Спектрофотометрические методы изучения процессов перекисного окисления липидов в остром периоде ишемического инсульта
Автор: Скорикова В.Г., Кичерова О.А., Рейхерт Л.И., Журавлева Т.Д., Валитов Н.С.
Журнал: Научный форум. Сибирь @forumsibir
Рубрика: Медицина
Статья в выпуске: 1 т.3, 2017 года.
Бесплатный доступ
Перекисное окисление липидов является неотъемлемой составляющей синдромов эндотелиальной дисфункции и эндогенной интоксикации, характеризующих патогенез ишемического инсульта. Свободные радикалы обладают высокой реакционной способностью, определить их обычными химическими методами невозможно. Современные варианты спектрофотометрического анализа позволяют в одной пробе биологического материала определить раздельно первичные и вторичные продукты перекисного окисления липидов, а также конечные продукты окисления.
Ишемический инсульт, оксидантный стресс, перекисное окисление липидов, спектрофотометр
Короткий адрес: https://sciup.org/140220466
IDR: 140220466
Spectrophotometric methods for the study of lipid peroxidation in acute ischemic stroke
Lipid peroxidation is an essential component of the syndrome of endothelial dysfunction and endogenous intoxication characterizing the pathogenesis of ischemic stroke. Free radicals are highly reactive, it is impossible to determine their conventional chemical methods. Modern versions of spectrophotometric analysis allow to determine separate primary and secondary lipid peroxidation products in a sample of biological material, as well as the final products of oxidation.
Текст научной статьи Спектрофотометрические методы изучения процессов перекисного окисления липидов в остром периоде ишемического инсульта
Неотъемлемым звеном патохимического каскада в развитии любого патологического процесса является образование свободных радикалов. Перекисное окисление липидов (ПОЛ) – это важная составляющая синдромов эндотелиальной дисфункции и эндогенной интоксикации, характеризующих патогенез ишемического инсульта [5].
Особое значение процессам свободнорадикального окисления липидов в развитии и течении острых нарушений мозгового кровообращения придается, прежде всего, по причине повышенной чувствительности головного мозга к действию свободных радикалов (50% сухого вещества мозга составляют ненасыщенные жирные кислоты – основной субстрат свободнорадикального окисления) [3, 4]. Дополнительными факторами развития оксидантного стресса в ткани мозга являются высокое содержание в ней аскорбата (в 100 раз больше, чем в периферической крови), участвующего в качестве прооксиданта в неферментативных процессах ПОЛ [2].
Диеновые конъюгаты, являющиеся первичными продуктами ПОЛ, относятся к токсическим метаболитам, которые оказывают повреждающее действие на липопротеиды, белки, ферменты и нуклеиновые кислоты [6]. Первичные продукты ПОЛ являются весьма нестойкими и подвергаются дальнейшей окислительной дегенерации. При этом накапливаются вторичные продукты окисления, наиболее важными из которых являются ненасыщенные альдегиды. Продуктами взаимодействия малонового диальдегида с аминосодержащими соединениями являются шиффовы основания, непрерывное накопление которых дестабилизирует мембраны и способствует деструкции клеток [2, 3].
Радикалы обладают высокой реакционной способностью, определить их обычными химическими методами невозможно.
Современные варианты спектрофотометрического анализа позволяют в одной пробе биологического материала определить раздельно продукты перекисного окисления липидов: первичные – диеновые конъюгаты, вторичные – кетодиены и сопряженные триены и конечные продукты окисления – основания Шиффа [1, 6].
Продукты ПОЛ экстрагируют смесью гептан – изопропанол, определяют содержание спектрофотометрически с раздельной регистрацией липоперокси-дов в гептановой и изопропанольной фазах липидного экстракта на длинах волн 220, 232, 278 и 420 нм [1]. Результаты выражают в единицах оптической плотности – Е. Анализируют следующие группы веществ:
Е 220 – вещества с изолированными двойными связями (ИДС), потенциальные продукты ПОЛ, измерение на длине волны 220нм;
Е232 – диеновые конъюгаты (ДК) ,первичные продукты ПОЛ, содержащие остатки жирных кислот с сопряженными двойными связями, т.е. метаболически неустойчивые и подвергающиеся дальнейшее пероксидации и разрушению, регистрируются на длине волны 232 нм;
Е278 – сумма кетодиенов и сопряженных триенов (КД+СТ)-продукты распада ненасыщенных и полине-насыщенных жирных кислот, в том числе остатков жирных кислот разрушенных фосфолипидных комплексов клеточных мембран, регистрируются на длине волны 278нм.
