Содержание оксида азота (NO) и экспрессия генов, ответственных за миогенез, в эмбриональных тканях кур (Gallus gallus domesticus L.)

Автор: Титов В.Ю., Долгорукова А.М., Кочиш И.И., Мясникова О.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Репродуктивная функция, эмбриогенез

Статья в выпуске: 2 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Известно, что оксид азота участвует в процессе миогенеза у птиц. Ранее мы установили, что в эмбрионах птицы мясного направления продуктивности имеет место интенсивное окисление оксида азота, в то время как в эмбрионах яичных кур оно незначительное и NO накапливается в составе соединений-доноров. В пределах породы, линии и кросса степень окисления эмбрионального NO варьировала не более чем на 15 %, и указанный признак наследуется. В связи с этим возникает ряд вопросов. Если мясная продуктивность каким-либо образом связана со степенью окисления оксида азота, то какова его роль? Оказывает ли сам NO или продукты его окисления эпигенетическое воздействие в процессе эмбриогенеза? Как осуществляется окисление NO в тканях эмбриона и какова непосредственная физиологическая роль этого процесса? Можно ли регулировать развития эмбриона, воздействуя на синтез NO или стимулируя его окисление? Цель работы заключалась в сопоставлении изменения содержания NO в тканях эмбрионов кур мясного и яичного направлений продуктивности с изменением экспрессии ряда генов, вовлеченных в миогенез, для выяснения механизмов возможного эпигенетического эффекта NO как фактора регуляции эмбрионального развития. Мы показали, что с концентрацией NO, включенного в состав соединений-доноров, связана экспрессия нескольких генов, ответственных за миогенез. Для исследования были взяты эмбрионы кур (Gallus gallus domesticus L.) яичного кросса Hisex White и породы мини-мясная (линия А77, группа 2), характеризующиеся соответственно высокой и низкой интенсивностью окисления эмбрионального NO. В тканях гомогената эмбриона на 6-е сут и в гомогенатах грудных мышц и мышц бедра на 14-е сут оценивали экспрессию семи генов, участвующих в миогенезе или влияющих на него. Это гены фактора пролиферации миоцитов 2с (Mef 2c), миогенной дифференциации 1 (МyoD1), фактора миогенеза 5 (Myf 5), миозина (Myh 1), миогенина (Myog), миостатина (MSTN), рецептора гормона роста (GHR). В качестве референсного гена использовался ген домашнего хозяйства TBP (ген ТАТА-связывающего белка). При инкубации определяли концентрацию эмбрионального NO и интенсивность его окисления в сопоставлении с транскрипционной активностью генов миогенеза при применении in ovo нитроаргинина (НА, блокатор синтеза NO) и зеленого света (фактор, способствующий интенсификации окисления эмбрионального NO до нитрата, но не влияющий на интенсивность синтеза NO). НА при введении перед закладкой на инкубацию на 6-е сут приводил к снижению концентрации соединений-доноров NO в гомогенате эмбриона на 70 % и повышал экспрессию генов МyoD1 , Myog и Mef 2c в эмбрионах кур яичного кросса Hisex White. У породы мини-мясных кур (линия А77, группа 2), для которых характерно низкое содержание депонированного NO, имела место та же тенденция (снижение концентрации соединений-доноров и повышение экспрессии генов МyoD1 , Myog и Mef 2c), но разница между контролем и опытом была менее выражена. Использование зеленого света во время инкубации также способствовало повышению экспрессии генов МyoD1 , Myog и Mef 2c на 6-е сут инкубации. На основании этих данных можно предположить, что на экспрессию указанных генов влияет концентрация депонированного NO в тканях эмбриона. Факторы, вызывающие снижение концентрации депонированного NO, усиливают экспрессию генов вне зависимости от способа снижения (менее интенсивный синтез или более активное окисление). Следовательно, окисление NO в тканях эмбриона может быть способом регуляции экспрессии генов. Механизмы, обеспечивающие это окисление, наследуются. Искусственная регуляция содержания доноров NO в тканях эмбриона проблематична, поскольку аргинин - источник NO в птичьем эмбрионе находится в концентрации насыщения для NO-синтазы, а блокатор синтеза NO нитроаргинин эффективно подавляет синтез NO только на протяжении первых 7 сут инкубации. При этом степень окисления NO в эмбрионе является высокочувствительным параметром для селекционного отбора.

Еще

Оксид азота, экспрессия генов, эмбриогенез птиц, миогенез

Короткий адрес: https://sciup.org/142242448

IDR: 142242448   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.2.316rus

Список литературы Содержание оксида азота (NO) и экспрессия генов, ответственных за миогенез, в эмбриональных тканях кур (Gallus gallus domesticus L.)

