Термические эффекты при лазерной обработке суставного хряща

Автор: Иванников С.В., Лычагин А.В., Бобров Д.С., Юсупов В.И., Старцева Е.Д., Сурин В.В., Наиманн А.И., Жарова Т.А., Явлиева Р.Х., Ян Яньбинь

Журнал: Кафедра травматологии и ортопедии @jkto

Рубрика: Оригинальное исследование

Статья в выпуске: 2 (48), 2022 года.

Бесплатный доступ

Обоснование: Остеоартроз - одно из наиболее распространённых заболеваний, приводящих к потере трудоспособности. Артроскопическая лазерная обработка суставного хряща является эффективным и перспективным методом лечения остеоартроза, однако её методика может быть улучшена за счёт результатов данного исследования.Цель: Определение степени термического воздействия двухволнового лазерного излучения ближнего инфракрасного диапазона на суставной хрящ при лазерной обработке.Методы: Образцы суставных хрящей быка были подвергнуты воздействию инфракрасного лазерного излучения с различными параметр. Во время воздействия расстояние от торца волокна до образца составляло 2 мм. При этом измерение поверхностной температуры хряща производилось при помощи тепловизионной камеры, а температура в объеме образца измерялась точечно при помощи термопары. Результаты: Изменение поверхностной температуры образцов хрящей при воздействии в течение 2 с излучением с λ= 0,97 мкм/7 Вт составило ΔT=2,4±0,5 °C, а с λ= 1,55 мкм/5Вт - ΔT=21,1 °C. Воздействие в течение 2 с двухволновым излучением с λ= 1,55/5 Вт + λ=0,97 мкм /3 Вт приводило к подъему поверхностной температуры на 21,8±0,5 °C. При воздействии в течение 2 с двухволновым излучением с λ= 1,55/5 Вт + λ=0,97 мкм /3 Вт увеличение температуры биоткани на глубине 1 мм составило: на оптической оси - ΔT=11 °C, на расстоянии 1 мм от оси - ΔT=4 °C, на расстоянии 2 мм от оси - ΔT=3 °C.Выводы: 1) При использовании двухволнового излучения λ=1.56 мкм и λ=0.97 мкм, наибольший вклад в нагрев хрящевой ткани вносит λ=1.56 мкм, поглощающееся в поверхностных областях, тогда как излучение λ=0.97 мкм поглощается слабее и проникает в более глубокие слои. 2) Максимальное увеличение температуры хряща происходит в пределах 1 мм от оси распространения лазерного излучения. Благодаря этому лазерная обработка позволяет эффективно добиваться «сглаживания» поверхности хряща при минимальном воздействии на ткани вне обрабатываемой области. 3) Лазерное излучение с используемыми параметрами помимо чисто термического воздействия на хрящевую ткань может запускать процессы ее регенерации по механизмам механобиологии и фотобиомодуляции.

Еще

Лазер, суставной хрящ, хондромаляция, двухволновое излучение, импульсно-периодический режим, длина волны, параметры излучения, лазерная обработка