Е420 – шиффовы основания, продукты нейтрализации токсичных веществ образующихся в реакциях пероксидации, их классифицируют как шлаки, балласт, подлежащий выведению из организма, их непрерывное накопление дестабилизирует мембраны и способствует деструкции клеток [6].
Раздельная регистрация продуктов ПОЛ в гептане и изопропаноле дает возможность более дифференцированно оценивать их содержание по степени насыщенности и окисленности. Это связано с тем, что изопропанолом экстрагируются преимущественно липиды, содержащие ненасыщенные жирные кислоты, в том числе те, которые образовались в результате процессов пероксидации, а в гептановой фазе преобладают соединения с насыщенными жирными кислотами [1]. Используя результаты замеров оптической плотности продуктов ПОЛ в гептане и изопропаноле, вычисляются относительные показатели: индексы окислен-ности липидных компонентов (ИОЛ) и степень ненасыщенности остатков жирных кислот липидных молекул (СНН).
СНН остатков жирных кислот продуктов ПОЛ в эритроцитах может косвенно отражать проницаемость и текучесть клеточных мембран – при низкой СНН проницаемость и текучесть мембран снижены, при высокой СНН мембранные комплексы более лабильны и легче подвергаются разрушению.
Цель исследования: оценка показателей оксидантного стресса в остром периоде ишемического инсульта спектрофотометрическими методами с целью определения соответствия полученных результатов литературным данным, с целью рационализации использования данного метода.
Материалы и методы исследования:
Обследованы 57 пациентов в остром периоде ишемического инсульта, которым произведен забор крови для специальных спектрофотометрических исследований. Контрольную группу составили 13 пациентов без острых цереброваскулярных событий в анамнезе, сопоставимые по половозрастным признакам и сопутствующим заболеваниям с основной группой.
Определение продуктов пероксидации липидов эритроцитов в гептановой и изопропанольной фазах липидного экстракта производили на спектрофотометре СФ-2000: Г220, Г232, Г278, Г420 – продукты пероксидации липидов в гептановой фазе липидного экстракта, замеренные на СФ-2000 на длинах волн 220, 232, 278, 420 нм, соответственно; И 220 , И 232 , И 278 , И 420 – продукты пероксидации липидов в изопропанольной фазе липидного экстракта, замеренные на СФ-2000 на длинах волн 220, 232, 278, 420нм, соответственно.
При этом Г(И) 220 - вещества с изолированными двойными связями (ИДС), Г(И)232-диеновые конъюгаты (ДК), Г(И) 278 -сумма кетодиенов и сопряженных триенов (СТ+КД), Г(И)420-шиффовы основания, в гептановой или изопропанольной фазах соответственно.
Индекс окисленности (ИО) липидов рассчитывали как отношение содержания продуктов ПОЛ гептановой и изопропанольной фаз к содержанию веществ с изолированными двойными связями.
ИО ДК гептановой фазы (ИОЛГ232): ИОЛГ232 = Г 232 / Г 220 ;
ИО (КТ +СТ) гептановой фазы (ИОЛГ278): ИОЛГ27 8 = Г27 8 / Г22 0 ;
ИО ДК изопропанольной фазы (ИОЛИ232): ИОЛИ2 3 2 = И2 3 2 / И22 0 ;
ИО (КД + СТ) изопропанольной фазы (ИОЛИ278): ИОЛИ278 = И278 / И220.
СНН рассчитывали как отношение липидных компонентов изопропанольной фазы к липидным компонентам гептановой фазы на соответствующих длинах волн: степень ненасыщенности ДК: СНН232 = И232 / Г 232 ;
степень ненасыщенности (КД + СТ): СНН278 = И 278 / И 232.
Статистический анализ производили с использованием программы IBMSPSSStatistics 21. Распределение количественных данных проверяли с помощью теста Колмогорова-Смирнова. При нормальном распределении данных сравнение 2-х независимых групп проводили при помощи критерия Стьюдента, а динамику показателей в каждой группе парным критерием Стьюдента. При распределении данных, отличном от нормального, для сравнения применяли критерий Манна-Уитни для независимых 2-х групп и критерий Вилкоксона для сравнения динамики показателей в каждой группе.
