Состав и функции микробиома слепых отростков кишечника Oryctolagus dominis под влиянием комплексной кормовой добавки

Автор: Наркевич И.А., Йылдырым Е.А., Черных Т.Ф., Ильина Л.А., Ивкин Д.Ю., Филиппова В.А., Лаптев Г.Ю., Бражник Е.А., Пономарева Е.С., Дубровин А.В., Флисюк Е.В., Калиткина К.А., Скляров С.П., Морозов В.Ю., Новикова Н.И., Тюрина Д.Г.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Генетика, геномика, генетическая инженерия

Статья в выпуске: 6 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

В современных условиях представляет интерес изучение эффективности натуральных комплексных кормовых добавок, которые позволят регулировать состав и метаболическую активность микробиома и улучшить иммунитет и физиологический статус кроликов. В настоящей работе впервые с применением биоинформатических методов обнаружено, что комплексный пробиотический биопрепарат оказывает влияние на изменение прогнозируемых метаболических путей в микробиоме кишечника кроликов. Целью работы было изучение совместного действия комплекса, содержащего минеральные вещества и пробиотик, на организм кроликов, их физиологические показатели, состав и функциональный потенциал микробиома. Исследование проводили в 2021 году на 10 кроликах породы советская шиншилла на базе вивария ФГБУ ВО СПХФУ Минздрава России. Возраст животных на начало эксперимента - 2,5 мес, живая масса - 5,37-5,53 кг. Животных разделили на две группы (по 5 гол. в каждой): I контрольная группа получала основной рацион (ОР) в соответствии с рекомендуемыми детализированными нормами РАСХН (2003 год), II опытная группа - ОР с добавлением комплексной кормовой добавки микроэлементов и пробиотического штамма бактерий в количестве 30 мг/гол. в сутки. Комплексная кормовая добавка включала микроэлементный препарат Silaccess (ООО «ТЕХНОЛОГ 2Д», Россия) в дозе 5 мг/кг живой массы. Кроме того, в добавку был включен пробиотический штамм микроорганизма Bacillus subtilis 1-85. На 30-е и 60-е сут после начала эксперимента животных взвешивали натощак перед утренним кормлением, а также брали кровь для анализа. Определяли естественную резистентность (бактерицидная активность, включая лизоцимную, фагоцитарная активность нейтрофилов). Образцы химуса слепых отростков кишечника для исследования микробиома отбирали в конце эксперимента с максимально возможным соблюдением условий асептики вручную и немедленно помещали в стерильные пластиковые пробирки. Тотальную ДНК выделяли с использованием набора Genomic DNA Purification Kit («Thermo Fisher Scientific, Inc.», США). Бактериальное сообщество оценивали методом NGS-секвенирования на автоматическом секвенаторе MiSeq («Illumina, Inc.», США) с праймерами для V3-V4 региона гена 16S рРНК: 5´-TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAG-AGACAGCCTACGGGNGGCWGCAG-3´ (прямой праймер), 5´-GTCTCGTGGGCTCGGAGATGTG-TATAAGAGACAGGACTACHVGGGTATCTAATCC-3´ (обратный праймер). Реконструкцию и прогнозирование функционального содержания метагенома проводили при помощи программного комплекса PICRUSt2 (v.2.3.0) (https://github.com/picrust/picrust2). Математическую и статистическую обработку результатов осуществляли методом многофакторного дисперсионного анализа в программах Microsoft Excel XP/2003, R-Studio (Version 1.1.453) (https://rstudio.com). Фагоцитарный индекс был выше (p ≤ 0,05) во II опытной группе по сравнению с контрольной на 1,8, фагоцитарное число - на 32,3 % (p ≤ 0,05). С применением метода NGS-секвенирования во II группе были установлены более высокие значения индексов a-биоразнообразия Chao1, Shannon и Simpson (p £ 0,05) по сравнению с I группой. По данным исследований таксономического состава микроорганизмов слепых отростков кишечника кроликов выявили 12 филумов царства Bacteria , среди которых представители филума Firmicutes доминировали по численности (80,2±6,2 % в контрольной группе, 78,2±7,4 % в опытной группе). Во II группе происходило количественное увеличение филумов Verrucomicrobiota , Actinobacteriota , Patescibacteria , Proteobacteria , Desulfobacterota в 1,3-2,6 раза и снижение представленности филума Campilobacterota в 4,8 раза (p ≤ 0,05). В слепых отростках кишечника у кроликов из опытной группы наблюдалось возрастание численности бактерий рода Bacillus spp. в 2,82 раза по сравнению с контролем (p ≤ 0,05). В кишечнике животных из I контрольной группы присутствовал вид Staphylococcus sciuri (0,075±0,006 %), тогда как во II опытной группе его не обнаружили. В результате анализа, проведенного с использованием программного комплекса PICRUSt2 (v.2.3.0), у микробного сообщества кишечника кроликов мы выявили 370 прогнозируемых метаболических путей, при этом между экспериментальными группами наблюдались различия (p ≤ 0,05) по 36 путям. В кишечном микробиоме животных из II опытной группы по сравнению с I контрольной происходила активация (p ≤ 0,05) путей, которые относились к деградации ароматических соединений и ксенобиотиков, белковому, углеводному, энергетическому обмену, биосинтезу спиртов, фотодыханию, ассимиляции формальдегида, деградации мио-, хиро- и сцилло-инозитола, синтезу клеточной стенки и спорообразованию. Доминирующее число (15 путей) усиленных потенциальных метаболических путей было связано с деградацией ароматических соединений и ксенобиотиков.

