Таксономическая структура бактериальных инфекций мочевых путей у онкологических больных

Автор: Дмитриева Наталья Владимировна, Петухова Ирина Николаевна, Григорьевская Злата Валерьевна, Багирова Наталья Сергеевна, Терещенко Инна Васильевна, Агинова Виктория Викторовна, Ключникова Ирина Александровна, Дьякова Светлана Андреевна, Дмитриева Анна Игоревна, Калинчук Татьяна Алексеевна

Журнал: Сибирский онкологический журнал @siboncoj

Рубрика: Клинические исследования

Статья в выпуске: 6 т.16, 2017 года.

Бесплатный доступ

Введение. Инфекции мочевых путей (ИМП) являются одними из наиболее распространенных бактериальных инфекций. В мире ежегодно ИМП регистрируются у 150 млн человек, а затраты на лечение этих инфекций только в США составляют примерно 3,5 млрд долларов в год. ИМП у онкологических больных развиваются чаще и протекают тяжелее, чем у пациентов общего профиля. Особенно если этиологическим агентом инфекции являются нозокомиальные патогены. Материал и методы.Проанализирована этиология инфекций мочевыводящих путей у онкологических пациентов в период их пребывания в стационаре. Результаты. Представленные данные касаются наиболее проблемных с точки зрения антибиотикотерапии, резистентных микроорганизмов группы ESKAPE (энтерококки, золотистый стафилококк, кишечные палочки, клебсиеллы синегнойные палочки, ацинетобактеры). Даны сравнительные данные по чувствительности к различным антибиотикам и рекомендации по лечению, направленные на уменьшение селективного давления определенных групп антибиотиков, в частности карбапенемов.

Еще

Онкологические больные, инфекции мочевыводящих путей, нозокомиальные, патогены, лечение инфекций, антибиотики

Короткий адрес: https://sciup.org/140254007

IDR: 140254007   |   DOI: 10.21294/1814-4861-2017-16-6-5-10

Текст научной статьи Таксономическая структура бактериальных инфекций мочевых путей у онкологических больных

зокомиальные ИМП относятся к осложненным инфекциям. Среди возбудителей нозокомиальных ИМП распространены бактерии группы ESKAPE : Enterococcus spp , Staphylococcus aureus , Acineto-bacter spp , Pseudomonas aeruginosa , бактерии семейства Enterobacteriaceae ( Klebsiella spp , Escherichia coli и т. д.). Наиболее проблемными в отношении терапии являются Klebsiella pneumoniae, Acineto-bacter baumannii и Pseudomonas aeruginosa [7–9]. Эти грамотрицательные микроорганизмы являются продуцентами бета-лактамаз расширенного спектра действия (БЛРС, ESBL) и карбапенемаз. Среди грамположительных микроорганизмов наиболее значимыми являются ванкомицин- и линезолид-резистентные штаммы Enterococcus faecalis и faecium ( VRE , LRE ); метициллин-, ванкомицин- и линезолид-резистентные штаммы Staphylococcus aureus ( MRSA , VRSA , LRSA ). Особенно настораживает появление линезолид-резистентных штаммов энтерококков и стафилококков. Микроорганизмы группы ESKAPE , как правило, обладают высокой резистентностью, а частота их выделения и профиль резистентности зависят от локальной эпидемиологической ситуации в каждом лечебном учреждении и отделении [3–6, 10].

Цель исследования – анализ таксономической структуры и определение антибиотикорезистент-ности возбудителей госпитальных ИМП у онкологических больных.

Материал и методы

Исследованы 479 штаммов микроорганизмов группы ESKAPE , выделенные в течение 12 мес (с июня 2016 г.) из мочи 463 онкологических больных с нозокомиальными ИМП. Повторные выделения одного и того же микроорганизма были исключены из анализа. У 16 (3,5 %) пациентов микроорганизмы высевались в виде ассоциаций. Распределение больных по полу: 301 (65,0 %) мужчина и 162 (35 %) – женщины. Средний возраст пациентов составил 56,2 года (19–86 лет). Основное лечение по поводу опухолей желудочно-кишечного тракта получали 177 (38,2 %) пациентов, мочевыводящих путей – 124 (26,8 %), женских половых органов – 64 (13,8 %), легкого - 57 (12,3 %), по поводу прочих новообразований – 41 (8,9 %) больной.