  • Battaglia C., Ciottii P., Notarangelo L., Fratto R., Facchinetti F., de Aloysio D. Embryonic production of nitric oxide and its role in implantation: a pilot study. Journal of Assisted Reproduction and Genetics, 2003, 20(11): 449-454 (doi: 10.1023/b:jarg.0000006706.21588.0d)
  • Ribeiro M., Ogando D., Farina M., Franchi A. Epidermal growth factor modulation of prosta-glandins and nitrite biosynthesis in rat fetal membranes. Prostaglandins Leukotrienes and Essential Fatty Acids, 2004, 70(1): 33-40 (doi: 10.1016/j.plefa.2003.08.003).
  • Vignini A., Turi A., Giannubillo S., Pescosolido D., Scognamiglio P., Zanconi S., Silvi C., Maz-zanti L., Tranquilli A. Follicular fluid nitric oxide (NO) concentrations in stimulated cycles: the relationship to embryo grading. Arch. Gynecol. Obstet., 2008, 277(3): 229-232 (doi: 10.1007/s00404-007-0445-y).
  • Socco S., Bovee Rh., Palczewski M., Hickok J., Thomas D. Epigenetics: the third pillar of nitric oxide signaling. Pharmacological Research, 2017, 121: 52-58 (doi: 10.1016/j.phrs.2017.04.011).
  • Vasudevan D., Bovee R., Thomas D. Nitric oxide, the new architect of epigenetic landscapes. Nitric Oxide, 2016, 59: 54-62 (doi: 10.1016/j.niox.2016.08.002).
  • Vasil’eva S., Stupakova M., Lobysheva I., Mikoyan V., Vanin A. Activation of the Escherichia coli SoxRS-regulon by nitric oxide and its physiological donors. Biochemistry (Moscow), 2001, 66: 984-988 (doi: 10.1023/a:1012317508971).
  • Green J., Rolfe M., Smith L. Transcriptional regulation of bacterial virulence gene expression by molecular oxygen and nitric oxide. Virulence, 2014, 5(8): 794-809 (doi: 10.4161/viru.27794).
  • Tucker N., D’autréaux B., Spiro S., Dixon R. Mechanism of transcriptional regulation by the Escherichia coli nitric oxide sensor NorR. Biochem. Soc. Trans., 2006, 34(Pt 1): 191-194 (doi: 10.1042/BST0340191).
  • Dokunmu T., Opara S., Imaga N., Awani O., Enoma D., Adelani B. P53 gene expression and nitric oxide levels after artemisinin-caffeine treatment in breast, lungs and liver of DMBA-induced tumor-igenesis. Asian Pac. J. Cancer Prev., 2023, 24(2): 451-458 (doi: 10.31557/APJCP.2023.24.2.451).
  • Cazzato D., Assi E., Moscheni C., Brunelli S., De Palma C., Cervia D., Perrotta C., Clementi E. Nitric oxide drives embryonic myogenesis in chicken through the upregulation of myogenic differen-tiation factors. Experimental Cell Research, 2014, 320(2): 269-280 (doi: 10.1016/j.yexcr.2013.11.006).
  • Hickok J., Vasudevan D., Antholine W., Thomas D. Nitric oxide modifies global histone meth-ylation by inhibiting Jumonji C Domain-containing demethylases. J. Biol. Chem., 2013, 288(22): 16004-16015 (doi: 10.1074/jbc.M112.432294).
  • Rezakhanlou A., Miller C., McMullin B., Ghaffari A., Garcia R., Ghahary A. Gaseous nitric oxide exhibits minimal effect on skin fibroblast extracellular matrix gene expression and immune cell viability. Cell Biol. Int., 2011, 35(4): 407-415 (doi: 10.1042/CBI20100420).
  • Xu C., Chen X., Grzeschik S., Ganta M., Wang C. Hydroxyurea enhances SMN2 gene expression through nitric oxide release. Neurogenetics, 2011, 12(1): 19-24 (doi: 10.1007/s10048-010-0268-z).
  • Титов В.Ю., Петренко Ю.М., Ванин А.Ф., Степуро И.И. Определение нитрита и нитрозо-соединений в биосистемах калориметрическим методом. Биофизика, 2010, 55(1): 95-106.
  • Титов В.Ю., Долгорукова А.М., Кочиш И.И., Мясникова О.В., Никонов И.Н. Особенности метаболизма оксида азота в эмбрионах разных видов птиц как генетически обусловленный признак, связанный с мясной продуктивностью. Сельскохозяйственная биология, 2022, 57(2): 343-355 (doi: 10.15389/agrobiology.2022.2.343.rus).
  • Титов В.Ю., Кочиш И.И., Долгорукова А.М. Оксид азота (NO) в эмбриональном и постэмбриональном развитии птиц. М., 2022 (doi: 10.18720/SPBPU/2/z22-25).