Еще

Пробиотик, микроэлементы, резистентность, домашние кролики, микробиом, ngs-секвенирование, метаболические пути

Короткий адрес: https://sciup.org/142237387

IDR: 142237387   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2022.6.1117rus

Список литературы Состав и функции микробиома слепых отростков кишечника Oryctolagus dominis под влиянием комплексной кормовой добавки

  • Lebas F., Coudert P., de Rochambeau H., Thébault R.G. The rabbit: husbandry, health, and production. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, 1997.
  • Cullere M., Dalle Zotte A. Rabbit meat production and consumption: State of knowledge and future perspectives. Meat Science, 2018, 143: 137-146 (doi: 10.1016/j.meatsci.2018.04.029).
  • Усачев И.И. Влияние бифидофлоры на энтеральный биоценоз и жизнеспособность животных. Вестник Бурятской государственной сельскохозяйственной академии им. В.Р. Филиппова, 2008, 1: 26-29.
  • McNitt J.I., Lukefahr S.D., Cheeke P.R., Patton N.M. Rabbit production. CABI, Wallingford, UK, 2013.
  • Cotozzolo E., Cremonesi P., Curone G., Menchetti L., Riva F., Biscarini F., Marongiu M.L., Castrica M., Castiglioni B., Miraglia D., Luridiana S., Brecchia G. Characterization of bacterial microbiota composition along the gastrointestinal tract in rabbits. Animals, 2020, 11(1): 31 (doi: 10.3390/ani11010031).
  • Flint H.J., Scott K.P., Louis P., Duncan S.H. The role of the gut microbiota in nutrition and health. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology, 2012, 9(10): 577-589 (doi: 10.1038/nrgastro. 2012.156).
  • Heinrichs J., Lesmeister K.E. Rumen development in the dairy calf. Advances in Dairy Technology, 2005, 17: 179-187.
  • Drouilhet L., Achard C.S., Zemb O., Molette C., Gidenne T., Larzul C., Ruesche J., Tircazes A., Segura M., Bouchez T., Theau-Clément M., Joly T., Balmisse E., Garreau H., Gilbert H. Direct and correlated responses to selection in two lines of rabbits selected for feed efficiency under ad libitum and restricted feeding: I. Production traits and gut microbiota characteristics. Journal of Animal Science, 2016, 94(1): 38-48 (doi: 10.2527/jas.2015-9402).
  • Monteils V., Cauquil L., Combes S., Godon J.J., Gidenne T. Potential core species and satellite species in the bacterial community within the rabbit caecum. FEMS Microbiology Ecology, 2008, 66(3): 620-629 (doi: 10.1111/j.1574-6941.2008.00611.x).
  • Massip K., Combes S., Cauquil L., Zemb O., Gidenne T. High-throughput 16SDNA sequencing for phylogenetic affiliation of the caecal bacterial community in the rabbit: Impact of the hygiene of housing and of the intake level. Proc. VIIIth INRA-RRI Symposium on Gut Microbiology. Gut microbiota: friend or foe? Clermont-Ferrand, France, 2012: 57.
  • Velasco-Galilea M., Piles M., Vinas M., Rafel O., González-Rodríguez O., Guivernau M., Sanchez J.P. Rabbit microbiota changes throughout the intestinal tract. Front. Microbiol., 2018, 9: 2144 (doi: 10.3389/fmicb.2018.02144).
  • Xing Y., Liu J., Lu F., Wang L., Li Y., Ouyang C. Dynamic distribution of gallbladder microbiota in rabbit at different ages and health states. PLoS ONE, 2019, 14(2): e0211828 (doi: 10.1371/journal.pone.0211828).
  • Fang S., Chen X., Pan J., Chen Q., Zhou L., Wang C., Xiao T., Gan Q. F. Dynamic distribution of gut microbiota in meat rabbits at different growth stages and relationship with average daily gain (ADG). BMC Microbiol., 2020, 20(1): 116 (doi: 10.1186/s12866-020-01797-5).
  • Gouet P.H., Fonty G. Changes in the digestive microflora of holoxenic rabbits from birth until adulthood. Annales de Biologie Animale Biochimie Biophysique, 1979, 19(3A): 553-566.
  • Carabaño R., Badiola I., Licois D., Gidenne T. The digestive ecosystem and its control through nutritional or feeding strategies. In: Recent advances in rabbit sciences /L. Maertens, P. Coudert (eds.). ILVO, Melle, Belgium, 2006: 211-228.
  • Marlier D., Dewrée R., Lassence C., Licois D., Mainil J., Coudert P., Meulemans L., Ducatelle R., Vindevogel H. Infectious agents associated with epizootic rabbit enteropathy: isolation and attempts to reproduce the syndrome. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2006, 172(3): 493-500 (doi: 10.1016/j.tvjl.2005.07.011).
  • Lebas F. Entérocolite: situation en juin 2001. Cuniculture, 2001, 28: 183-188.
  • Lord B. Gastrointestinal disease in rabbits 2. Intestinal diseases. In Practice, 2012, 34(3): 156-162 (doi: 10.1136/inp.e973).
  • Olkowski A.A., Wojnarowicz C., Chirino-Trejo M., Drew M.D. Responses of broiler chickens orally challenged with Clostridium perfringens isolated from field cases of necrotic enteritis. Research in Veterinary Science, 2006, 81(1): 99-108 (doi: 10.1016/j.rvsc.2005.10.006).
  • Lu H., Adedokun S.A., Adeola L., Ajuwon K. Anti-inflammatory effects of non-antibiotic alternatives in Coccidia challenged broiler chickens. Journal of Poultry Science, 2014, 51(1): 14-21 (doi: 10.2141/jpsa.0120176).
  • Tang T., Li Y., Wang J., Elzo M. A., Shao J., Li Y., Xia S., Fan H., Jia X., Lai S. Untargeted metabolomics reveals intestinal pathogenesis and self-repair in rabbits fed an antibiotic-free diet. Animals (Basel), 2021, 11(6): 1560 (doi: 10.3390/ani11061560).
  • Deng Z., Han D., Wang Y., Wang Q., Yan X., Wang S., Liu X., Song W., Ma Y. Lactobacillus casei protects intestinal mucosa from damage in chicks caused by Salmonella pullorum via regulating immunity and the Wnt signaling pathway and maintaining the abundance of gut microbiota. Poultry Science, 2021, 100(8): 101283 (doi: 10.1016/j.psj.2021.101283).
  • Liu B., Liu Q.-M., Li G.-L., Sun L.C., Gao Y.-Y., Zhang Y.-F., Liu H., Cao M.-J., Liu G.-M. The anti-diarrhea activity of red algae-originated sulphated polysaccharides on ETEC-K88 infected mice. RSC Advances, 2019, 9: 2360-2370 (doi: 10.1039/C8RA09247H).
  • Karamzadeh-Dehaghani A., Towhidi A., Zhandi M., Mojgani N., Fouladi-Nashta A. Combined effect of probiotics and specific immunoglobulin Y directed against Escherichia coli on growth performance, diarrhea incidence, and immune system in calves. Animal, 2021, 15(2): 100124 (doi: 10.1016/j.animal.2020.100124).
