Спектрофотометрические методы изучения процессов перекисного окисления липидов в остром периоде ишемического инсульта
Автор: Скорикова В.Г., Кичерова О.А., Рейхерт Л.И., Журавлева Т.Д., Валитов Н.С.
Журнал: Научный форум. Сибирь @forumsibir
Рубрика: Медицина
Статья в выпуске: 1 т.3, 2017 года.
Бесплатный доступ
Перекисное окисление липидов является неотъемлемой составляющей синдромов эндотелиальной дисфункции и эндогенной интоксикации, характеризующих патогенез ишемического инсульта. Свободные радикалы обладают высокой реакционной способностью, определить их обычными химическими методами невозможно. Современные варианты спектрофотометрического анализа позволяют в одной пробе биологического материала определить раздельно первичные и вторичные продукты перекисного окисления липидов, а также конечные продукты окисления.
Ишемический инсульт, оксидантный стресс, перекисное окисление липидов, спектрофотометр
Короткий адрес: https://sciup.org/140220466
IDR: 140220466
Текст научной статьи Спектрофотометрические методы изучения процессов перекисного окисления липидов в остром периоде ишемического инсульта
Неотъемлемым звеном патохимического каскада в развитии любого патологического процесса является образование свободных радикалов. Перекисное окисление липидов (ПОЛ) – это важная составляющая синдромов эндотелиальной дисфункции и эндогенной интоксикации, характеризующих патогенез ишемического инсульта [5].
Особое значение процессам свободнорадикального окисления липидов в развитии и течении острых нарушений мозгового кровообращения придается, прежде всего, по причине повышенной чувствительности головного мозга к действию свободных радикалов (50% сухого вещества мозга составляют ненасыщенные жирные кислоты – основной субстрат свободнорадикального окисления) [3, 4]. Дополнительными факторами развития оксидантного стресса в ткани мозга являются высокое содержание в ней аскорбата (в 100 раз больше, чем в периферической крови), участвующего в качестве прооксиданта в неферментативных процессах ПОЛ [2].
Диеновые конъюгаты, являющиеся первичными продуктами ПОЛ, относятся к токсическим метаболитам, которые оказывают повреждающее действие на липопротеиды, белки, ферменты и нуклеиновые кислоты [6]. Первичные продукты ПОЛ являются весьма нестойкими и подвергаются дальнейшей окислительной дегенерации. При этом накапливаются вторичные продукты окисления, наиболее важными из которых являются ненасыщенные альдегиды. Продуктами взаимодействия малонового диальдегида с аминосодержащими соединениями являются шиффовы основания, непрерывное накопление которых дестабилизирует мембраны и способствует деструкции клеток [2, 3].
Радикалы обладают высокой реакционной способностью, определить их обычными химическими методами невозможно.
Современные варианты спектрофотометрического анализа позволяют в одной пробе биологического материала определить раздельно продукты перекисного окисления липидов: первичные – диеновые конъюгаты, вторичные – кетодиены и сопряженные триены и конечные продукты окисления – основания Шиффа [1, 6].
Продукты ПОЛ экстрагируют смесью гептан – изопропанол, определяют содержание спектрофотометрически с раздельной регистрацией липоперокси-дов в гептановой и изопропанольной фазах липидного экстракта на длинах волн 220, 232, 278 и 420 нм [1]. Результаты выражают в единицах оптической плотности – Е. Анализируют следующие группы веществ:
Е 220 – вещества с изолированными двойными связями (ИДС), потенциальные продукты ПОЛ, измерение на длине волны 220нм;
Е232 – диеновые конъюгаты (ДК) ,первичные продукты ПОЛ, содержащие остатки жирных кислот с сопряженными двойными связями, т.е. метаболически неустойчивые и подвергающиеся дальнейшее пероксидации и разрушению, регистрируются на длине волны 232 нм;
Е278 – сумма кетодиенов и сопряженных триенов (КД+СТ)-продукты распада ненасыщенных и полине-насыщенных жирных кислот, в том числе остатков жирных кислот разрушенных фосфолипидных комплексов клеточных мембран, регистрируются на длине волны 278нм.