  • Li Y., Wang Y., Willems E., Willemsen H., Franssens L., Buyse J., Decuypere E., Everaer N. In ovo L-arginine supplementation stimulates myoblast differentiation but negatively affects muscle development of broiler chicken after hatching. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 2016, 100: 167-177 (doi: 10.1111/jpn.12299).
  • Sibisi N., Snyman C., Myburgh K., Niesler C. Evaluating the role of nitric oxide in myogenesis in vitro. Biochimie, 2022, 196: 216-224 (doi: 10.1016/j.biochi.2021.11.006).
  • Wang R., Li K., Sun L., Jiao H., Zhou Y., Li H., Wang X., Zhao J., Lin H. L-Arginine/nitric oxide regulates skeletal muscle development via muscle fibre-specific nitric oxide/mTOR path-way in chickens. Anim Nutr., 2022, 10: 68-85 (doi: 10.1016/j.aninu.2022.04.010).
  • Buono R., Vantaggiato C., Pisa V., Azzoni E., Bassi M., Brunelli S., Sciorati C., Clementi E. Nitric oxide sustains long-term skeletal muscle regeneration by regulating fate of satellite cells via signaling pathways requiring Vangl2 and cyclic GMP. Stem Cells, 2012, 30(2), 197-209 (doi: 10.1002/stem.783).
  • Anderson J., Zhu A., Mizuno T. Nitric oxide treatment attenuates muscle atrophy during hind limb suspension in mice. Free Radic. Biol. Med., 2018, 115: 458-470 (doi: 10.1016/j.freeradbio-med.2017.12.021).
  • Samengo G., Avik A., Fedor B., Whittaker D., Myung K., Wehling-Henricks M., Tidball J. Age-related loss of nitric oxide synthase in skeletal muscle causes reductions in calpain S-nitrosylation that increase myofibril degradation and sarcopenia. Aging Cell, 2012, 11(6): 1036-1045 (doi: 10.1111/acel.12003).
  • Фисинин В.И., Дядичкина Л.Ф., Голдин Ю.С., Позднякова Н.С., Мелехина Т.А., Дани-лов Р.В., Гупало И.М., Ройтер Л.М., Веденкина И.В., Шинкаренко Л.А., Воронцов А.Н., Босов Д.Ю., Афонин В.В. Технология инкубации яиц сельскохозяйственной птицы. Сергиев Посад, 2016.
  • Krych-Madej J., Gebicka L. Interaction of nitrite with catalase: enzyme activity and reaction kinetics studies. Journal of Inorganic Biochemistry, 2017, 171: 10-17 (doi: 10.1016/j.jinorg-bio.2017.02.023).
  • Schmittgen T., Livak K. Analyzing real-time PCR data by the comparative C(T) method. Nature Protocols, 2008, 3(6): 1101-1108 (doi: 10.1038/nprot.2008.73).
  • Zazoua A., Hnaien M., Cosnier S., Jaffrezic-Renault N., Kherrat R. A new HRP/catalase bio-sensor based on microconductometric transduction for nitrite determination. Materials Science and Engineering C, 2009, 29: 1919-1922 (doi: 10.1016/j.msec.2009.03.008).
  • Ojani R., Raoof J.-B., Rahemi V. A simple and efficient electrochemical sensor for electrocat-alytic reduction of nitrite based on poly(4-aminoacetanilide) film using carbon paste electrode. Journal of the Chinese Chemical Society, 2011, 58(2): 247-254 (doi: 10.1002/jccs.201190084).
  • Rozenboim I., El Halawani M., Kashash Y., Piestun Y, Halevy O. The effect of monochromatic photostimulation on growth and development of broiler birds. General and Comparative Endocri-nology, 2013, 190: 214-219 (doi: 10.1016/j.ygcen.2013.06.027).
  • Sobolewska A., Elminowska-Wenda G., Bogucka J., Szpinda M., Walasik K., Bednarczyk M., Paraczewska-Achtel M. Myogenesis — possibilities of its stimulation in chickens. Folia biologica (Kraków), 2011, 59(3-4): 85-90 (doi: 10.3409/fb59_3-4.85-90).
  • Halevy O., Piestun Y., Rozenboim I., Yablonka-Reuveni Z. In ovo exposure to monochromatic green light promotes skeletal muscle cell proliferation and affects myofiber growth in posthatch chicks. American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology, 2006, 290(4): R1062-R1070 (doi: 10.1152/ajpregu.00378.2005).
Еще
Статья научная