  • Abdel-Wareth A.A.A., Elkhateeb F.S.O., Ismail Z.S.H., Ghazalah A.A., Lohakare J. Combined effects of fenugreek seeds and probiotics on growth performance, nutrient digestibility, carcass criteria, and serum hormones in growing rabbits. Livestock Science, 2021, 251: 104616 (doi: 10.1016/j.livsci.2021.104616).
  • Lam Phuoc T., Jamikorn U. Effects of probiotic supplement (Bacillus subtilis and Lactobacillus acidophilus) on feed efficiency, growth performance, and microbial population of weaning rabbits. Asian-Australas. J. Anim. Sci., 2016, 30(2): 198-205 (doi: 10.5713/ajas.15.0823).
  • Dimova N., Laleva S., Slavova P., Popova Y., Mihaylova M., Pacinovski N. Effect of probiotic “Zoovit” on productivity of rabbits. Macedonian Journal of Animal Scienc, 2017, 7: 123-127.
  • Fathi M., Abdelsalam M., Al-Homidan I., Ebeid T., El-Zarei M., Abou-Emera O. Effect of probiotic supplementation and genotype on growth performance, carcass traits, hematological parameters and immunity of growing rabbits under hot environmental conditions. Anim. Sci. J., 2017, 88(10): 1644-1650 (doi: 10.1111/asj.12811).
  • El-Shafei A.A., Younis T.M., Al-Gamal M.A., Hesham A.M. Impact of probiotic (Lactobacillus planterium L) supplementation on productive and physiological performance of growing rabbits under Egyptian conditions. Egyptian Journal of Rabbit Science, 2019, 29(1): 125-148 (doi: 10.21608/ejrs.2019.48188).
  • Wlazło Ł., Kowalska D., Bielański P., Chmielowiec-Korzeniowska A., Ossowski M., Łukaszewicz M., Czech A., Nowakowicz-Dębek B. Effect of fermented rapeseed meal on the gastrointestinal microbiota and immune status of rabbit (Oryctolagus cuniculus). Animals (Basel), 2021, 11(3): 716 (doi: 10.3390/ani11030716).
  • Shen X.M., Cui H.X., Xu X.R. Orally administered Lactobacillus casei exhibited several probiotic properties in artificially suckling rabbits. Asian-Australas. J. Anim. Sci., 2020, 33: 1352-1359 (doi: 10.5713/ajas.18.0973).
  • Йылдырым Е.А., Лаптев Г.Ю., Ильина Л.А., Дуняшев Т.П., Тюрина Д.Г., Филиппова В.А., Бражник Е.А., Тарлавин Н.В., Дубровин А.В., Новикова Н.И., Солдатова В.В., Зайцев С.Ю. Таксономическая и функциональная характеристика микробиоты рубца лактирующих коров под влиянием пробиотика Целлобактерина+. Сельскохозяйственная биология, 2020, 55(6): 1204-1219 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.6.1204rus).
  • Ye X., Zhou L., Zhang Y., Xue S., Gan Q. F., Fang S. Effect of host breeds on gut microbiome and serum metabolome in meat rabbits. BMC Vet. Res., 2021, 17(1): 24 (doi: 10.1186/s12917-020-02732-6).
  • Алексеева Л.В., Арсанукаев Д.Л. Особенности микроэлементного метаболизма у животных. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Конкурентоспособность и инновационная активность АПК регионов». Тверь, 2018: 89-92.
  • Алексеева Л.В., Макаревский А.А., Субботенко Т.В. Влияние препарата нанокремний на интенсивность роста норок. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Научные приоритеты в АПК». Тверь, 2019: 146-148.
  • Алексеева Л.В., Лукьянов А.А., Белякова С.В. Применение антиоксидантных препаратов. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Конкурентоспособность и инновационная активность АПК регионов». Тверь, 2017: 132-134.
  • Guide for the care and use of laboratory animals. The National Academy press, Washington, D.C, 2011.
  • Алексеева Л.В., Деменик Ф.Г., Савина А.С. Активность компонентов системы гомеостаза коров и их продуктивность под влиянием препарата нанокремний. Вестник тверского государственного университета. Серия: биология и экология, 2018, 2: 274-285.
  • Карпуть И.М. Иммунология и иммунопатология болезней молодняка. Минск, 1993.
  • Дорофейчук В.Г. Определение активности лизоцима нефелометрическим методом. Лабораторное дело, 1968, 1: 67.
