Состояние микробиоценоза кишечника как критерий оценки качества питания
Автор: Николаева Нина Владимировна, Афанасьевская Елизавета Викторовна, Горовиц Эдуард Семенович, Перевалов Александр Яковлевич
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Микробиология
Статья в выпуске: 2, 2022 года.
Бесплатный доступ
В результате проведенного динамического трехкратного бактериологического обследования на дисбиоз кишечника практически здоровых студентов 1 курса, прибывших на учебу из других регионов, установлено, что уже спустя полгода после начала учебы изменение режима и качества питания приводит к развитию дисбиоза кишечника у 61.54% иногородних студентов 1 курса ВУЗа из 28 обследованных. Показано, что дисбиотические нарушения микробиоты кишечника прежде всего связаны с уменьшением на 1-3 порядка титра облигатных бактерий (бифидо- и лактобактерий, типичных эшерихий). На этом фоне возрастало количество условно патогенных транзиторных микроорганизмов. К концу срока наблюдения (спустя 9 мес.) степень выраженности дисбиотических изменений у большинства обследованных студентов существенно нарастала. Полученные результаты исследований указывают на то, что состояние микробиоты кишечника у практически здоровых лиц может служить одним из объективных и информативных критериев полноценности питания.
Иногородние студенты, питание, дисбиоз
Короткий адрес: https://sciup.org/147238652
IDR: 147238652 | DOI: 10.17072/1994-9952-2022-2-137-142
Текст научной статьи Состояние микробиоценоза кишечника как критерий оценки качества питания
'■ ■ ,
Известно, что макроорганизм и его микробиом представляют собой сложную экологическую систему. При этом так называемая нормофлора кишечного биотопа вместе с организмом хозяина рассматривается как единая экосистема, которая является своеобразным экстракорпоральным органом макроорганизма [Костюкевич, 2011; Shenderov, 2012]. Микробиота кишечника, выполняя целый ряд важных функций, играет существенную роль в жизнедеятельности человека. В частности, представители облигатных (ин-дигенных, резидентных) бактерий обеспечивают колонизационную резистентность слизистой оболочки кишечника, препятствуя проникновению и развитию патогенных микроорганизмов, стимулируют функцию иммунной системы, регулируют функциональную активность кишечника [Перунова, Иванова, Бухарин, 2010; Беляева, 2014; Ситкин и др., 2021].
Нарушение качественного и количественного состава микробиоты кишечного биотопа принято называть дисбиозом кишечника. В таких случаях происходит «отмена» всех полезных функций облигатных микроорганизмов, что приводит к развитию дезадаптационного синдрома и, как следствие, к возникновению различных патологических состояний. Причинами развития дисбиоза кишечника могут быть различные факторы и прежде всего нарушение питания (пищевые дефициты, несбалансированное питание, отсутствие необходимых нутриентов и т. д.) [Шендеров, 2008]. Более того, состояние микробиоценоза кишечного биотопа, формирование его видового состава в существенной мере определяется режимом и качеством питания. Следовательно, анализ количественных и качественных показателей видового состава микробиома кишечника может служить объективным и информативным критерием оценки достаточности и полноценности питания. В связи с этим следует подчеркнуть, что иные способы оценки качества питания, как правило, являются инвазивными и трудоемкими.
Цель настоящей работы - изучить влияние изменений режима и качества питания на состояние микробиоценоза кишечника.
Материалы и методы исследований
Под наблюдением находилось 30 практически здоровых студентов 1 курса Пермского государственного медицинского университета им. академика Е.А. Вагнера, прибывших на учебу из других регионов и проживающих в общежитии. Преобладали лица женского пола – 26 чел. Средний возраст составлял 18 лет (±1 год). Оценку состояния микробиоценоза кишечника осуществляли с помощью традиционного бактериологического метода в соответствии с отраслевым стандартом1.