Е420 – шиффовы основания, продукты нейтрализации токсичных веществ образующихся в реакциях пероксидации, их классифицируют как шлаки, балласт, подлежащий выведению из организма, их непрерывное накопление дестабилизирует мембраны и способствует деструкции клеток [6].
Раздельная регистрация продуктов ПОЛ в гептане и изопропаноле дает возможность более дифференцированно оценивать их содержание по степени насыщенности и окисленности. Это связано с тем, что изопропанолом экстрагируются преимущественно липиды, содержащие ненасыщенные жирные кислоты, в том числе те, которые образовались в результате процессов пероксидации, а в гептановой фазе преобладают соединения с насыщенными жирными кислотами [1]. Используя результаты замеров оптической плотности продуктов ПОЛ в гептане и изопропаноле, вычисляются относительные показатели: индексы окислен-ности липидных компонентов (ИОЛ) и степень ненасыщенности остатков жирных кислот липидных молекул (СНН).
СНН остатков жирных кислот продуктов ПОЛ в эритроцитах может косвенно отражать проницаемость и текучесть клеточных мембран – при низкой СНН проницаемость и текучесть мембран снижены, при высокой СНН мембранные комплексы более лабильны и легче подвергаются разрушению.
Цель исследования: оценка показателей оксидантного стресса в остром периоде ишемического инсульта спектрофотометрическими методами с целью определения соответствия полученных результатов литературным данным, с целью рационализации использования данного метода.
Материалы и методы исследования:
Обследованы 57 пациентов в остром периоде ишемического инсульта, которым произведен забор крови для специальных спектрофотометрических исследований. Контрольную группу составили 13 пациентов без острых цереброваскулярных событий в анамнезе, сопоставимые по половозрастным признакам и сопутствующим заболеваниям с основной группой.
Определение продуктов пероксидации липидов эритроцитов в гептановой и изопропанольной фазах липидного экстракта производили на спектрофотометре СФ-2000: Г220, Г232, Г278, Г420 – продукты пероксидации липидов в гептановой фазе липидного экстракта, замеренные на СФ-2000 на длинах волн 220, 232, 278, 420 нм, соответственно; И 220 , И 232 , И 278 , И 420 – продукты пероксидации липидов в изопропанольной фазе липидного экстракта, замеренные на СФ-2000 на длинах волн 220, 232, 278, 420нм, соответственно.
При этом Г(И) 220 - вещества с изолированными двойными связями (ИДС), Г(И)232-диеновые конъюгаты (ДК), Г(И) 278 -сумма кетодиенов и сопряженных триенов (СТ+КД), Г(И)420-шиффовы основания, в гептановой или изопропанольной фазах соответственно.
Индекс окисленности (ИО) липидов рассчитывали как отношение содержания продуктов ПОЛ гептановой и изопропанольной фаз к содержанию веществ с изолированными двойными связями.
ИО ДК гептановой фазы (ИОЛГ232): ИОЛГ232 = Г 232 / Г 220 ;
ИО (КТ +СТ) гептановой фазы (ИОЛГ278): ИОЛГ27 8 = Г27 8 / Г22 0 ;
ИО ДК изопропанольной фазы (ИОЛИ232): ИОЛИ2 3 2 = И2 3 2 / И22 0 ;
ИО (КД + СТ) изопропанольной фазы (ИОЛИ278): ИОЛИ278 = И278 / И220.
СНН рассчитывали как отношение липидных компонентов изопропанольной фазы к липидным компонентам гептановой фазы на соответствующих длинах волн: степень ненасыщенности ДК: СНН232 = И232 / Г 232 ;
степень ненасыщенности (КД + СТ): СНН278 = И 278 / И 232.
Статистический анализ производили с использованием программы IBMSPSSStatistics 21. Распределение количественных данных проверяли с помощью теста Колмогорова-Смирнова. При нормальном распределении данных сравнение 2-х независимых групп проводили при помощи критерия Стьюдента, а динамику показателей в каждой группе парным критерием Стьюдента. При распределении данных, отличном от нормального, для сравнения применяли критерий Манна-Уитни для независимых 2-х групп и критерий Вилкоксона для сравнения динамики показателей в каждой группе.