  • Douglas G.M., Maffei V.J., Zaneveld J.R. Yurgel S.N., Brown J.R., Taylor C.M., Huttenhower C., Langille M.G.I. PICRUSt2 for prediction of metagenome functions. Nature Biotechnology, 2020, 38: 685-688 (doi: 10.1038/s41587-020-0548-6).
  • Tracey K.J., Wei H., Manogue K.R., Fong Y., Hesse D.G., Nguyen H.T., Kuo G.C., Beutler B., Cotran R.S., Cerami A. Cachectin/tumor necrosis factor induces cachexia, anemia, and inflammation. The Journal of Experimental Medicine, 1988, 167(3): 1211-1227 (doi: 10.1084/jem.167.3.1211).
  • Овсянников А.Г. Анемия кроликов (этиопатогенез, диагностика, лечение). Канд. дис. СПб, 2019.
  • Глаголева О.Н. Популяционная профилактика анемий, связанных с питанием. Вести МАНЭБ в Омской области, 2013, 2(2): 13-15.
  • Kraemer K., Zimmermann B. Nutritional anemia. Sightand Life Press, Basel, Switzerland, 2007.
  • Levy O. Antimicrobial proteins and peptides of blood: templates for novel antimicrobial agents. Blood, 2000, 96(8): 2664-2672.
  • Modlin R.L., Brightbill H.D., Godowski P.J. The toll of innate immunity on microbial pathogens. N. Engl. J. Med., 1999, 340(23): 1834-1835 (doi: 10.1056/NEJM199906103402312).
  • Hoffmann J.A. Innate immunity of insects. Current Opinion in Immunology, 1995, 7(1): 4-10 (doi: 10.1016/0952-7915(95)80022-0).
  • Hoffmann J.A., Reichhart J.M., Hetru C. Innate immunity in higher insects. Current Opinion in Immunology, 1996, 8(1): 8-13 (doi: 10.1016/s0952-7915(96)80098-7).
  • Nichols R.G., Davenport E.R. The relationship between the gut microbiome and host gene expression: a review. Human Genetics, 2021, 140(5): 747-760 (doi: 10.1007/s00439-020-02237-0).
  • Mohamed A.F., El-Sayiad G.A., Reda F.M., Ashour E.A. Effects of breed, probiotic and their in-teraction on growth performance, carcass traits and blood profile of growing rabbits. Zagazig Journal of Agricultural Research, 2017, 44(1): 215-227 (doi: 10.21608/zjar.2017.53947).
  • Lukác N., Massányi P. Vplyv stopoýtch prvkov na imunitný systém [Effects of trace elements on the immune system]. Epidemiol. Mikrobiol. Imunol., 2007, 56(1): 3-9.
  • López-Alonso M. Trace minerals and livestock: not too much not too little. International Scholarly Research Notices, 2012, 2012: 704825 (doi: 10.5402/2012/704825).
  • Kim H.B., Borewicz K., White B.A., Singer R.S., Sreevatsan S., Tu Z.J., Isaacsona R.E. Microbial shifts in the swine distal gut in response to the treatment with antimicrobial growth promoter, tylosin. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2012, 109(38): 15485-15490 (doi: 10.1073/pnas.1205147109).
  • Pajarillo E.A., Chae J.P., Balolong M.P., Kim H.B., Seo K.-S., Kang D.-K. Characterization of the fecal microbial communities of duroc pigs using 16S rRNA gene pyrosequencing. Asian- Australas. J. Anim. Sci., 2015, 28(4): 584-591 (doi: 10.5713/ajas.14.0651).
  • den Besten G., van Eunen K., Groen A.K., Venema K., Reijngoud D.-J., Bakker B.M. The role of short-chain fatty acids in the interplay between diet, gut microbiota, and host energy metabolism. Journal of Lipid Research, 2013, 54(9): 2325-2340 (doi: 10.1194/jlr.R036012).
  • Abecia L., Rodríguez-Romero N., Yañez-Ruiz D.R., Fondevila M. Biodiversity and fermentative activity of caecal microbial communities in wild and farm rabbits from Spain. Anaerobe, 2012, 18(3): 344-349 (doi: 10.1016/j.anaerobe.2012.04.004).
  • Fu X., Zeng B., Wang P., Wang L., Wen B., Li Y., Liu H., Bai S., Jia G. Microbiome of total versus live bacteria in the gut of Rex rabbits. Front. Microbiol., 2018, 9: 733 (doi: 10.3389/fmicb.2018.00733).
