytopathology, 1990, 80: 70-73 ( ) DOI: 10.1094/Phyto-80-70
  • Lawton M.B., Burpee L.L., Goulty L.G. Factors influencing the efficacy of a biofungicide control of control of gray snow mold on turfgrass. Proc. Br. Crop Prot. Conf., 1986, 1: 393-398.
  • Matsumoto N., Tajimi A. Biological control of Typhula ishikariensis on perennial ryegrass. Ann. Phytopath. Soc. Jpn., 1992, 58: 741-751 ( ) DOI: 10.3186/jjphytopath.58.741
  • Wu C., Hsiang T., Yang L., Lin L.X. Efficacy of Typhula phacorrhiza as a biocontrol agent of gray snow mould of creeping bentgrass. Can. J. Bot., 1998, 76(7): 1276-1281.
  • Hsiang T., Wu C., Cook S. Residual efficacy of Typhula phacorrhiza as a biocontrol agent of grey snow mold on creeping bentgrass. Can. J. Plant Pathol., 1999, 21(4): 382-387 ( ) DOI: 10.1080/07060669909501175
  • Hsiang T. Diversity and management of snow mold diseases of grasses. Proc. of Int. Workshop «Plant-microbe interactions at low temperature under snow». Sapporo, 1997: 132-142.
  • Hsiang T. Biological control of turfgrass snow molds. GreenMaster, 2000, 35(5): 12-15.
  • Wu C., Hsiang T., Yang L., Lin L.X. Efficacy of Typhula phacorrhiza as a biocontrol agent of gray snow mould of creeping bentgrass. Can. J. Bot., 1998, 76(7): 1276-1281.
  • Wu C., Hsiang T. Mycelial growth, sclerotial production and carbon utilization of three Typhula species. Can. J. Bot., 1999, 77: 312-317 ( ) DOI: 10.1139/cjb-77-2-312
  • Schneider E.F., Seaman W.L. Typhula phacorrhiza on winter wheat. Can. J. Plant Pathol., 1986, 3: 269-276 ( ) DOI: 10.1080/07060668609501799
  • Schneider E.F., Seamen W.L. Saprophytic behavior of three Typhula species on winter wheat substrates. Can. J. Plant Pathol., 1988, 10: 289-296 ( ) DOI: 10.1080/07060668809501702
  • Тазина С.В. Обоснование защиты озимых зерновых культур от инфекционного выпадения растений. Канд. дис. М., 2005.
  • Matsumoto N., Tkachenko O.B., Hoshino T. The pathogenic species of Typhula. In: Low temperature plant microbe interactions under snow. Sapporo, Hokkaido National Agr. Exp. Station, 2001: 49-59.
  • Wong P.T.W., McBeath J.H. Plant protection by cold-adapted fungi. In: Biotechnological applications of cold-adapted organisms/R. Margesin, R. Schinner (eds.). Heidelberg, Germany, 1999: 177.
  • Сheng M., Gay P.A., McBeath J.H. Determination of chitinolitic activity in under differing environmental conditions. In: Proceedings of biocontrol in new millenium: building for the future on past experience/D.M. Huber (ed.). Purdue University Press, West Lafayette, 2001: 57-62.
  • McBeath J.H. Snow mold-plant-antagonist interactions: survival of the fittest under the snow. American Phytopathological Society press, The Plant Health Instructor, 2002 ( ) DOI: 10.1094/PHI-I-2002-1010-01
  • Gaudet D.A., Laroche A. Snow mold-crop-environment interactions. In: Biotechnological applications of cold-adapted organisms. R. Margesin, F. Schinner (eds.). Springer Berlin Heidelberg, 1999: 191-202 ( ) DOI: 10.1007/978-3-642-58607-1_13
  • Smith J.D., Davidson J.G.N. Acremonium boreale n. sp., a sclerotial, low-temperature-tolerant, snow mold antagonist. Can. J. Bot., 1979, 57: 2122-2139 ( ) DOI: 10.1139/b79-265
  • Smith J.D., Gossen B.D. Interaction of Coprinus psychromorbidus, Acremonium boreale and an unidentified low-temperature pathogen of bentgrass turf. Proc. 10th Ann. Plant Pathol. Soc. Alberta, Brooks, AB, Canada, 1989.