В ходе анализа результатов спектрофотометрических исследований были получены следующие результаты (табл. 1):
Таблица 1
Показатели оксидантного стресса в исследуемой группе в сравнении с контрольной
Показатель |
Исследуемая группа |
Контрольная группа |
р |
||
M |
m |
M |
m |
||
СННИ232 |
1,02 |
0,155* |
0,24 |
0,126 |
<0,001 |
СННИ278 |
1,33 |
0,380* |
2,37 |
0,445 |
0,005 |
Г232/Г220 |
0,89 |
0,067* |
0,65 |
0,020 |
0,037 |
Г278/Г220 |
0,67 |
0,056* |
0,19 |
0,022 |
<0,001 |
И232И220 |
0,77 |
0,094 |
0,59 |
0,164 |
0,645 |
И278И220 |
0,39 |
0,047* |
1,07 |
0,381 |
0,013 |
Г220 |
0,24 |
0,040 |
0,19 |
0,037 |
0,787 |
Г232 |
0,21 |
0,029 |
0,12 |
0,022 |
0,363 |
Г278 |
0,13 |
0,012* |
0,03 |
0,003 |
<0,001 |
Г420 |
0,02 |
0,004 |
0,008 |
0,003 |
0,620 |
И220 |
0,31 |
0,058* |
0,05 |
0,027 |
0,001 |
И232 |
0,18 |
0,031* |
0,04 |
0,021 |
0,002 |
И278 |
0,12 |
0,026 |
0,116 |
0,053 |
0,989 |
И420 |
0,08 |
0,009 |
0,052 |
0,005 |
0,250 |
Примечание: p<0,05; * - p – достоверность статистических различий между показателями исследуемой группы и контрольной группы
В результате спектрофотометрическтх исследований крови пациентов в острейшем периоде ишемического инсульта выявлены признаки активации процессов перекисного окисления липидов, а, следовательно, явлений эндотелиальной дисфункции и эндогенной интоксикации: увеличены показатели степени ненасы- щенности ДК и (КТ+СТ), индексы окисленности ДК и (КТ и СТ) гептановой фазы, продуктов пероксидации липидов, экстрагируемых смесью гептан-изопропанол (ДК изопропанольной и гептановой фаз, (КТ и СТ) гептановой фазы, веществ с ИДС и ШО изопропаноль-ной фазы).
Полученные результаты соответствуют литературным данным о роли окислительно - восстановительных процессов в патогенезе острой ишемии вещества головного мозга. Таким образом, спектрофотометрические методы определения показателей оксидантного стресса в остром периоде ишемического инсульта достоверны, их использование экономически выгодно. Целесообразно использование данных методик в более крупных научно - исследовательских проектах.
SPECTROPHOTOMETRIC METHODS
Список литературы Спектрофотометрические методы изучения процессов перекисного окисления липидов в остром периоде ишемического инсульта
- Волчегорский И.А., Налимов А.Г., Яровинский Б.Г., и др. Сопоставление различных подходов к определению продуктов пере-кисного окисления липидов в гептан-изопропанольных экстрактах крови//Вопросы мед. химии. -1989. -№ 1.
- Дурова М.В., Л.И Рейхерт, И.В.Ральченко. Коррекция системы антиоксидантной защиты при ишемическом инсульте витаминами-антиоксидантами//Клинико-фармацевтический вестник. -2009. -№ 1. -С. 89.
- Острые и хронические проблемы цереброваскулярной патологии/Рейхерт Л.И., Кичерова О.А., Прилепская О.А. -Тюмень, 2015. -156 с.
- Рейхерт Л.И., Клушин Д.Ф., Крылов В.И. Роль структурнофункциональной дезорганизации клеточных мембран в патогенезе мозговых инсультов. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. -1987. -Вып. 1. -С. 23-26.
- Скорикова В.Г., Кичерова О.А., Асеева К.С., Семешко С.А.Предикторы эффективности тромболитической терапии при ишемическом инсульте. Медицинская наука и образование Урала. -2014. -№ 2, вып. 2 (78). -С. 69-71.
- Чернадчук С.С., Федорко Н.Л., Захариева З.Е., Будняк А.К., Петров С.А., Запорожченко А.В. Методические указания для выполнения экспериментальных исследований по большому специальному практикуму «Методы оценки состояния оксидантной и антиоксидантной систем биологических объектов». -Одесса, 2010. -С. 16-18.