Возникшие ИМП были ассоциированы с длительно стоящими уретральными катетерами у 295 (63,7 %), с нефростомами – у 36 (7,8 %) пациентов, у 132 (28,5 %) больных инфекции возникли в отсутствие катетеров. В 81 (17,5 %) случае ИМП были диагностированы до операции; в 342 (73,8 %) – в послеоперационном периоде, из них у 266 (57,5 %) пациентов инфекция мочевыводящих путей была диагностирована во время нахождения в отделении реанимации; 40 (8,7 %) больным оперативное вмешательство не проводилось.

Идентификация возбудителей проводилась на масс-спектрометре (MALDI TOF), антибио- тикограмма была получена с использованием микробиологических анализаторов WalkAway и VITEK-2. Предварительный скрининг мочи проводили на анализаторе мочи SYSMEX: при обнаружении повышенного количества грибов, бактерий или лейкоцитов анализ мочи подлежал дальнейшему бактериологическому исследованию. Статистическая обработка проводилась по методу Стьюдента.

Результаты и обсуждение

Мы проанализировали 479 штаммов группы ESKAPE , выделенных при ИМП у онкологических больных. Золотистые стафилококки не были выявлены, 10 % проанализированных штаммов составили энтерококки - грамотрицательные микроорганизмы. Чаще всего из всех бактерий группы ESKAPE выделяли E. coli и K. pneumoniae : 206 (43,6 %) и 188 (39,2 %) штаммов соответственно. Остальные бактерии этой группы выделялись реже и составляли от 2 до 9 % (p>0,0001) (табл. 1, 2).

При анализе антибиотикограммы штаммы A. baumannii были в 100 % случаев резистентны ко всем тестовым антибиотикам, за исключением имипенем/циластатин, к которому устойчивы были 89 % штаммов (табл. 1). K. pneumoniae также отличалась высокой устойчивостью к антибиотикам. Количество чувствительных штаммов не превышало 57 % и было наибольшим для меропенема (57 %) в сравнении с имипенемом/циластатином и пиперациллином/тазобактамом (42 % каждый) (p<0,01). Таким образом, возможно применение пиперациллина/тазобактама для лечения инфекций, вызванных K. pneumoniae (в том числе БЛРС-продуцентами). Это позволит уменьшить использование карбапенемов, активное применение которых в клинике ведет к формированию карбапенем-резистентных штаммов (Кар-Р). В нашем исследовании количество Кар-Р штаммов составило почти 100 % для A. baumannii и 43–58 % для K. pneumoniae (табл. 1, 2).

Синегнойные палочки оказались достаточно чувствительными к большинству антибиотиков: число штаммов, чувствительных к антибиотикам бета-лактамной группы, составило 50–75 %. При этом количество Кар-Р штаммов варьировало от 25 до 50 % (к меропенему и имипенему/циластатину соответственно), хотя разница не была статистически значимой (p>0,05). Количество чувствительных штаммов к антибиотикам других групп составило 50–71 %. При этом количество штаммов, чувствительных к ципрофлоксацину, составило 71 %, в то время как к левофлоксацину - 50 %, различия статистически не значимы (p>0,05).

Среди кишечных палочек, часто вызывающих инфекции мочевых путей, количество БЛРС-продуцентов составило 30 %, количество Кар-Р- продуцентов не превышало 8 %. При этом сохраняется высокая чувствительность к пипе-

Таблица 1

Количество грамотрицательных штаммов, чувствительных к бета-лактамным антибиотикам

Штаммы (n=431)

А/С

П/T

ЦФЗ

ЦТК

ЦТЗ

ЦФП

МЕР

ИМИ

А. Baumannii (n=9)

0 %

0 %

0 %

0 %

0 %

0 %

11 %

E. coli (n=206), продуценты БЛРС – 30 %

35 %

92 %

44 %

0 %

46 %

46 %

92 %

93 %

K. pneumonia (n=188), продуценты БЛРС – 85 %

23 %

42 %

12 %

15 %

15 %

19 %

57 %

42 %

P. aeruginosa (n=28)

71 %

68 %

64 %

75 %

50 %

Примечание: А/С – ампициллин/сульбактам, П/Т – пиперациллин/тазобактам, ЦФЗ – цефазолин, ЦТК – цефтриаксон, ЦТЗ – цефтазидим, ЦФП – цефепим, МЕР – меропенем, ИМИ – имипенем.

Таблица 2

Количество грамотрицательных штаммов, чувствительных к прочим группам антибиотиков

Штаммы (n=253) АМК ТОБ ЦИП ЛЕВ ТЕТ Т/С А. Baumannii (n=9) 0 % 75 % 0 % 0 % 0 % E. coli (n=206), продуценты БЛРС – 30 % 35 % 71 % 92 % 84 % 0 % 87 % K. pneumonia (n=188), продуценты БЛРС – 85 % 23 % 25 % 42 % 12 % 15 % 15 % P. aeruginosa (n=28) 64 % 71 % 50 % 68 % Примечание: АМК – амикацин, ТОБ – тобрамицин, ЦИП – ципрофлоксацин, ЛЕВ – левофлоксацин, ТЕТ – тетрациклин, Т/С – триметоприм/сульфаметоксазол (Бисептол). Количество грамположительных штаммов, чувствительных к антибиотикам Таблица 3 Штаммы (n=48) АМ ЦИП ДАП ЛЕВ ЛНЗ ВАН E. faecium (n=9) 11 % 0 % 0 % 11 % 100 % 78 % E. faecalis (n=39) 95 % 32 % 95 % 34 % 95 % 97 % Примечание: АМ – ампициллин, ЦИП – ципрофлоксацин, ДАП – даптомицин, ЛЕВ – левофлоксацин, ЛНЗ – линезолид, ВАН – ванкомицин. рациллину/тазобактаму и обоим карбапенемам (число чувствительных штаммов – 92–93 %). Полученные данные позволяют использовать пи-перациллин/тазобактам для лечения инфекций, вызванных БЛРС-продуцентами, с целью отсрочки назначения и уменьшения общего использования карбапенемов в клинике. Среди прочих антибиотиков сохраняется высокая активность фторхино-лонов и бисептола (количество чувствительных штаммов к фторхинолонам составило 84–92 %, к бисептолу – 87 %). При сравнении активности аминогликозидов количество чувствительных штаммов E. coli к амикацину было значимо ниже, чем к тобрамицину (p<0,0001) и большинству других антибиотиков (табл. 1, 2).

E. faecium (в отличие от E. faecalis ) характеризовался множественной и высокой резистентностью к большинству антибиотиков: 95 % штаммов E. faecalis были чувствительны к ампициллину, в то время как E. faecium были чувствительны лишь в 11 % случаев (p<0001). Количество ванкомицин-резистентных энтерококков (VRE) составило 22 % среди E. faecium и 3 % среди E. faecalis (p>0,05).

Все штаммы E. faecium были резистентны к дапто-мицину, в то время как число резистентных к нему штаммов E. faecalis составило только 5 %. Особо настораживает появление линезолид-резистентных штаммов ( LRE ), число которых для E. faecalis составило 5 % (табл. 3). В отношении E. faecium таковых не выявлено.

Нами были проанализированы бактерии группы ESKAPE, выделенные при мочевых инфекциях от онкологических больных, которые являются наиболее «проблемными» как в нашей стране, так и практически во всем мире. Из них грамотрицательными микроорганизмами были представлены 90 %. Наиболее часто встречались кишечные палочки и K. pneumoniae, которые составили 43,6 и 39,2 % соответственно. Остальные грамотрицательные бактерии выделялись в значительно меньшем количестве (2–9 %). Золотистые стафилококки выделены не были. Выделенные микроорганизмы обладали высокой резистентностью к антибиотикам. Так, количество БЛРС-продуцентов для клебсиелл составило 85 %, для кишечной палочки – 30 %, для синегнойной палочки – 32 %, что требует ограничения использования цефалоспоринов 3–4 поколений, способствующих выработке БЛРС. Частое использование антибиотиков группы карбапенемов (меропенема, имипенема и др.) при инфекциях, вызванных БЛРС-продуцентами, приводит к появлению и нарастанию числа Кар-Р штаммов среди грамо-трицательных микроорганизмов. Так, количество Кар-Р штаммов среди кишечных палочек составило 8 %, среди клебиелл, ацинетобактеров и синегнойных палочек – 43–58 %, 89–100 % и 50–25 % (меропенем и имипенем) соответственно. Это свидетельствует о необходимости использования альтернативных препаратов для лечения ИМП, вызванных продуцирующими БЛРС микроорганизмами. Количество грамположительных штаммов, в основном энтерококков, было невелико. Почти все штаммы E. faecalis были чувствительны к ампициллину, который следует использовать для лечения инфекций, вызванных этим микроорганизмом. Нерациональное использование ванкомицина или линезолида приводит к появлению VRE и LRE, количество которых в нашем исследовании, соответственно, составило для E. faecium и E. faecalis 22 и 3 % (VRE), 0 и 5 % (LRE). Среди E. faecium нами не было выделено штаммов, чувствительных к даптомицину, в то время как E. faecalis в 95 % случаев были к нему чувствительны. То есть даптомицин не должен использоваться в эмпирической терапии ИМП не только в силу отсутствия зарегистрированных показаний, но также из-за вариабельной чувствительности энтерококковых инфекций и отсутствия активности в отношении грамотрицательных микроорганизмов.

Список литературы Таксономическая структура бактериальных инфекций мочевых путей у онкологических больных

  • Flores-Mireles A.L., Walker J.N., Caparon M., Hultgren S.J. Urinary tract infections: epidemiology, mechanisms of infection and treatment options. Nat Rev Microbiol. 2015 May; 13 (5): 269-84. DOI: 10.1038/nrmicro3432
  • Григорьевская З.В. Стратегия лечения нозокомиальных инфекций, вызванных резистентными микроорганизмами, в онкологической клинике . ; 2015. 252.
  • Петухова И.Н., Григорьевская З.В., Дмитриева Н.В. Раневые инфекции в онкоурологии. Сибирский онкологический журнал. 2014; 5: 60-6.
  • Петухова И.Н., Дмитриева Н.В. Инфекции мочевыводящих путей у онкологических больных. Злокачественные опухоли. 2014; 3: 160-16.
  • Петухова И.Н., Дмитриева Н.В. Терапия инфекций мочевыводящих путей на фоне онкоурологических заболеваний. Онкоурология. Фармакотерапия без ошибок (руководство для врачей). М., 2014. С. 469-498.
  • Петухова И.Н., Дмитриева Н.В. Антимикробная терапия внутрибольничных инфекций. М.: АБВ-Пресс С, 2015. С. 294-303.
  • Arias C.A., Murray B.E. The rise of the Enterococcus: beyond vancomycin resistance. Nat Rev Microbiol. 2012 Mar 16; 10 (4): 266-78. DOI: 10.1038/nrmicro2761
  • Kostakioti M., Hultgren S.J., Hadjifrangiskou M. Molecular blueprint of uropathogenic Escherichia coli virulence provides clues toward the development of anti-virulence therapeutics. Virulence. 2012 Nov 15; 3 (7): 592-4. DOI: 10.4161/viru.22364
  • Foxman B. Urinary tract infection syndromes: occurrence, recurrence, bacteriology, risk factors, and disease burden. Infect Dis Clin North Am. 2014 Mar; 28 (1): 1-13. DOI: 10.1016/j.idc.2013.09.003
  • Lo E., Nicolle L.E., Coffin S.E., Gould C., Maraqakis L.L., Meddinqs J., Peques D.A., Pettis A.M., Saint S., Yokoe D.S. Strategies to prevent catheter-associated urinary tract infections in acute care hospitals: 2014 update. Infect Control Hosp Epidemiol. 2014 Sep; 35 Suppl 2: S32-47.
Еще
Статья научная