  • Щуковская А.Г., Ткаченко О.Б., Шестепёров А.А. Микогельминты озимой пшеницы -потенциальные биоагенты гриба Microdochium nivale. Мат. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2012, вып. 13: 466-468.
  • Щуковская А.Г., Ткаченко О.Б., Шестепёров А.А. Нематоды озимой пшеницы внешне здоровой и пораженной розовой снежной плесенью озимой пшеницы на динамику численности нематод разных экологических групп. Мат. Межд. науч. конф. «Современные проблемы общей паразитологии». М., 2012: 397-401.
  • Щуковская А.Г. Влияние розовой снежной плесени . Мат. Межд. науч. конф. «Современные проблемы общей паразитологии». М., 2012: 401-404.
  • Щуковская А.Г., Ткаченко О.Б., Шестепёров А.А. Размножение микогель-минтов Aphelenchus avenae, Paraphelenchus tritici, Aphelenchoides saprophillus на мицелии гриба Microdochium nivale, возбудителя розовой снежной плесени озимой пшеницы. Мат. 10-го Межд. нематологического симпозиума. Большие Вяземы, 2013: 83-85.
  • Ткаченко О.Б. Селекция озимых зерновых на устойчивость к снежной плесени. Сельскохозяйственная биология, 2003, 3: 101-108.
  • Bruehl G.W., Sprague R., Fischer W.R., Nagamitu M., Nelson W.L., Vogel O.A. Snow molds of winter wheat in Washington. Washington Agric. Exp. Stn. Bull., 1966, 677: 1-21.
  • Sunderman D.W. Modifications of the Cormack and Lebeau technique for inoculating winter wheat with snow mold-causing Typhula species. Plant Dis. Rep., 1964, 48: 394-396.
  • Nakajima T., Abe J. A method for assessing resistance to snow molds Typhula incarnata and Microdochium nivale in winter wheat incubated at the optimum growth temperature ranges of the fungi. Can. J. Bot., 1990, 68: 343-346 ( ) DOI: 10.1139/b90-045
  • Овсянкина А.В. Структура популяций возбудителей корневой гнили и снежной плесени озимой ржи и отбор исходного материала для селекции устойчивых сортов. Канд. дис. М., 2000.
  • Iriki N., Kawskami A., Nakajima T. et al. Field resistance of winter wheat to Typhula ishikariensis and Microdochium nivale. Abstracts of NJF seminar no 311 «Plant and microbe adaptation to winter environments in northern areas». Akureyri, Iceland, 2000: 23-24.
  • Iriki N., Kuwabara T., Takata K., Yoshida M., Kawakami A. Physiological and quality traits of Aegilops cylindrica accession screened for snow mold resistance. Proc. 9th Int. Wheat Genetic Symp. Saskatoon, Saskatchewan, Canada, 1998, V. 5: 37-38.
  • Эйгес Н.С., Кузнецова Н.Л., Волченко Г.А., Артамонов В.Д., Вайсфельд Л.И., Долгова С.П., Кахриманова Н.Н., Волченко С.Г. Множественные мутации озимой пшеницы, определяющие хозяйственно ценные признаки. Вiсник Українського товариства генетикiв i селекцiонерiв, 2009, 7(2): 269-275.
  • Эйгес Н.С., Волченко Г.А., Вайсфельд Л.И., Волченко С.Г. Повышение адаптивных свойств у озимой пшеницы методом химического мутагенеза. Матерiали V Всеукраїнскої науково-практичної конференцiї молодих учених «Екологiчнi проблеми сiльскогосподарского виробництва». Яремче, 2011: 28-29.
  • Smith J.D., Cooke D.A. Dormie Kentucky bluegrass. Can J. Plant Sci., 1978, 58: 291-292.
Еще
Статья обзорная