В ходе анализа результатов спектрофотометрических исследований были получены следующие результаты (табл. 1):
Таблица 1
Показатели оксидантного стресса в исследуемой группе в сравнении с контрольной
|
Показатель |
Исследуемая группа |
Контрольная группа |
р |
||
|
M |
m |
M |
m |
||
|
СННИ232 |
1,02 |
0,155* |
0,24 |
0,126 |
<0,001 |
|
СННИ278 |
1,33 |
0,380* |
2,37 |
0,445 |
0,005 |
|
Г232/Г220 |
0,89 |
0,067* |
0,65 |
0,020 |
0,037 |
|
Г278/Г220 |
0,67 |
0,056* |
0,19 |
0,022 |
<0,001 |
|
И232И220 |
0,77 |
0,094 |
0,59 |
0,164 |
0,645 |
|
И278И220 |
0,39 |
0,047* |
1,07 |
0,381 |
0,013 |
|
Г220 |
0,24 |
0,040 |
0,19 |
0,037 |
0,787 |
|
Г232 |
0,21 |
0,029 |
0,12 |
0,022 |
0,363 |
|
Г278 |
0,13 |
0,012* |
0,03 |
0,003 |
<0,001 |
|
Г420 |
0,02 |
0,004 |
0,008 |
0,003 |
0,620 |
|
И220 |
0,31 |
0,058* |
0,05 |
0,027 |
0,001 |
|
И232 |
0,18 |
0,031* |
0,04 |
0,021 |
0,002 |
|
И278 |
0,12 |
0,026 |
0,116 |
0,053 |
0,989 |
|
И420 |
0,08 |
0,009 |
0,052 |
0,005 |
0,250 |
Примечание: p<0,05; * - p – достоверность статистических различий между показателями исследуемой группы и контрольной группы
В результате спектрофотометрическтх исследований крови пациентов в острейшем периоде ишемического инсульта выявлены признаки активации процессов перекисного окисления липидов, а, следовательно, явлений эндотелиальной дисфункции и эндогенной интоксикации: увеличены показатели степени ненасы- щенности ДК и (КТ+СТ), индексы окисленности ДК и (КТ и СТ) гептановой фазы, продуктов пероксидации липидов, экстрагируемых смесью гептан-изопропанол (ДК изопропанольной и гептановой фаз, (КТ и СТ) гептановой фазы, веществ с ИДС и ШО изопропаноль-ной фазы).
Полученные результаты соответствуют литературным данным о роли окислительно - восстановительных процессов в патогенезе острой ишемии вещества головного мозга. Таким образом, спектрофотометрические методы определения показателей оксидантного стресса в остром периоде ишемического инсульта достоверны, их использование экономически выгодно. Целесообразно использование данных методик в более крупных научно - исследовательских проектах.
SPECTROPHOTOMETRIC METHODS
Список литературы Спектрофотометрические методы изучения процессов перекисного окисления липидов в остром периоде ишемического инсульта
- Волчегорский И.А., Налимов А.Г., Яровинский Б.Г., и др. Сопоставление различных подходов к определению продуктов пере-кисного окисления липидов в гептан-изопропанольных экстрактах крови//Вопросы мед. химии. -1989. -№ 1.
- Дурова М.В., Л.И Рейхерт, И.В.Ральченко. Коррекция системы антиоксидантной защиты при ишемическом инсульте витаминами-антиоксидантами//Клинико-фармацевтический вестник. -2009. -№ 1. -С. 89.
- Острые и хронические проблемы цереброваскулярной патологии/Рейхерт Л.И., Кичерова О.А., Прилепская О.А. -Тюмень, 2015. -156 с.
- Рейхерт Л.И., Клушин Д.Ф., Крылов В.И. Роль структурнофункциональной дезорганизации клеточных мембран в патогенезе мозговых инсультов. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. -1987. -Вып. 1. -С. 23-26.
- Скорикова В.Г., Кичерова О.А., Асеева К.С., Семешко С.А.Предикторы эффективности тромболитической терапии при ишемическом инсульте. Медицинская наука и образование Урала. -2014. -№ 2, вып. 2 (78). -С. 69-71.
- Чернадчук С.С., Федорко Н.Л., Захариева З.Е., Будняк А.К., Петров С.А., Запорожченко А.В. Методические указания для выполнения экспериментальных исследований по большому специальному практикуму «Методы оценки состояния оксидантной и антиоксидантной систем биологических объектов». -Одесса, 2010. -С. 16-18.