  • Crowley E.J., King J.M., Wilkinson T., Worgan H.J., Huson K.M., Rose M.T., McEwan N.R. Comparison microbial population in rabbits and guinea pigs by next generation sequencing. PLoS ONE, 2017, 12(2): e0165779 (doi: 10.1371/journal.pone.0165779).
  • Bangsgaard Bendtsen K.M., Krych L., Sørensen D.B., Pang W., Nielsen D.S., Josefsen K., Hansen L.H., Sørensen S.J., Hansen A.K. Gut microbiota composition is correlated to grid floor induced stress and behavior in the BALB/c mouse. PLoS ONE, 2012, 7(10): e46231 (doi: 10.1371/journal.pone.0046231).
  • An C., Kuda T., Yazaki T., Takahashi H., Kimura B. FLX pyrosequencing analysis of the effects of the brown-algal fermentable polysaccharides alginate and laminaran on rat cecal microbiotas. Applied and Environmental Microbiology, 2013, 79(3): 860-866 (doi: 10.1128/AEM.02354-12).
  • Zhou K. Strategies to promote abundance of Akkermansia muciniphila, an emerging probiotics in the gut, evidence from dietary intervention studies. Journal of Functional Foods, 2017, 33: 194- 201 (doi: 10.1016/j.jff.2017.03.045).
  • Glukhova A.A., Karabanova A.A., Yakushev A.V., Semenyuk I.I., Boykova Y.V., Malkina N.D., Efimenko T.A., Ivankova T.D., Terekhova L.P., Efremenkova O.V. Antibiotic activity of actinobacteria from the digestive tract of millipede Nedyopus dawydoffiae (Diplopoda). Antibiotics, 2018, 7(4): 94 (doi: 10.3390/antibiotics7040094).
  • Hotchkiss C.E., Shames B., Perkins S.E., Fox J.G. Proliferative enteropathy of rabbits: the intracellular Campylobacter-like organism is closely related to Lawsonia intracellularis. Lab. Anim. Sci., 1996, 46(6): 623-627.
  • Corcoran B.M., Stanton C., Fitzgerald G.F., Ross R.P. Survival of probiotic lactobacilli in acidic environments is enhanced in the presence of metabolizable sugars. Applied and Environmental Microbiology, 2005, 71(6): 3060-3067 (doi: 10.1128/AEM.71.6.3060-3067.2005).
  • Ghelardi E., Celandroni F., Salvetti S., Gueye S.A., Lupetti A., Senesi S. Survival and persistence of Bacillus clausii in the human gastrointestinal tract following oral administration as spore-based probiotic formulation. J. Appl. Microbiol., 2015, 119(2): 552-559 (doi: 10.1111/jam.12848).
  • Bäuerl C., Collado M.C., Zúñiga M., Blas E., Pérez Martínez G. Changes in cecal microbiota and mucosal gene expression revealed new aspects of epizootic rabbit enteropathy. PLoS ONE, 2014, 9(8): e105707 (doi: 10.1371/journal.pone.0105707).
  • Combes S., Gidenne T., Cauquil L., Bouchez O., Fortun-Lamothe L. Coprophagous behavior of rabbit pups affects implantation of cecal microbiota and health status. Journal of Animal Science, 2014, 92(2): 652-665 (doi: 10.2527/jas.2013-6394).
  • Fekete S. Recent findings and future perspectives of digestive physiology in rabbits: a review. Acta Vet. Hung., 1989, 37(3): 265-279.
  • Hu X., Zheng B., Jiang H., Kang Y., Cao Q., Ning H., Shang J. Draft genome sequence of Staphylococcus sciuri subsp. sciuri strain Z8, isolated from human skin. Genome Announcements, 2015, 3(4): e00714-15 (doi: 10.1128/genomeA.00714-15).
  • Hermans K., Devriese L.A., Haesebrouck F. Rabbit staphylococcosis: difficult solutions for serious problems. Veterinary Microbiology, 2003, 91(1): 57-64 (doi: 10.1016/s0378-1135(02)00260-2).
  • Dakić I., Morrison D., Vuković D., Savić B., Shittu A., Ježek P., Hauschild T., Stepanović S. Isolation and molecular characterization of Staphylococcus sciuri in the hospital environment. Journal of Clinical Microbiology, 2005, 43(6): 2782-2785 (doi: 10.1128/JCM.43.6.2782-2785.2005).
