Создание биостойкой замасливающей композиции

Для улучшения технологических процессов как производства химических волокон, так и выработки нетканого полотна необходимо применять замасливатели и антистатики различной химической природы. В текстильном производстве используются замасливатели как в концентрированном виде, так и в виде эмульсий [1].

Адсорбционный слой замасливателя, образующийся на поверхности химических волокон, обеспечивает способность текстильного материала к переработке, в частности, снижает коэффициент трения и электризацию. Замасливатели оказывают существенное влияние на скорости проведения технологических процессов и потребительские свойства химических волокон [2].

По назначению замасливатели для производства, в частности, синтетических волокон можно разделить на два основных вида: замас-ливатели для формования нитей и расплава полимера (прядильные замасливатели) и финишные замасливатели, наносимые на готовую нить. Основное назначение прядильных замаслива-телей — обеспечить безобрывное протекание процесса формования, вытягивания и текстурирования нити, качественную и устойчивую намотку невытянутой нити, а основное назначение финишных замасливателей — обеспечить оптимальную перерабатывающую способность готовых нитей у потребителей [3].

Для достижения наилучшего результата при обработке волокон используют замасливатели, представляющие собой многокомпонентные системы, включающие натуральные и искусственные масла, эмульгаторы и антистатические вещества, а также эффективные добавки, улучшающие свойства волокон и обеспечивающие удаление вышеперечисленных веществ перед отделкой [4].

Большинство используемых на практике текстильных вспомогательных веществ пред- ставляют собой не индивидуальные ПАВ, а композиционные препараты на их основе. Необходимость создания таких препаратов обусловлена сложной физико-химической природой и многостадийностью отделочных процессов. В состав таких композиций входят хорошо сочетающиеся друг с другом компоненты, которые либо действуют аддитивно или синергически на одной стадии процесса, либо активизируются на различных его стадиях [5].

В связи с совершенствованием производства волокон, появлением новых видов оборудования для выработки нетканых полотен, производители предъявляют к замасливателям повышенные требования. Замасливатель должен равномерно покрывать поверхность пряжи и частично проникать в глубь нити, не снижать разрывной нагрузки волокна и не затруднять отбелку и крашение, легко удаляться из ткани промывкой водой без применения специальных растворителей, а материалы для приготовления замасливателей должны быть дешевыми и недефицитными, не быть токсичными и не вызывать коррозии металлических деталей текстильных машин, не застывать, не быть липкими и вязкими, не давать осадка и не сыпаться в процессе ткачества, не изменять окраску цветных основ [6].

Химические волокна в отличие от натуральных не имеют своей постоянной и определенной микрофлоры, но при определенных условиях эксплуатации способны подвергаться воздействию микроорганизмов. В биодеструкции текстильных материалов основное участие могут принимать наиболее распространенные виды микроорганизмов, отличающиеся повышенной адаптивностью [7].

Особое место в процессах биоповреждения занимают грибы и грибообразные организмы микроскопических размеров (микромицеты), для которых характерна высокая адаптационная способность, широкая амплитуда их измен- чивости, возникновение новых форм (мутации) и приспособление к экстремальным условиям среды. Микромицеты-деструкторы, образуя очаги плесневого поражения, воздействуя на структуру волокон, снижают их свойства. На процесс биоповреждения определенное влияние оказывают красители, присутствующие в текстильном материале, снижая или повышая скорость биодеструкции волокнообразующего полимера [8].

Для эффективной борьбы с плесневым поражением разработана целая система мероприятий, включающая применение химических средств защиты. Для борьбы с плесневыми грибами чаще всего используется термин «фунгициды» – средства для уничтожения грибов. Большинство фунгицидов изначально действуют фунгистатично (то есть останавливают либо притормаживают рост грибов), и только после стабильного воздействия на гриб эффект становится фунгицидным (то есть грибы полностью уничтожаются). Тип воздействия препарата — фунгицидный либо фунгистатический, зависит от концентрации. Для обеспечения длительного защитного эффекта биоциды добавляют непосредственно в материалы [9].

ПОСТАНОВКА ЗАДАЧИ

Основой для замасливающей композиции служил замасливатель IS-2, включающий метиловый эфир жирных кислот; неонол АФ 9-12; олеиновую кислоту. При смешении указанных компонентов посредством ультразвуковой обработки до достижения однородной массы образуется эмульсол, при растворении которого в воде образуются устойчивые прямые микроэмульсии (типа «масло в воде»).

Задача исследований заключается в подборе средства для уничтожения грибов и его концентрации для добавления в эмульсол с целью получения защитного эффекта от биоповреждений химических волокон и сохранения устойчивости эмульсии (замасливателя).

ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Для исследования подверженности замас-ливателя IS-2 плесневому поражению использовали микромицеты Alternaria alternata, Aspergillus niger, Aspergillus versicolor, aureobasidium pullulans, penicillium chrysogenum, Trichoderma viride, выделенные ранее из очагов плесневого пораже- ния современных строительных материалов и поддерживаемые в коллекции группы по биоповреждениям Института микробиологии НАН Беларуси на стандартных средах с глюкозой или сахарозой.

Споры грибов брали с поверхности колоний чистых культур стерильными гигиеническими ватными палочками и высевали на поверхность питательной среды четырьмя диаметральными штрихами.

Для приготовления агаризованной питательной среды, содержащей замасливатель IS-2 в качестве единственного источника углерода за основу взят минеральный комплекс среды Чапека-Докса (ЧДА) следующего состава ( г/л ): KH₂PO₄ – 0,7, K₂HPO₄ – 0,3, NaNO₃ – 2,0, MgSO₄ – 0,5, KCl – 0,5, FeSO₄ – 0,01, агар-агар – 15,0. Замасливатель в количестве 1 % добавляли в расплавленную среду непосредственно перед разливом в чашки Петри и тщательно перемешивали. Для сравнения использовали ЧДА с 1 % глюкозы.

Стабильность замасливателя с биоцидными добавками оценивали согласно ГОСТ 29188.391 «Изделия косметические. Методы определения стабильности эмульсии» по наличию или отсутствию расслоения после 5 минут центрифугирования при частоте вращения 100 ñ^-1 . [10].

Оценка грибостойкости замасливателя проводилась согласно ГОСТ 9.052-88 «Масла и смазки. Методы лабораторных испытаний на стойкость к воздействию плесневых грибов», метод 4 [11].

Перед испытаниями в 5 чашек Петри заливали по 30 мл расплавленной агаризованной среды Чапека-Докса с сахарозой в качестве источника углерода. После застывания в среде было сделано по 5 лунок глубиной около 5 ìì с помощью стерильного сверла. В лунки заливали 0,2 ìë замасливателя и опрыскивали суспензией спор следующих грибов: Aspergillus niger, Aspergillus terreus, Paecilomyces variotii, Penicillium chrysogenum, Penicillium verruculosum.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Из предоставленного для исследования 10 % водного раствора замасливателя IS-2 выделялись бактерии и микроскопические мицелиальные грибы рода Penicillium .

Для первичного анализа подверженности плесневому поражению 10 % раствор замасли-вателя помесщали в лунки, сделанные в агари-зованной среде Чапека-Докса с глюкозой, засеянной газоном спорами грибов, выделенных из очагов плесневого поражения в монокультуре и смеси.

Через 7 суток культивирования в варианте с грибом P.chrysogenum лунки оказались свободными от замасливателя, а газон вокруг лунок имел более светлую окраску, вероятно, вследствие присутствия продуктов частичного расщепления компонентов эмульсии (рисунок 1).

В других вариантах такого явления не наблюдалось. Интересно отметить, что у гриба T.viride на среде с глюкозой был едва заметный паутинистый мицелий, а в лунках и вокруг их интенсивное спороношение. Хорошо развивался по краям лунки и A. niger (рисунок 1).

Высев грибных спор диаметральными штрихами на агаризованную питательную среду с замасливателем в качестве единственного источника углерода показал, что кроме выше- указанных грибов утилизировать компоненты композиции IS-2 способен также гриб A. pul-lulans, тогда как у A. alternata и A. versicolor происходило лишь прорастание спор и формирование коротких неветвящихся гиф (рисунок 2).

Основные культуральные признаки грибов на среде с замасливателем по сравнению с традиционной средой Чапека с 2 % глюкозы практически не изменились, но интенсивность роста по штрихам была несколько ниже (рисунок 3).

При выборе фунгицидной добавки для придания композиции замасливателя способности подавлять жизнедеятельность плесневых грибов была проведена проверка различных классов биоцидных соединений на совместимость и стабильности эмульсии. Для этого проводили оценку коллоидной стабильности согласно ГОСТ 29188.3-91 «Изделия косметические. Методы определения стабильности эмульсии», анализируя разделение эмульсии на жировую и водную часть при центрифугировании.

Выявлено отсутствие расслоения эмульсии

Чашки Петри через 7 суток после посева

Рисунок 1 – Рост микроскопических грибов на замасливателе IS-2 , помещенном в лунки на агаризованной среде Чапека-Докса

Рисунок 2 – Рост тест-культур микроскопических грибов на агаризованной среде Чапека-Докса с 2 % замасливателя IS-2 в качестве единственного источника углерода

Рисунок 3 – Рост тест-культур микроскопических грибов на агаризованной среде Чапека-Докса с 2 % глюкозы в качестве единственного источника углерода

после центрифугирования в присутствии четвертичных аммониевых соединений (ЧАС) и эфиров п -оксибензойной кислоты.