Исследования выполняли на базе бактериологической лаборатории ГБУЗ ПК «ГКБ № 7» (Пермь). Изучение качественного и количественного состава микробиоты толстой кишки проводили в динамике, трехкратно. Первый забор материала осуществляли в сентябре 2018 г. (на 2–3 неделях после приезда в г. Пермь). Повторное исследование проводили спустя 6 мес., а через 9 мес. после начала учебы – третье. В соответствии с отраслевым стандартом выявление бифидобактерий осуществляли на жидких средах лабораторного приготовления: Блаурокка и тиогликоливой; лактобактерий – МРС-4; энтерококков – Калины. Стафилококки выделяли на желточно-солевом агаре, грибы рода Candida – на среде Сабуро с добавлением антибиотиков. Для определения условно-патогенных энтеробактерий применяли дифференциально-диагностические среды Эндо и Левина; сальмонелл – селенитовый бульон с дальнейшим пересевом на строго селективную среду висмут-сульфат агар. Наряду с этим параллельно использовали кровяной агар – универсальную питательную среду для выявления гемофильных бактерий и гемолитической активности микроорганизмов. Посевы инкубировали при температуре 37ºC в течение 24–96 ч., после чего изучали наличие роста. Бифидо- и лактобактерии определяли на основании исследования их морфологии, тинкториальных и культуральных свойств. Под термином «лактобактерии» объединяли представителей индигенной микрофлоры – молочнокислые стрептококки и палочковидные формы, учитывая однозначность их функций. Индикацию энтерококков проводили высевом лактозонегативных колоний со среды Эндо на агар Клигера и среду Симонса. Идентификацию стафилококков различных видов и условно-патогенных энтеробактерий осуществляли с помощью соответствующих диагностических наборов «Staphytest-24» и «Enterotest-16» (ERBA LACHEMA, Чехия).
Статистическую обработку результатов проведенных исследований выполняли с помощью компьютерной программы «STATISTICA, 6.0». Оценку значимости различий между наборами цифровых данных, полученных в разные сроки обследования студентов, проводили с использованием непараметрического критерия Х2. Статистически достоверными считали различия при р < 0.05.
Результаты и их обсуждение
При первичном обследовании, выполненном в первые три недели сентября, различные дисбиотиче-ские отклонения количественного и качественного состава микробиоты кишечника регистрировали у трети студентов (табл. 1).
Таблица 1
Результаты обследования студентов на дисбиоз кишечника в различные сроки наблюдения [The results of the examination of students for intestinal dysbiosis at various follow-up periods]
Сроки обследования |
Количество обследованных, чел. |
Количество выявленных случаев дисбиоза, % |
P 1 |
P 2 |
P 3 |
Сентябрь 2018 г. |
30 |
33.33 |
0.035 |
0.778 |
0.048 |
Февраль 2019 г. |
28 |
61.54 |
|||
Май 2019 г. |
28 |
57.69 |
Примечание. Здесь, а также в табл. 2 и 3, Р – достоверность различий между результатами обследования в различные сроки наблюдения: Р 1 – 1 и 2; Р 2 – 2 и 3; Р 3 – 1 и 3.
Как следует из представленных данных, спустя 6 и 9 мес. после первичного (фонового) обследования количество студентов с дисбиозом кишечника существенно увеличивалось и соответственно составляло 61.54 и 57.69%. Выраженные негативные изменения в составе микробиома появлялись уже через полгода после начала наблюдения.
Выявленные дисбиотические проявления, прежде всего, характеризовались уменьшением концентрации основных облигатных представителей микробиоты кишечника – анаэробных микроорганизмов (табл. 2).
Таблица 2
Частота встречаемости изменений концентрации основных представителей индигенной микрофлоры кишечника у обследованных студентов
[The frequency of occurrence of changes in the concentration of the main representatives of the indigenous intestinal microflora in the examined students]
Микроорганизмы |
Частота встречаемости случаев изменений количества микроорганизмов в различные сроки обследования, % |
P 1 |
P 2 |
P 3 |
||
сентябрь 2018 г. |
февраль 2019 г. |
май 2019 г. |
||||
Bifidumbacterium spp. |
20.00 |
38.47 |
46.15 |
0.128 |
0.575 |
0.037 |
Lactobacterium spp . |
16.67 |
30.77 |
42.31 |
0.213 |
0.388 |
0.035 |
Escherichia coli типичные |
30.00 |
26.92 |
61.54 |
0.800 |
0.012 |
0.018 |
E. coli гемолитические |
26.67 |
30.77 |
19.23 |
0.735 |
0.337 |
0.511 |
E. coli лактозонегативные |
16.66 |
15.38 |
42.30 |
0.122 |
0.001 |
0.035 |
E. faecalis |
24.00 |
35.00 |
38.46 |
0.352 |
0.774 |
0.220 |
E. faecium |
30.00 |
35.00 |
53.85 |
0.713 |
0.163 |
0.071 |
Из приведенных сведений следует, что уже в первые сроки обследования у ряда студентов наблюдали изменение количества основных представителей доминантных видов кишечного биотопа бифидо- и лактобактерий, связанное со снижением титра соответственно до 107–108 КОЕ/г и 105–106 КОЕ/г. В дальнейшем количество таких лиц возрастало и к 9 мес. после начала наблюдений достигало соответственно 46.15 и 42.31%. Различия между данными первичного и завершающего обследований в том и в другом случаях статистически значимы. Снижение концентрации этих симбионтов в указанные сроки уже было более существенным, как правило, на 3–4 порядка.
Аналогичная тенденция прослеживалась в отношении концентрации других индигентных микроорганизмов, входящих в состав микробиоценоза кишечника, типичных Е. coli и бактерий рода Enterococcus . Если в сентябре уменьшение концентрации типичных Е. coli было отмечено у 30.0% обследованных, то к концу срока наблюдений уже у 61.54%. В отношении численности энтерококков выявлялись те же закономерности. При этом более существенным был процент лиц с уменьшением уровня E. faecium от 30.0% при первичном обследовании до 53.85% спустя 9 мес. Следует особо отметить, что во всех выявленных случаях снижение титра облигатных микроорганизмов, колонизирующих кишечник, колебалось от 1 до 2 порядков, причем к концу срока наблюдения оно было более выраженным: типичных Е. coli до 104–105
КОЕ/г, E. faecalis до 103–104 КОЕ/г и E. faecium до 109–1010 КОЕ/г. На фоне уменьшения титра типичных эшерихий возросло количество атипичных видов Е. coli – лактозонегативных и гемолитических форм. В частности, количество лиц с высоким титром лактозонегативных Е. coli в процессе наблюдения увеличивалось более чем в 2 раза.
За счет снижения уровня облигатных микроорганизмов в кишечнике регистрировали существенное увеличение концентрации микроорганизмов условно-патогенных видов, они колонизировали освободившиеся ниши. Это касается представителей как грамположительных, так и грамотрицательных бактерий, а также грибов рода Candida (табл. 3).
Таблица 3
Частота случаев превышения уровня условно-патогенных грамотрицательных и грамположительных бактерий у студентов в различные сроки обследования
[The frequency of cases of excess of the level of conditionally pathogenic gram-negative and gram-positive bacteria in students at various times of examination]
Микроорганизмы |
Число случаев превышения концентрации микроорганизмов в различные сроки обследования, % |
P 1 |
P 2 |
P 3 |
||
сентябрь 2018 г. |
февраль 2019 г. |
май 2019 г. |
||||
Klebsiella spp . |
13.33 |
34.61 |
61.53 |
0.060 |
0.053 |
0.001 |
С. freundii |
20.00 |
42.30 |
76.92 |
0.071 |
0.011 |
0.001 |
P. agglomerans |
13.33 |
23.07 |
7.69 |
0.343 |
0.125 |
0.497 |
Е. cloacae |
0.00 |
7.69 |
0.00 |
0.122 |
0.150 |
1.000 |
S. epidermidis |
20.00 |
11.53 |
7.69 |
0.390 |
0.639 |
0.190 |
Candida sp . |
3.33 |
3.85 |
3.85 |
0.918 |
1.000 |
0.918 |
Из представленных данных следует, что среди обнаруженных условно-патогенных транзиторных грамотрицательных бактерий чаще всего увеличивалось количество штаммов, принадлежащих к С. freundii . У 76.92% обследованных к концу срока наблюдения зафиксирован рост уровня этих энтеробактерий: их титр колебался от 106 до 108 КОЕ/г. В эти же сроки более чем у половины обследованных лиц констатировали и рост уровня культур Klebsiella , его значение, как правило, на 1–2 порядка превышало нормативные показатели. Изменение титра других условно-патогенных микроорганизмов, в том числе грампозитивных бактерий регистрировали реже, причем эти различия в динамике наблюдений не были статически значимыми.
Таким образом, у практически здоровых лиц, прибывших на учебу в другой город, в силу изменения режима и качества питания (что подтверждается их опросом) уже спустя 6 мес. выявлены те или иные дисбиотические изменения микробиоты кишечника. В новых условиях ассортимент используемых продуктов в сравнении с «домашним» значительно уменьшается, «страдает» и меняется регулярность приема пищи. Полноценным по объему и калорийности остается практически только ужин. В остальное время большинство студентов из-за существенной учебной нагрузки и отсутствия поблизости учреждений общественного питания употребляют в основном хлебобулочные изделия и бутерброды, зачастую всухомятку. Естественно, это не может не сказаться на состоянии микробиоценоза кишечника, поскольку питание является ведущим физиологическим фактором, определяющим функциональную активность кишечника и его микробиоты [Shori, 2016; Шевелева и др., 2020; Ким, Шевелева, 2021]. В условиях эксперимента на лабораторных животных было убедительно показано, что ограничение пищевого рациона приводит к развитию дисбиоза кишечника [Venema, Van den Abbeele, 2013].