  • Mayer J., Huhn T., Habeck M., Denger K., Hollemeyer K., Cook A.M. 2,3-Dihydroxypropane 1-sulfonate degraded by Cupriavidus pinatubonensis JMP134: purification of dihydroxypropanesulfonate 3-dehydrogenase. Microbiology, 2010, 156(5): 1556-1564 (doi: 10.1099/mic.0.037580-0).
  • Yurimoto H., Hirai R., Yasueda H., Mitsui R., Sakai Y., Kato N. The ribulose monophosphate pathway operon encoding formaldehyde fixation in a thermotolerant methylotroph, Bacillus brevis S1. FEMS Microbiol. Lett., 2002, 214(2): 189-193 (doi: 10.1111/j.1574-6968.2002.tb11345.x).
  • Arora P.K., Srivastava A., Singh V.P. Diversity of 4-chloro-2-nitrophenol-degrading bacteria in a waste water sample. Journal of Chemistry, 2016, 2016: 7589068 (doi: 10.1155/2016/7589068).
  • Singh B., Singh K. Bacillus: as bioremediator agent of major environmental pollutants. In: Bacilli and agrobiotechnology /M. Islam, M. Rahman, P. Pandey, C. Jha, A. Aeron (eds.). Springer, Cham, 2016: 35-55 (doi: 10.1007/978-3-319-44409-3_2).
  • Yoshida K.I., Aoyama D., Ishio I., Shibayama T., Fujita Y. Organization and transcription of the myo-inositol operon, iol, of Bacillus subtilis. Journal of Bacteriology, 1997, 179(14): 4591-4598 (doi: 10.1128/jb.179.14.4591-4598.1997).
  • Yoshida K.-I., Yamamoto Y., Omae K., Yamamoto M., Fujita Y. Identification of two myoinositol transporter genes of Bacillus subtilis. Journal of Bacteriology, 2002, 184(4): 983-991 (doi: 10.1128/jb.184.4.983-991.2002).
  • Abe Y., Sakoda T., Goto H., Ikeda S., Sukemori S. Cecotrophy contribute methionine and threonine requirements of rabbits. Journal of Pet Animal Nutrition, 2014, 17: 6-12 (doi: 10.11266/jpan.17.6).
  • Gidenne T., Kerdiles V., Jehl N., Arveux P., Eckenfelder B., Briens C., Stephan S., Fortune H., Montessuy S., Muraz G. Protein replacement by digestible fibre in the diet of growing rabbits. 2: Impact on performances, digestive health and nitrogen output. Animal Feed Science and Technology, 2013, 183(3-4): 142-150 (doi: 10.1016/j.anifeedsci.2013.03.013).
  • Martínez-Vallespín B., Martínez-Paredes E., Ródenas L., Moya V.J., Cervera C., Pascual J.J., Blas E. Partial replacement of starch with acid detergent fibre and/or neutral detergent soluble fibre at two protein levels: Effects on ileal apparent digestibility and caecal environment of growing rabbits. Livestock Science, 2013, 154(1-3): 123-130 (doi: 10.1016/j.livsci.2013.02.012).
  • Trocino A., García J., Carabaño R., Xiccato G. A meta-analysis on the role of soluble fibre in diets for growing rabbits. World Rabbit Sci., 2013, 21(1): 1-15 (doi: 10.4995/wrs.2013.1285).
  • Partridge G.G., Garthwaite P.H., Findlay M. Protein and energy retention by growing rabbits offered diets with increasing proportions of fibre. Journal of Agricultural Science, 1989, 112(2): 171-178 (doi: 10.1017/S0021859600085063).
  • Shin D., Chang S.Y., Bogere P., Won K., Choi J.Y., Choi Y.J., Lee H.K., Hur J., Park B.Y., Kim Y., Heo J. Beneficial roles of probiotics on the modulation of gut microbiota and immune response in pigs. PLoS ONE, 2019, 14(8): e0220843 (doi: 10.1371/journal.pone.0220843).
  • Khan S., Chousalkar K.K. Functional enrichment of gut microbiome by early supplementation of Bacillus based probiotic in cage free hens: a field study. Animal Microbiome, 2021, 3(1): 50 (doi: 10.1186/s42523-021-00112-5).
Еще
Статья научная