Структурно-функциональная характеристика фотосинтетического аппарата галофитов, отличающихся по типу накопления солей

Структурно-функциональная характеристика фотосинтетического аппарата галофитов, отличающихся по типу накопления солей

Автор: Розенцвет Ольга Анатольевна, Нестеров Виктор Николаевич, Богданова Елена Сергеевна

Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc

Рубрика: Наземные экосистемы

Статья в выпуске: 3-7 т.15, 2013 года.

Бесплатный доступ

Исследовали структурные (состав и содержание липидов) и функциональные (концентрация хлорофиллов a и b, каротиноидов, соотношение хлорофиллов a/b, соотношение хлорофиллы/каротиноиды, доля хлорофиллов в ССК) особенности фотосинтетического аппарата эвгалофитов, криногалофитов и гликогалофитов. Установлено, что разделение растений по соленакапливающему признаку поддерживается различным соотношением содержания пигментов и липидов, а вариации в их содержании позволяют судить об экологической пластичности фотосинтетического аппарата галофитов в условиях засушливого климата и высокого содержания солей в почве.

Галофиты, регуляция солевого обмена, пигменты, липиды, вариативность

Короткий адрес: https://sciup.org/148202183

IDR: 148202183

Список литературы Структурно-функциональная характеристика фотосинтетического аппарата галофитов, отличающихся по типу накопления солей

  • Аринушкина Е.В. Руководство по химическому анализу почв. Изд. Московского Университета, 1970. 489 с.
  • Балнокин Ю.В., Строганов Б.П. Солевой обмен и проблема солеустойчивости растений. Новые направления в физиологии растений. М.: Наука, 1985. С. 199-213.
  • Лысенко Т.М., Митрошенкова А.Е., Шарпило Н.И., Круглов А.А. Материалы к флоре Приэльтонья//Фиторазнообразие восточной Европы. 2010. № 8. С. 97-107.
  • Нестеров В.Н., Розенцвет О.А., Мурзаева С.В. Изменение состава липидов у пресноводного растения Hydrilla verticillata (L. fil.) Royle в условиях аккумуляции и элиминации ионов тяжелых металлов//Физиология растений. 2009. Т. 56. № 1. С. 85-93.
  • Санина Н.М. Мембранообразующие липиды. Физико-химические основы термоадаптации морских беспозвоночных и макрофитов/Автореферат дисс… Владивосток, 2006. С. 22-27.
  • Строганов Б.П. Физиологические основы солеустойчивости растений (при разнокачественном засолении почвы). М.: АН СССР, 1962. 336 с.
  • Anderson J.M., Chow W.S., Rivas J.L. Dynamic flexibility in the structure and function ofphotosystem II in higher plant thylakoid membranes: the grana enigma//Photosynth. Res. 2008. V. 98. P. 575-587.
  • Blankenship R.E. Molecular mechanisms of photosynthesis. Oxford: Blackwell Science Ltd, UK. 2002. 321 p.
  • Flowers T.J., Colmer T.D. Salinity tolerance in halophytes//New Phytol. 2008. V. 179. P. 945-963.
  • Guskov A., Kern J., Gabdulkhakov A. et al. Cyanobacteria photosystem II at 2.9 A resolution: role of quinones, lipids, channels and chloride//Nat. Struct. Mol. Biol. 2009. V. 16. P. 334-342.
  • Hagio M., Sakurai I., Sato S. et al. Phosphatidylglycerol is essential for the development of thylakoid membranes in Arabidopsis thaliana//Plant Cell Physiol. 2002. V. 43. P. 1456-1464.
  • Hirayama O., Mihara M. Characterization of Membrane Lipids of Higher Plants Different in Salt Tolerance//Agric. Biol. Chem. 1987. V. 51. P. 3215-3221.
  • Hölzl G., Dörman P. Structure and Function of Glycerolipids in Plants and Bacteria//Prog. Lipid res. 2007. V. 46. P. 225-243.
  • Jahns P., Latowski D., Strzalka K. Mechanism and regulation of violaxanthin cycle: The role of antenna proteins and membrane lipids//Biochim. Biophys. Acta. 2009. V. 1787. P. 3-14.
  • Jordan P., Fromme P., Witt H.T. et al. Three-dimensional structure of cyanobacterial photosystem I at 2.5 A resolution//Nature. 2001. V. 411. P. 909-917.
  • Kern J., Loll B., Luneberg C. et al. Purification, characterization and crystallization of photosystem II from Thermosynechococcus elongatus cultivated in a new type of photobioreactor. Biochim Biophys Acta. 2005. V. 1706. P. 147-157.
  • Lichtenthaller H.K. Chlorophylls and Carotenoids: Pigments of Photosynthetic Biomembranes//Methods in enzymology. 1987. V. 148. Р. 350-382.
  • Lichtenthaller H.K., Buschmann C. Chlorophylls and Carotenoids: Measurement and Characterization by UV-VIS Spectroscopy//Current Protocols in Food Analytical Chemistry. 2001. F4.3.1-F4.3.8.
  • Lokhande V.H., Suprasanna P. Prospects of Halophytes in Understanding and Managing Abiotic Stress Tolerance. In: Ahmad P., Prasad M.N.V. (eds.), Environmental adaptations and Stress Tolerance of Plants in the Era of Climate Change. Springer science + Business Media, 2012. P. 29-56.
  • Minoda A., Sato N., Nozaki H. et al. Role of sufoquinovosyl diacylglycerol for the maintenance of photosystem II in Chlamydomonas reinhardtii//Eur. J.Biochem. 2002. V. 269. P. 2353-2358.
  • Murata N., Hoshi H. Sulfoquinovosyl diacylglycerols in chilling sensitive and chilling resistant plants//Plant Cell Physiol. 1984. V. 25. №. 7. P. 1241-1245.
  • Okanenko A.A., Taran N.Yu., Kosyk O.I. Plant sulfolipid. 1. Functions. Бiополiмери i клiтина. 2008. Т. 24. № 6. С. 431-440.
  • Parida A.K., Das A.B. Effects of NaCl stress on nitrogen and phosphorus metabolism in a true mangrove Bruguiera parviflora grown under hydroponic culture//J. Plant Physiol. 2004. V. 161. P. 921-928.
  • Ramani B., Papenbrock J., Schmidt A. Connecting sulfur metabolism and salt tolerance mechanisms in the halophytes Aster tripolium and Sesuvium portulacastrum//Trop. Ecol. 2004. V. 45. № 1. P. 173-182.
  • Rawyler A., Sieganthaler P.A. Transversal localization of monogalactosyldiacylglycerol and digalactosyldiacylglycerol in spinach thylakoid membranes//Biochim. Biophys. Acta. 1985. V. 815. P. 287-298.
  • Siegenthaler P.A., Trémolières A. Role of acyl lipids in the function of photosynthetic membranes in higher plants. In: Siegenthaler P.A., Murata N. (eds.), Lipids in photosynthesis: structure, function and genetics. Advances in photosynthesis and respiration. Dordrecht: Springer, 1998. V. 6. Р. 79-98.
  • Sui N., Li M., Li K. et al. Increase in unsaturated fatty acids in membrane lipids of Suaeda salsa L. enhances protection of photosystem II under high salinity//Photosynthetica. 2010. V. 48. P. 623-629.
  • Wada H., Murata N. Lipids in Thylakoid membranes and Photosynthetic Cells. In: Wada H., Murata N. (eds.), Lipids in Photosynthesis: Essential and Regulatory Function. N. Dordrecht: Springer, 2009. P. 1-9.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp