Светокультура растений в современных сооружениях искусственного климата (обзор)
Автор: Синявина Н.Г., Панова Г.Г., Кулешова Т.Э., Чесноков Ю.В.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Крайний Север, Арктика, Антарктика: новые агротехнологии
Статья в выпуске: 5 т.59, 2024 года.
Бесплатный доступ
Светокультура растений как процесс выращивания под искусственным светом возникла в XIX веке (F.H. Besthorn, 2013; J. Kleszcz с соавт., 2020). В России научные исследования в области светокультуры начали активно развиваться в первой половине ХХ века (В.М. Леман, 1976; А.М. Глобус, 2007; Е.И. Ермаков, 2009; I.G. Tarakanov с соавт., 2022). В настоящее время изучение различных аспектов выращивания растений в контролируемых условиях среды проводится в ряде ведущих научных учреждений Российской Федерации и Республики Беларусь, а также коллективами исследователей из стран Европы, Азии, США, Канады и Австралии. Значительный интерес к этой области растениеводства подтверждается резко увеличившимся в последние годы количеством публикаций по указанной тематике (A. Dsouza с соавт., 2023). Светокультура реализована в современных сооружениях искусственного климата (controlled environment agriculturee, СЕА), оборудованных, как правило, многоярусными стеллажными системами для выращивания растений и осветительным оборудованием и служащих альтернативой традиционному аграрному производству (T. Kozai с соавт., 2020). Такие сооружения (растительные фабрики, вертикальные фермы, сити-фермы, фитотехкомплексы) применяются для производства растительной продукции в густонаселенных городских районах и регионах с экстремальными погодными условиями, то есть там, где они имеют ряд преимуществ по сравнению с традиционным сельским хозяйством (N. Didenko с соавт., 2021; D.L. Friedrich, 2021; G.G. Panova с соавт., 2023). К основным достоинствам сооружений искусственного климата относятся возможность круглогодичного производства вне зависимости от сезона и погодных условий, высокое качество продукции, ее близость к потребителю. Многие исследователи отмечают также более высокий выход товарной продукции с 1 м2 за счет применения многоуровневых систем выращивания, а также экономию ресурсов благодаря использованию современных гидропонных и аэропонных технологий выращивания и замкнутых циклов (C.E. Wong с соавт., 2020; N. Engler с соавт., 2021; K. Al-Kodmany, 2024). Выбор растений для производства в СЕА определяется прежде всего рентабельностью, поэтому в настоящее время выращивают в основном быстрорастущие культуры с компактным габитусом - листовые овощи, пряно-ароматические растения, микрозелень. При этом сообщается о необходимости расширения ассортимента продукции и селекции новых сортов, предназначенных для контролируемых условий выращивания (K.M. Folta, 2019; M. SharathKumar, 2020; С.Е. Wong с соавт., 2020; A. Dsouza с соавт., 2023). Основным объектом исследований в СЕА в настоящее время служит световая среда, поскольку от ее состава зависят фотосинтез, рост и морфогенез растений, их биохимический состав, накопление ценных метаболитов и в конечном итоге оптимизация технологий выращивания, эффективность использования ресурсов и рентабельность производства (A. Dsouza с соавт., 2023). В настоящей статье рассмотрена роль спектрального состава света, интенсивности и равномерности излучения, фотопериода в формировании растений, оценено влияние каждой из этих составляющих световой среды на урожай и качественный состав растительной продукции. Показано, что при помощи варьирования спектрального состава света можно управлять архитектоникой растений, регулировать накопление первичных и вторичных метаболитов (G.C. Modarelli с соавт., 2022; K. Zhang с соавт., 2023; K. Rosniza с соавт., 2023). Отражены генетически обусловленные различия в требованиях ряда культур к составу световой среды, в том числе обсуждается возможность существования сортовой специфичности в реакции образцов внутри культуры на формируемые условия выращивания. Также идет речь о применяемых в СЕА технологиях и используемых культурах, кратко отражены последние результаты в области селекции для светокультуры и указаны перспективы дальнейших исследований.
Светокультура, агропроизводство в контролируемых условиях, сеа, световая среда, светодиодные светильники, растения, урожай, качество, селекция
Короткий адрес: https://sciup.org/142243774
IDR: 142243774 | DOI: 10.15389/agrobiology.2024.5.869rus
Список литературы Светокультура растений в современных сооружениях искусственного климата (обзор)
- Van Gerrewey T., Boon N., Geelen D. Vertical farming: the only way is up? Agronomy, 2021, 12(1): 2 (doi: 10.3390/agronomy12010002).
- Vatistas C., Avgoustaki D.D., Bartzanas T. A systematic literature review on controlled-environ-ment agriculture: how vertical farms and greenhouses can influence the sustainability and footprint of urban microclimate with local food production. Atmosphere, 2022, 13(8): 1258 (doi: 10.3390/at-mos13081258).
- Dsouza A., Newman L., Graham T., Fraser E.D.G. Exploring the landscape of controlled envi-ronment agriculture research: a systematic scoping review of trends and topics. Agricultural Sys-tems, 2023, 209: 103673 (doi: 10.1016/j.agsy.2023.103673).
- Indoor farming market size, share & trends analysis report by facility type (greenhouses, vertical farms), by component (hardware, software), by crop category, by region, and segment forecasts, 2022-2030. Режим доступа: https://www.marketresearch.com/Grand-View-Research-v4060/In-door-Farming-Size-Share-Trends-31516510. Без даты.
- Panova G.G., Teplyakov A.V., Novak A.B., Levinskikh M.A., Udalova O.R., Mirskaya G.V., Khomyakov Y.V., Shved D.M., Ilyin E.A., Kuleshova T.E., Kanash E.V., Chesnokov Yu.V. Growth and development of leaf vegetable crops under conditions of the phytotechnical complex in Antarctica. Agronomy, 2023, 13(12): 3038 (doi: 10.3390/agronomy13123038).
- Zacharaki A.K., Monaghan J.M., Bromley J.R., Vickers L.H. Opportunities and challenges for strawberry cultivation in urban food production systems. Plants, People, Planet, 2024, 6(3): 611-621 (doi: 10.1002/ppp3.10475).
- Talbot M.H., Monfet D. Development of a crop growth model for the energy analysis of con-trolled agriculture environment spaces. Biosystems Engineering, 2024, 238: 38-50 (doi: 10.1016/j.biosystemseng.2023.12.012).
- SharathKumar M., Heuvelink E., Marcelis L.F. Vertical farming: moving from genetic to environmental modification. Trends in Plant Science, 2020, 25(8): 724-727 (doi: 10.1016/j.tplants.2020.05.012).
- Wong C.E., Teo Z.W.N., Shen L., Yu H. Seeing the lights for leafy greens in indoor vertical farming. Trends in Food Science & Technology, 2020, 106: 48-63 (doi: 10.1016/j.tifs.2020.09.031).
- Al-Kodmany K. Vertical farms for future cities. In: Digital agriculture /P.M. Priyadarshan, S.M. Jain, S. Penna, J.M. Al-Khayri (eds.). Springer, Cham, 2024: 179-197 (doi: 10.1007/978-3-031-43548-5_6).
- Engler N., Krarti M. Review of energy efficiency in controlled environment agriculture. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 2021, 141: 110786 (doi: 10.1016/j.rser.2021.110786).
- Rajendran R., Jagmohan S., Jayaraj P., Ali O., Ramsubhag A., Jayaraman J. Effects of Ascophyl-lum nodosum extract on sweet pepper plants as an organic biostimulant in grow box home garden conditions. Journal of Applied Phycology, 2022, 34: 647-657 (doi: 10.1007/s10811-021-02611-z).
- Lee T.S., Jung D.-H., Kim J.Y., Lee J.Y., Park J.-E., Kim H.S., Park S.H. Development of a low-cost plant growth chamber for improved phenotyping research. Journal of Biosystems Engi-neering, 2023, 48(3): 355-363 (doi: 10.1007/s42853-023-00197-7).
- Kozai T., Niu G. Chapter 2 - Role of the plant factory with artificial lighting (PFAL) in urban areas. In: Plant factory (second edition) /T. Kozai, G. Niu, M. Takagaki (eds.). Academic Press, Burlington, 2020: 7-34 (doi: 10.1016/B978-0-12-816691-8.00002-9).
- Леман В.М. Курс светокультуры растений. М., 1976.
- Большая Советская Энциклопедия, 3-е изд., т. 23. Режим доступа: http://bse.uaio.ru/BSE/2301.htm?ysclid=luieli99ai249503070. Без даты.
- ГОСТ Р 58461-2019. Освещение растений в сооружениях защищенного грунта. Термины и определения. М., 2019.
- Besthorn F.H. Vertical farming: social work and sustainable urban agriculture in an age of global food crises. Aust. Soc. Work, 2013, 66(2): 187-203 (doi: 10.1080/0312407X.2012.716448).
- Gericke W.F. Hydroponics — crop production in liquid culture media. Science, 1937, 85(2198): 177-178 (doi: 10.1126/science.85.2198.177).
- Kleszcz J., Kmiecik P., Świerzawski J. Vegetable and gardening tower of Othmar Ruthner in the Voivodeship park of culture and recreation in Chorzów — the first example of vertical farming in Poland. Sustainability, 2020, 12(13): 5378 (doi: 10.3390/su12135378).
- Zaręba A., Krzemińska A., Kozik R. Urban vertical farming as an example of nature-based solu-tions supporting a healthy society living in the urban environment. Resources, 2021, 10(11): 109 (doi: 10.3390/resources10110109).
- Despommier D. The vertical farm: feeding the world in the 21st century. New York, 2010.
- Shon D., Lee E., Lee Y., Lee J., Byun N. Characteristics of smart farms for architectural planning and design. Buildings, 2022, 13(1): 93 (doi: 10.3390/buildings13010093).
- Ермаков Е.И. Избранные труды. СПб, 2009.
- Глобус А.М. Агрофизический институт: 75 лет на пути к точному земледелию. СПб, 2007.
- Черноусов И.Н. Физическое моделирование световой среды растений в регулируемой агроэкосистеме. В сб.: Регулируемая система в растениеводстве и экофизиологии. СПб, 2007: 43-53.
- Ермаков Е.И., Мухоморов В.К. Продукционный процесс растений и многообразие взаимодействий эдафических факторов в регулируемой агроэкосистеме. Доклады РАСХН, 2002, 3: 14-17.
- Клешнин А.Ф. Растение и свет: теория и практика светокультуры растений. М., 1954.
- Протасова Н.Н. Светокультура как способ выявления потенциальной продуктивности растений. Физиология растений, 1987, 34(4): 812-822.
- Прикупец Л.Б., Боос Г.В., Терехов В.Г., Тараканов И.Г. Исследование влияния излучения в различных диапазонах области ФАР на продуктивность и биохимический состав биомассы салатно-зеленных культур. Светотехника, 2018, 5: 6-12.
- Тихомиров А.А., Шарупич В.П., Лисовский Т.М. Светокультура растений: биофизические и биотехнологические основы. Новосибирск, 2000.
- Лях П.А., Колошина К.А., Попова К.И., Лях А.А. Влияние спектрального состава светодиодного излучения на рост и развитие растений. Инновации и продовольственная безопасность, 2022, 1(35): 108-120 (doi: 10.31677/2311-0651-2022-35-1-108-120).
- Аверчева О.В., Беркович Ю.А., Ерохин А.Н., Жигалова Т.В., Погосян С.И., Смолянина С.О. Особенности роста и фотосинтеза растений китайской капусты при выращивании под светодиодными светильниками. Физиология растений, 2009, 56(1): 17-26.
- Коновалова И.О., Беркович Ю.А., Ерохин А.Н., Смолянина С.О., Яковлева О.С., Знаменский А.И., Тараканов И.Г., Радченко С.Г., Лапач С.Н., Трофимов Ю.В., Цвирко В.И. Оптимизация светодиодной системы освещения витаминной космической оранжереи. Авиакосмическая и экологическая медицина, 2016, 50(3): 17-22.
- Беркович Ю.А., Буряк А.А., Очков О.А., Смолянина С.О., Переведенцев О.В., Лапач С.Н. Некоторые пути оптимизации светодиодного освещения в светокультуре растений. Светотехника, 2019, S: 37-42.
- Kreslavski V., Khudyakova A., Kosobryukhov A., Pashkovskiy P., Vereshchagin M., Balakh-nina T., Alharby H.F., Allakhverdiev S.I. Impact of additional green light and deficit in crypto-chrome 1 on photosynthetic activity and pro-/antioxidant balance in Arabidopsis thaliana. Photo-synthetica, 2023, 61(SI): 215-224 (doi: 10.32615/ps.2023.009).
- Мартиросян Л.Ю., Мартиросян Ю.Ц., Кособрюхов А.А., Гольдберг В.М., Гачок И.В., Мартиросян В.В., Гладченко М.А., Гайдамака С.Н., Америк А.Ю., Миних А.А., Варфо-ломеев С.Д. Биосинтез каучука и инулина в зависимости от спектрального состава света и активности фотосинтетического аппарата при аэропонном культивировании Taraxa-cum kok-saghys E. Rodin. Сельскохозяйственная биология, 2023, 58(1): 100-113 (doi: 10.15389/agrobiology.2023.1.100rus).
- Косьянов Д.Ю., Ворновских А.А., Шичалин О.О., Завьялов А.П. Композитные керамиче-ские люминофоры для сверхъярких светодиодов. Мат. Межд. науч.-техн. молод. конф. «Перспективные материалы конструкционного и функционального назначения». Томск, 2022: 194-196.
- Прикупец Л.Б. Светодиоды в тепличном освещении: возможности и реальность. Светотехника, 2019, S: 8-12.
- Мишанов А.П., Ракутько Е.Н., Ракутько С.А. Цифровой светодиодный светильник с регулируемым спектром. Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета, 2022, 1(66): 125-134 (doi: 10.24412/2078-1318-2022-1-125-134).
- Молчан О.В., Обуховская Л.В., Куделина Т.Н., Астасенко Н.И., Баркун М.И., Трофимов Ю.В. Активация LED-освещением фотосинтетических и ростовых процессов растений томата в условиях опытно-производственного участка. Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия биологических наук, 2023, 68(4): 282-292 (doi: 10.29235/1029-8940-2023-68-4-282-292).
- Подольская Т.В., Васюта Е.А., Плаксина А.Ю. Вертикальные фермы как ключевое направление интенсификации сельского хозяйства в условиях урбанизации. Экономика: вчера, сегодня, завтра, 2023, 13(5-1): 294-304.
- Черноусов И.Н., Панова Г.Г., Удалова О.Р., Александров А.В. Фитотехкомплекс для выращивания растений. Патент на полезную модель. МПК A 01 G 9/14. ФГБНУ «Агрофизический научно-исследовательский институт (ФГБНУ АФИ) (РФ), Общество с ограниченной ответственностью «Фитосфера» (РФ). № 189309 U1. Заявл. 10.09.2018. Опубл. 21.05.2019. Бюл. № 15.
- Панова Г.Г., Удалова О.Р., Канаш Е.В., Галушко А.С., Кочетов А.А., Прияткин Н.С., Архипов М.В., Черноусов И.Н. Основы физического моделирования «идеальных» агроэкосистем. Журнал технической физики, 2020, 90(10): 1633-1639 (doi: 10.21883/JTF.2020.10.49792.429-19).
- Vermeulen S.J., Dinesh D., Howden S.M., Cramer L., Thornton P.K. Transformation in practice: a review of empirical cases of transformational adaptation in agriculture under climate change. Frontiers in Sustainable Food Systems, 2018, 2: 65 (doi: 10.3389/fsufs.2018.00065).
- Hansen J., Hellin J., Rosenstock T., Fisher E., Cairns J., Stirling C., Lamanna A., van Etten J., Rose A., Campbell B. Climate risk management and rural poverty reduction. Agricultural Systems, 2019, 172: 28-46 (doi: 10.1016/j.agsy.2018.01.019).
- Ксенофонтов М.Ю., Ползиков Д.А. К вопросу о влиянии климатических изменений на развитие сельского хозяйства России в долгосрочной перспективе. Проблемы прогнозирования, 2020, 3: 82-92.
- McCartney L., Lefsrud M. Protected agriculture in extreme environments: a review of controlled environment agriculture in tropical, arid, polar, and urban locations. Applied Engineering in Agri-culture, 2018, 34(2): 455-473 (doi: 10.13031/aea.12590).
- Friedrich D.L. Vegetable farming, climate change, and food security in the Arctic. In: Justice and food security in a changing climate /H. Schübel, I. Wallimann-Helmer (eds.). Wageningen Aca-demic Publishers, The Netherlands, 2021: 51-57 (doi: 10.3920/978-90-8686-915-2_5).
- Didenko N., Skripnuk D., Ilin I., Cherenkov V., Tanichev A., Kulik S.V. An economic model of sustainable development in the Russian arctic: the idea of building vertical farms. Agronomy, 2021, 11(9): 1863 (doi: 10.3390/agronomy11091863).
- Martin M., Weidner T., Gullström C. Estimating the potential of building integration and regional synergies to improve the environmental performance of urban vertical farming. Frontiers in Sus-tainable Food Systems, 2022, 6: 849304 (doi: 10.3389/fsufs.2022.849304).
- Parkes M.G., Cubillos Tovar J.P., Dourado F., Domingos T., Teixeira R.F. Life cycle assessment of a prospective technology for building-integrated production of broccoli microgreens. Atmos-phere, 2022, 13(8): 1317 (doi: 10.3390/atmos13081317).
- Физико-агрономический словарь /Под ред. А.Г. Бондарева, Н.Ф. Бондаренко, Е.И. Ерма-кова, Е.Н. Романовой, В.А. Семенова., И.Б. Ускова, В.П. Якушева. СПб, 2000.
- Ермаков Е.И., Казимирчук А.А., Сизов Г.М., Желтов Ю.И., Черноусов И.Н. Устройство для освещения растений. Патент на изобретение МПК A 01 G 9/26, F 21 K 7/00, F 21 V 13/08. Акционерное общество "Транс РЭС" (РФ). № 2057423 C1. Заявл. 23.09.1993. Опубл. 10.04.1996.
- Trivellini A., Toscano S., Romano D., Ferrante A. LED lighting to produce high-quality orna-mental plants. Plants, 2023, 12(8): 1667 (doi: 10.3390/plants12081667).
- Cavallaro V., Muleo R. The effects of LED light spectra and intensities on plant growth. Plants, 2022, 11(15): 1911 (doi: 10.3390/plants11151911).
- Borbély P., Gasperl A., Pálmai T., Ahres M., Asghar M.A., Galiba G., Müller M., Kocsy G. Light intensity- and spectrum-dependent redox regulation of plant metabolism. Antioxidants, 2022, 11(7): 1311 (doi: 10.3390/antiox11071311).
- Kim H.H., Goins G.D., Wheeler R.M., Sager J.C. Green-light supplementation for enhanced lettuce growth under red-and blue-light-emitting diodes. HortScience, 2004, 39(7): 1617-1622 (doi: 10.21273/HORTSCI.39.7.1617).
- Kami C., Lorrain S., Hornitschek P., Fankhauser C. Light-regulated plant growth and develop-ment. Current Topics in Developmental Biology, 2010, 91: 29-66 (doi: 10.1016/S0070-2153(10)91002-8).
- Kochetova G.V., Avercheva O.V., Bassarskaya E.M., Zhigalova T.V. Light quality as a driver of photosynthetic apparatus development. Biophys. Rev., 2022, 14: 779-803 (doi: 10.1007/s12551-022-00985-z).
- Kabacheuskaya E.M., Sukhoveeva S.V., Trofimov Y.V., Barkun M.I. Effect of the spectral com-position of LED artificial lighting sources on the functional activity of the photosynthetic appa-ratus of basil leaves. J. Appl. Spectrosc., 2024, 90: 1267-1272 (doi: 10.1007/s10812-024-01663-6).
- Modarelli G.C., Paradiso R., Arena C., De Pascale S., Van Labeke M.C. High light intensity from blue-red leds enhance photosynthetic performance, plant growth, and optical properties of red lettuce in controlled environment. Horticulturae, 2022, 8(2): 114 (doi: 10.3390/horticul-turae8020114).
- Assmann S.M., Shimazaki K.I. The multisensory guard cell. Stomatal responses to blue light and abscisic acid. Plant Physiology, 1999, 119(3): 809-816 (doi: 10.1104/pp.119.3.809).
- Kim E.-Y., Park S-A., Park B.-J., Lee Y., Oh M.-M. Growth and antioxidant phenolic com-pounds in cherry tomato seedlings grown under monochromatic light-emitting diodes. Hortic. Environ. Biotechnol., 2014, 55: 506-513 (doi: 10.1007/s13580-014-0121-7).
- Zhang T., Shi Y., Piao F., Z. Sun Z. Effects of different LED sources on the growth and nitrogen metabolism of lettuce. Plant Cell Tiss. Organ. Cult., 2018, 134: 231-240 (doi: 10.1007/s11240-018-1415-8).
- Qian Y., Hibbert L.E., Milner S., Katz E., Kliebenstein D.J., Taylor G. Improved yield and health benefits of watercress grown in an indoor vertical farm. Scientia Horticulturae, 2022, 300: 111068 (doi: 10.1016/j.scienta.2022.111068).
- Zhang R., Yang W., Pan Q., Zeng Q., Yan C., Bai X., Liu Y., Zhang L., Li B. Effects of long-term blue light irradiation on carotenoid biosynthesis and antioxidant activities in Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis). Food Research International, 2023, 174(2): 113661 (doi 10.1016/j.foodres.2023.113661).
- Ke X., Yoshida H., Hikosaka S., Goto E. Optimization of photosynthetic photon flux density and light quality for increasing radiation-use efficiency in dwarf tomato under LED light at the vege-tative growth stage. Plants, 2021, 11(1): 121 (doi: 10.3390/plants11010121).
- Gao Q., Liao Q., Li Q., Yang Q., Wang F., Li J. Effects of LED red and blue light component on growth and photosynthetic characteristics of coriander in plant factory. Horticulturae, 2022, 8(12): 1165 (doi: 10.3390/horticulturae8121165).
- Kokalj D., Hribar J., Cigić B., Zlatić E., Demšar L., Sinkovič L., Šircelj H., Bizjak G., Vidrih R. Influence of yellow light-emitting diodes at 590 nm on storage of apple, tomato and bell pepper fruit. Food Technology and Biotechnology, 2016, 54(2): 228 (doi: 10.17113/ftb.54.02.16.4096).
- Liu J., van Iersel M.W. Photosynthetic physiology of blue, green, and red light: light intensity effects and underlying mechanisms. Front. Plant Sci., 2021, 12: 619987 (doi: 10.3389/fpls.2021.619987).
- Sheikhi H., Delshad M., Aliniaeifard S., Haghbeen K., Bababalar M., Nasiri R. Enhancing growth and nutritional quality in greenhouse-grown ‘little gem’lettuce using LED supplemental lighting. International Journal of Horticultural Science and Technology, 2024, 11(3): 353-368 (doi: 10.22059/ijhst.2023.364300.690).
- Trojak M., Skowron E., Sobala T., Kocurek M., Pałyga J. Effects of partial replacement of red by green light in the growth spectrum on photomorphogenesis and photosynthesis in tomato plants. Photosynth. Res., 2022, 151: 295-312 (doi: 10.1007/s11120-021-00879-3).
- Avendaño-Abarca V.H., Alvarado-Camarillo D., Valdez-Aguilar L.A., Sánchez-Ortíz E.A., Gon-zález-Fuentes J.A., Cartmill A.D. Response of strawberry to the substitution of blue light by green light in an indoor vertical farming system. Agronomy, 2023, 13(1): 99 (doi: 10.3390/agron-omy13010099).
- Ma Y., Hu L., Wu Y., Tang Z., Xiao X., Lyu J., Xie J., Yu J. Green light partial replacement of red and blue light improved drought tolerance by regulating water use efficiency in cucumber seedlings. Front. Plant Sci., 2022, 13: 878932 (doi: 10.3389/fpls.2022.878932).
- Rosniza K., Ajit S., Winnie Y.S.P., Joshua Y.L.V., Farahzety A.M., Zulhazmi S., Mohd Abid A. Effect of different LED wavelengths on growth, chlorophyll and anthocyanin content of purple-red pakchoi (Brassica rapa chineensis) in indoor vertical farming. Food Research, 2023, 6(4): 65-70 (doi: 10.26656/fr.2017.6(S4).009).
- Claypool N.B., Lieth J.H. Green light improves photosystem stoichiometry in cucumber seedlings (Cucumis sativus) compared to monochromatic red light. Plants, 2021, 10(5): 824 (doi: 10.3390/plants10050824).
- Goins G.D., Yorio N.C., Sanwo M.M., Brown C.S. Photomorphogenesis, photosynthesis, and seed yield of wheat plants grown under red light-emitting diodes (LEDs) with and without sup-plemental blue lighting. Journal of Experimental Botany, 1997, 48(7): 1407-1413 (doi: 10.1093/jxb/48.7.1407).
- Li H., Tang C., Xu Z., Liu X., Han X. Effects of different light sources on the growth of non-heading Chinese cabbage (Brassica campestris L.). Journal of Agricultural Science, 2012, 4(4): 262 (doi: 10.5539/jas.v4n4p262).
- Tarakanov I.G., Tovstyko D.A., Lomakin M.P., Shmakov A.S., Sleptsov N.N., Shmarev A.N., Litvinskiy V.A., Ivlev A.A. Effects of light spectral quality on photosynthetic activity, biomass production, and carbon isotope fractionation in lettuce, Lactuca sativa L., plants. Plants, 2022, 11(3): 441 (doi: 10.3390/plants11030441).
- Li Y.N., Liu N., Ji F., He D.X. Optimal red:blue ratio of full spectrum LEDs for hydroponic pakchoi cultivation in plant factory. Int. J. Agric. & Biol. Eng., 2022, 15(3): 72-77.
- Saapilin N.S., Yong W.T.L., Cheong B.E., Kamaruzaman K.A., Rodrigues K.F. Physiological and biochemical responses of Chinese cabbage (Brassica rapa var. chinensis) to different light treatments. Chem. Biol. Technol. Agric., 2022, 9: 27 (doi: 10.1186/s40538-022-00293-4).
- Tan T., Li S., Fan Y., Wang Z., Raza M.A., Shafiq I., Wang B., Wu X., Yong T., Wang X., Wu Y., Yang F., Yang W. Far-red light: A regulator of plant morphology and photosynthetic capacity. The Crop Journal, 2022, 10(2): 300-309 (doi: 10.1016/j.cj.2021.06.007).
- Sheerin D.J., Hiltbrunner A. Molecular mechanisms and ecological function of far‐red light sig-nalling. Plant, Cell & Environment, 2017, 40(11): 2509-2529 (doi: 10.1111/pce.12915).
- Kusuma P., Bugbee B. On the contrasting morphological response to far-red at high and low photon fluxes. Front. Plant Sci., 2023, 14: 1185622 (doi: 10.3389/fpls.2023.1185622).
- Van de Velde E., Steppe K., Van Labeke M.C. Leaf morphology, optical characteristics and phytochemical traits of butterhead lettuce affected by increasing the far-red photon flux. Front. Plant Sci., 2023, 14: 1129335 (doi: 10.3389/fpls.2023.1129335).
- Кулешова Т.Э., Галль Н.Р., Удалова О.Р., Панова Г.Г. Многофункциональный комплекс датчиков для фитомониторинга в условиях интенсивной светокультуры. Агрофизика, 2020, 4: 33-39.
- Liu J., van Iersel M.W. Far-red light effects on lettuce growth and morphology in indoor pro-duction are cultivar specific. Plants, 2022, 11(20): 2714 (doi: 10.3390/plants11202714).
- Dou H., Niu G., Gu M. Pre-harvest UV-B radiation and photosynthetic photon flux density interactively affect plant photosynthesis, growth, and secondary metabolites accumulation in basil (Ocimum basilicum) plants. Agronomy, 2019, 9(8): 434 (doi: 10.3390/agronomy9080434).
- Castillejo N., Martínez-Zamora L., Artés-Hernández F. Periodical UV-B radiation hormesis in biosynthesis of kale sprouts nutraceuticals. Plant Physiology and Biochemistry, 2021, 165: 274-285 (doi: 10.1016/j.plaphy.2021.05.022).
- Ермаков Е.И., Панова Г.Г., Черноусов И.Н. Влияние УФ-С радиации на растения и со-путствующую микрофлору. Светотехника, 2004, 5: 22-24.
- He X., He R., Li Y., Liu K., Tan J., Chen Y., Liu X., Liu H. Effect of ratios of red and white light on the growth and quality of pak choi. Agronomy, 2022, 12(10): 2322 (doi: 10.3390/agron-omy12102322).
- Frąszczak B., Kula-Maximenko M. The preferences of different cultivars of lettuce seedlings (Lactuca sativa L.) for the spectral composition of light. Agronomy, 2021, 11(6): 1211 (doi: 10.3390/agronomy11061211).
- Кулешова Т.Э., Желначева П.В., Эзерина Е.М., Вертебный В.Е., Хомяков Ю.В., Панова Г.Г., Кочетов А.А., Синявина Н.Г. Влияние спектрального состава световой среды на фотосинтетические, электро- и морфофизиологические показатели редиса в условиях све-токультуры. Физиология растений, 2024, 71(2): 243-256 (doi: 10.31857/S0015330324020105).
- Кулешова Т.Э., Удалова О.Р., Балашова И.Т., Аникина Л.М., Конончук П.Ю., Мирская Г.В., Дубовицкая В.И., Вертебный В.Е., Хомяков Ю.В., Панова Г.Г. Особенности влияния спектра излучения на продуктивность и биохимический состав тестовых плодо-вых и листовых овощных культур. Журнал технической физики, 2022, 92(7): 1060-1068 (doi: 10.21883/JTF.2022.07.52663.343-21).
- Jayalath T.C., van Iersel M.W. Canopy size and light use efficiency explain growth differences be-tween lettuce and mizuna in vertical farms. Plants, 2021, 10(4): 704 (doi: 10.3390/plants10040704).
- Kang J.H., KrishnaKumar S., Atulba S.L.S., Jeong B.R., Hwang S.J. Light intensity and photo-period influence the growth and development of hydroponically grown leaf lettuce in a closed-type plant factory system. Hortic. Environ. Biotechnol., 2013, 54: 501-509 (doi: 10.1007/s13580-013-0109-8).
- Matysiak B., Ropelewska E., Wrzodak A., Kowalski A., Kaniszewski S. Yield and quality of romaine lettuce at different daily light integral in an indoor controlled environment. Agronomy, 2022, 12(5): 1026 (doi: 10.3390/agronomy12051026).
- Pennisi G., Pistillo A., Orsini F., Cellini A., Spinelli F., Nicola S., Fernandez J., Crepaldi A., Gianquinto G., Marcelis L.F. Optimal light intensity for sustainable water and energy use in indoor cultivation of lettuce and basil under red and blue LEDs. Scientia Horticulturae, 2020, 272: 109508 (doi: 10.1016/j.scienta.2020.109508).
- Gavhane K.P., Hasan M., Singh D.K., Kumar S.N., Sahoo R.N., Alam W. Determination of optimal daily light integral (DLI) for indoor cultivation of iceberg lettuce in an indigenous vertical hydroponic system. Scientific Reports, 2023, 13(1), 10923 (doi: 10.1038/s41598-023-36997-2).
- Kelly N., Choe D., Meng Q., Runkle E.S. Promotion of lettuce growth under an increasing daily light integral depends on the combination of the photosynthetic photon flux density and photo-period. Scientia Horticulturae, 2020, 272: 109565 (doi: 10.1016/j.scienta.2020.109565).
- Palmer S., van Iersel M.W. Increasing growth of lettuce and mizuna under sole-source LED lighting using longer photoperiods with the same daily light integral. Agronomy, 2020, 10(11): 1659 (doi: 10.3390/agronomy10111659).
- Cruz S., Gómez C. Effects of daily light integral on compact tomato plants grown for indoor gardening. Agronomy, 2022, 12(7): 1704 (doi: 10.3390/agronomy12071704).
- Lam V.P., Choi J., Park J. Enhancing growth and glucosinolate accumulation in watercress (Na-sturtium officinale L.) by regulating light intensity and photoperiod in plant factories. Agriculture, 2021, 11(8): 723 (doi: 10.3390/agriculture11080723).
- Kim S., Bok G., Shin J., Park J. Effects of photoperiod and light intensity on the growth and glucosinolates content of three Brassicaceae species in a plant factory. Journal of Bio-Environment Control, 2022, 31(4): 416-422 (doi: 10.12791/KSBEC.2022.31.4.416).
- Martinez-Nolasco C., Padilla-Medina J.A., Nolasco J.J. M., Guevara-Gonzalez R.G., Barranco-Gutiérrez A.I., Diaz-Carmona J.J. Non-invasive monitoring of the thermal and morphometric characteristics of lettuce grown in an aeroponic system through multispectral image system. Ap-plied Sciences, 2022, 12(13): 6540 (doi: 10.3390/app12136540).
- Chen K., Yuan Y., Zhao B., Zhou L., Niu K., Jin X., Gao S., Li R., Guo H., Zheng Y. Digital twins and data-driven in plant factory: an online monitoring method for vibration evaluation and transplanting quality analysis. Agriculture, 2023, 13(6): 1165 (doi: 10.3390/agriculture13061165).
- Wang X., Wu Z., Jia M., Xu T., Pan C., Qi X., Zhao M. Lightweight SM-YOLOv5 tomato fruit detection algorithm for plant factory. Sensors, 2023, 23(6): 3336 (doi: 10.3390/s23063336).
- Liu W., Xu M., Jiang H. Design, integration, and experiment of transplanting robot for early plug tray seedling in a plant factory. AgriEngineering, 2024, 6(1): 678-697 (doi: 10.3390/agriengineer-ing6010040).
- Fukuda H., Wada T. Characteristics of vegetable growing in plant factories and technical issues. In: Plant factory using artificial light /M. Anpo, H. Fukuda, T. Wada (eds.). Elsevier, 2019: 25-31 (doi: 10.1016/b978-0-12-813973-8.00004-x).
- Lubna F.A., Lewus D.C., Shelford T.J., Both A.-J. What you may not realize about vertical farming. Horticulturae, 2022, 8(4): 322 (doi: 10.3390/horticulturae8040322).
- Specht K., Siebert R., Thomaier S., Freisinger U.B., Sawicka M., Dierich A., Henckel D., Busse M. Zero-acreage farming in the city of Berlin: an aggregated stakeholder perspective on potential benefits and challenges. Sustainability, 2015, 7(4): 4511-4523 (doi: 10.3390/su7044511).
- Santamaria P. Nitrate in vegetables: toxicity, content, intake and EC regulation. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2006, 86(1): 10-17 (doi: 10.1002/jsfa.2351).
- Kreuger M., Meeuws L., Meeuws G. Applications for breeding and high-wire tomato production in plant factory. In: Smart plant factory /T. Kozai (ed.). Springer, Singapore, 2018: 289-299 (doi: 10.1007/978-981-13-1065-2_18).
- Folta K.M. Breeding new varieties for controlled environments. Plant Biology, 2019, 21(S1): 6-12 (doi: 10.1111/plb.12914).
- Xi L., Zhang M., Zhang L., Lew T.T., Lam Y.M. Novel materials for urban farming. Advanced Materials, 2022, 34(25): 2105009 (doi: 10.1002/adma.202105009).
- Csambalik L., Divéky-Ertsey A., Gál I., Madaras K., Sipos L., Székely G., Pusztai P. Sustain-ability perspectives of organic farming and plant factory systems — from divergences towards synergies. Horticulturae, 2023, 9(8): 895 (doi: 10.3390/horticulturae9080895).
- Awika H.O., Mishra A.K., Gill H., DiPiazza J., Avila C.A., Joshi V. Selection of nitrogen re-sponsive root architectural traits in spinach using machine learning and genetic correlations. Sci-entific Reports, 2021, 11: 9536 (doi: 10.1038/s41598-021-87870-z).
- Egorova K.V., Sinyavina N.G., Artemyeva A.M., Kocherina N.V., Chesnokov Y.V. QTL Analysis of the content of some bioactive compounds in Brassica rapa L. grown under light culture con-ditions. Horticulturae, 2021, 7(12): 583 (doi: 10.3390/horticulturae7120583).
- Артемьева А.М., Синявина Н.Г., Панова Г.Г., Чесноков Ю.В. Биологические особен-ности капустных овощных культур вида Brassica rapa L. при выращивании в интенсив-ной светокультуре. Сельскохозяйственная биология, 2021, 56(1): 103-120 (doi: 10.15389/agrobiology.2021.1.103rus).
- Lejeune P., Fratamico A., Bouché F., Huerga-Fernández S., Tocquin P., Périlleux C. LED color gradient as a new screening tool for rapid phenotyping of plant responses to light quality. Giga-Science, 2022, 11: giab101 (doi: 10.1093/gigascience/giab101).
- Nguyen K.L., Phuong N.T.N., Tuan T.Q., Hang T.T. M. Evaluation of biological traits and bioactive compounds in several spinach varieties (Spinacia oleracea L.) grown in a vertical hydroponic system. Vietnam Journal of Agricultural Sciences, 2023, 6(1): 1699-1710 (doi: 10.31817/vjas.2023.6.1.01).
- Курина А.Б., Железнова К.О., Соловьева А.Е., Синявина Н.Г., Панова Г.Г., Артемь-ева А.М. Изменчивость морфологических и биохимических признаков кресс-салата (Lep-idium sativum L.) из коллекции вир в условиях интенсивной светокультуры. Сельскохозяй-ственная биология, 2023, 58(5): 889-901 (doi: 10.15389/agrobiology.2023.5.889rus).
- Sinyavina N.G., Kochetov A.A., Kocherina N.V., Egorova K.V., Kurina A.B., Panova G.G., Chesnokov Y.V. Breeding approaches for controlled conditions of artificial light culture for small radish and radish (Raphanus sativus L.). Horticulturae, 2023, 9(6): 678 (doi: 10.3390/horticul-turae9060678).