На состояние микробиоценоза различных биотопов организма человека также негативно влияют стрессовые ситуации, связанные с отрывом от семьи, переездом в другой город и резким изменением образа жизни. Как следствие, более чем у половины (61.54%) обследованных иногородних студентов уже спустя полгода после начала учебы наблюдаются различные дисбиотические изменения микробиоты кишечного биотопа, причем количество таких студентов, по сравнению с первичным обследованием, выполненным в первые недели сентября, возрастало в 2 раза.
Обращает на себя внимание также достаточно значительный (30.0%) процент лиц с дисбиозом кишечника, выявляемый при первичном обследовании (фоновые значения). В связи с этим следует отметить, что по данным различных исследователей [Парфенов, Бондаренко, 2009; Перунова, Иванова, Бухарин, 2010; Стуров, Попов, Жуков, 2021], 30–50% практически здоровых лиц имеют те или иные изменения качественного или количественного состава микробиоты кишечника.
Выводы
-
1. Изменение режима и качества питания уже спустя полгода после начала учебы приводит к развитию дисбиоза кишечника у 61.541% из 28 обследованных иногородних студентов первого курса ВУЗа.
-
2. Состояние микробиома кишечника у практически здоровых лиц может служить одним из объективных и доступных информативных критериев полноценности питания.
Список литературы Состояние микробиоценоза кишечника как критерий оценки качества питания
- Беляева Е.А. Микробиота кишечника коренного жителя Центрального федерального округа Российской Федерации как основа для создания региональных пробиотических препаратов: автореф. дис. ... канд. биол. наук. М., 2014. 24 с.
- Ким Н.В., Шевелева С.А. Роль микробиома кишечника в норме и при алиментарно-зависимых заболеваниях // Вопросы питания. 2021. Т. 90, № 6 (538). С. 31-41. DOI: http://doi.org/10.33029/0042-8833-2021-90-6-31-41.
- Костюкевич О.И. Влияние кишечной микрофлоры на здоровье человека. От патогенеза к современным методам коррекции дисбиоза // РМЖ. 2011. Т. 19, № 5. С. 304-308.
- Парфенов А.И., Бондаренко В.М. Регуляция соотношения между нормальной и патологической микрофлорой кишечника // Гастроэнтерология. Приложение к журналу Consilium Medicum. 2009. № 2. С. 67-70.
- Перунова Н.Б., Иванова Е.В., Бухарин О.В. Микробная регуляция биологических свойств бактерий кишечного микросимбиоценоза человека // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2010. № 6. С. 76-80.
- Ситкин С.И. и др. Микробиота и дисбиоз кишечника при целиакии // Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2021. Т. 66, № 2. С. 116-122. DOI: 10.21508/1027-4065-2021-66-2-116-122.
- Стуров Н.В., Попов С.В., Жуков В.А. Современные подходы к коррекции микробиоты кишечника // Медицинский совет. 2021. № 4. C. 136-143. DOI: 10.21518/2079-701X-2021-4-136-143
- Шевелева С.А. и др. Микробиом кишечника: от эталона нормы к патологии // Вопросы питания. 2020. Т. 89, № 4. С. 35-51. DOI: 10.24411/0042-8833-2020-10040.
- Шендеров Б.А. Роль питания и кишечной микрофлоры в поддержании нутритивного гомеостаза человека // Вестник восстановительной медицины. 2008. № 1 (23). С. 12-13.
- Shenderov B.A. Gut Indigeneous Microbiota and Epigenetics // Microbial Ecology in Health and Disease. 2012. Vol. 23, № 1. Р. 1795.
- Shori A. Influence of food matrix on the viability of probiotic bacteria: A review based on dairy and non-dairy beverages // Food Bioscience. 2016. Vol. 13. P. 1-8.
- Venema K., van den Abbeele P. Experimental models of the gut microbiome // Best Practice & Research in Clinical Gastroenterology. 2013. Vol. 27, № 1. P. 115-126.