Из группы ЧАС наиболее широкое использование в различных отраслях промышленности получил бензалконий хлорид (алкилбензилди-метиламмониум хлорид), сочетающий высокую биоцидную активностью с низкой токсичностью для человека.

Однако результаты тестирования фунги-токсичности замасливателя с различным содержанием бензалкониум хлорида луночным методом с использованием газонной культуры P.chrysogenum показали отсутствие четко выраженной зоны ингибирования тест-культуры и рост небольших колоний вокруг лунки по краю эмульсии даже при 0,5 % содержании данного препарата (рисунок 4).

Причиной этого, возможно, является хорошая растворимость ЧАС в воде и низкая в масляной основе эмульсии, которая используется грибом в качестве источника питания. Эфиры п -окси-бензойной кислоты, широко использующиеся в качестве консервантов для косметических эмульсий, напротив, хорошо совмещаются с жироподобными соединениями.

При проведении аналогичного опыта с про-пазолом (пропиловый эфир п -оксибензойной кислоты) рост P.chrysogenum на замасливателе отсутствовал даже при низком содержании биоцидного препарата (0,1 %).

Грибостойкость замасливателя с различным содержанием бензалконий хлорида и пропа- зола была также проверена по методу 4 ГОСТ 9.052-88. Перед испытаниями в 5 чашек Петри залили по 30 мл расплавленной агаризован-ной среды Чапека-Докса с сахарозой в качестве источника углерода. После застывания в среде было сделано по 5 лунок глубиной около 5 мм с помощью стерильного сверла. В лунки залили 0,2 мя замасливателя и опрыскали суспензией спор видов, рекомендуемых ГОСТ для испытания на грибостойкость косметических эмульсий: Aspergillus niger, Aspergillus terreus, Paecilomyces variotii, Penicillium chrysogenum, Penicillium verruculosum.

Через 14 суток инкубации при температуре 28 ° C чашки Петри микроскопировали в отраженном свете при 60-кратном увеличении. Результаты исследования показали высокую грибостойкость замасливателя IS-2 с 0,2 % про-пазола. Во всех чашках на поверхности питательной среды был сплошной газон спороносящего мицелия, но на замасливателе ни в одной из лунок проросших спор грибов не выявлено. При более низком содержании биоцида ингибирующий эффект был менее выражен (рисунок 5).

Для более точной визуальной оценки грибо-стойкости замасливателя IS-2 с 0,2 % пропазо-ла использовали микроскопирование. Замасли-ватель, инокулированный спорами плесневых грибов, рекомендуемых ГОСТ9.052-88, капнули в лунку на предметном стекле, накрыли покровным стеклом, поместили в чашки Петри с увлажненным бумажным фильтром и проинкубировали в течение 7 суток при температуре 28 ° C.

Рисунок 4 - Рост Penicillium chrysogenum на замасливателе IS-2 с различным содержанием бензалконий хлорида (БХ), помещенном в лунки на агаризованной среде Чапека-Докса

Так как количество замасливателя было недостаточно, чтобы заполнить лунку полностью, в ее центре под микроскопом в проходящем свете в варианте с 0,1 % пропазола наблюдались единичные грибные гифы, а при концентрации данного биоцида 0,2 % они полностью отсутствовали (рисунок 6).

Таким образом, пропиловый эфир ï -оксибен-зойной кислоты в концентрации 0,2 % придает замасливателю IS-2 высокую грибостойкость. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Изучение закономерностей роста микроми-цетов, принадлежащих различным родам среде Чапека-Докса с 1 % замасливающей композиции IS-2 в качестве единственного источника углерода показало, что в составе замасливателя есть компоненты, которые могут служить питатель- ным субстратом для развития плесневых грибов Aspergillus niger, aureobasidium pullulance, penicillium chrysogenum, Trichoderma viride.

При выборе фунгицидной добавки для придания композиции замасливателя способности подавлять жизнедеятельность плесневых грибов выявлена высокая стабильность эмульсии после испытания согласно ГОСТ 29188.3 при добавлении четвертичных аммониевых соединений и эфиров ï- оксибензойной кислоты.

Высокую грибостойкость 10 % водному раствору замасливателя IS-2 , согласно результатам тестирования по методу 4 ГОСТ 9.052, придал пропиловый эфир ï -оксибензойной кислоты в концентрации 0,2 %.

Рисунок 5 – Результаты испытания на грибостойкость замасливателя IS-2 с биоцидными добавками по ГОСТ 9.052-88

Рисунок 6 – Прорастание спор Aspergillus niger в замасливателе IS-2 с 0,1 % и 0,2 % пропазола на предметном стекле с лункой