Короткий адрес: https://sciup.org/142236566

IDR: 142236566   |   DOI: 10.17238/2226-2016-2022-2-43-52

Список литературы Термические эффекты при лазерной обработке суставного хряща

  • Glyn-Jones S., Palmer A. J. R. Agricola, AJ Price, TL Vincent, H. Weinans . AJ Carr, Osteoarthritis. Lancet, 2015,vol 386, no 9991, pp. 376-87. Doi: 10.1016/S0140-6736(14)60802-3
  • Madry H., Kon E., Condello V., Peretti G.M., Steinwachs M., Seil R., Berruto M., Engebretsen L., Filardo G., Angele P. (2016) Early osteoarthritis of the knee. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc, 2016, no 24, pp. 1753-1762. Doi: 10.1007/s00167-016-4068-3
  • Корнилов Н. Н., Денисов А. А. Парадигма раннего гонартроза: обзор современных возможностей диагностики и лечения (часть 1) // Терапевтический архив // 2017. Т. 89. №. 12-2. С.238-243.
  • Иванников С. В Лазерная артроскопическая хирургия (Дегенеративно-дистрофические поражения коленного сустава). Москва, 2001. 19 с.
  • Перспективы лечения дискогенных компрессионных форм пояснично-крестцовых радикулитов с помощью пункционных неэндоскопических лазерных операций / Сандлер Б. И. [и др.]. Владивосток. 2004. 181 с.
  • Лазерная инженерия хрящей / Баграташвили В. Н. [и др.]. Москва. 2006. 448с.
  • Sobol E. etal. Laser regeneration of spine discs cartilage: mechanism, in-vivo study and clinical applications. Proceedings of Light-Activated Tissue Regeneration and Therapy Conference. Springer, Boston, MA, 2008. Pp. 259-266. Doi: 10.1007/978-0-387-71809-5_24
  • Holden P. K. et al. The effects of laser irradiation of cartilage on chondrocyte gene expression and the collagen matrix. Lasers in Surgery and Medicine: The Official Journal of the American Society for Laser Medicine and Surgery, 2009 vol. 41, no. 7, pp 487-491. Doi: https://doi.org/10.1002/lsm.20795
  • Wong B. J. F. et al. Identification of chondrocyte proliferation following laser irradiation, thermal injury, and mechanical trauma. Lasers in Surgery and Medicine: The Official Journal of the American Society for Laser Medicine and Surgery, 2005, vol. 37, no. 1, pp.89-96. Doi: https://doi.org/10.1002/lsm.20180
  • Yusupov V. I., Chudnovskii V. M., Bagratashvili V. N. Laser-induced hydrodynamics in water-saturated biotissues. 1. Generation of bubbles in liquid. Laser physics, 2010, vol. 20, no. 7, pp. 1641-1646. Doi:10.1134/S1054660X1014001X
  • Yusupov V. I., Chudnovskii V. M., Bagratashvili V. N. Laser-induced hydrodynamics in water-saturated biotissues: 2. Effect on delivery fiber. Laser Physics, 2011, vol. 21, no. 7, pp. 1230-1234. Doi:10.1134/S1054660X11140015
  • Yusupov V. I. et al. Laser-induced hydrodynamics in water-saturated tissue: III. Optoacoustic effects. Laser Physics, 2013, vol. 24, no. 1, pp. 015601. Doi:10.1088/1054-660X/24/1/015601
  • Yusupov V. I. et al. Generation of acoustic waves by cw laser radiation at the tip of an optical fiber in water. Acoustical Physics, 2016, vol. 62, no. 5, pp. 537-544. Doi:10.1134/S1063771016050183
  • O’Conor C. J., Case N., Guilak F. Mechanical regulation of chondrogenesis. Stem cell research & therapy, 2013, vol. 4, no. 4, pp. 1-13. Doi:10.1186/scrt211
  • Fahy N., Alini M., Stoddart M. J. Mechanical stimulation of mesenchymal stem cells: Implications for cartilage tissue engineering. Journal of Orthopaedic Research®, 2018, vol. 36, no. 1, pp. 52-63. Doi :10.1002/jor.23670
  • Juang Y. M. et al. Proteomic analysis of chondrocytes exposed to pressure. Biomedical Chromatography, 2010, vol. 24, no. 12, pp. 1273-1282. Doi:10.1002/bmc.1436
  • Mizuno S., Ogawa R. Using changes in hydrostatic and osmotic pressure to manipulate metabolic function in chondrocytes. American Journal of Physiology-Cell Physiology, 2011, vol. 300, no. 6, pp. 1234-1245. Doi:10.1152/ajpcell.00309.2010
  • Karamesinis K. et al. Continuous hydrostatic pressure induces differentiation phenomena in chondrocytes mediated by changes in polycystins, SOX9, and RUNX2. Journal of Orofacial Orthopedics/Fortschritte der Kieferorthopädie, 2017, vol. 78, no. 1, pp. 21-31. Doi:10.1007/s00056-016-0061-1
  • Sobol E. N. et al. Laser-induced regeneration of cartilage. Journal of Biomedical Optics, 2011, vol.16, no. 8, pp. 080902. Doi:10.1117/1.3614565
  • Alexandrovskaya Y. M. et al. Mechanisms of laser activation of chondrocytes in osteoarthritis healing. Laser Physics Letters, 2018, vol. 15, no. 8, pp. 085601. Doi:10.1088/1612-202X/aac746
  • Баум О. И. Механизмы модификации хрящевой ткани и тканей глаза под действием лазерного излучения. Москва. 2016. 22 с.
  • Лазерная обработка хондромаляции суставного хряща / А.В Лычагин. и [др.]. //Лазерная медицина. 2022. Т. 25. №. 4. С. 9-15.
  • Escudero J. S. B. et al. Photobiomodulation therapy (PBMT) in bone repair: A systematic review. Injury, 2019, vol. 50 no. 11, pp. 1853-1867. Doi: https://doi.org/10.1016/j.injury.2019.09.031
Еще
Статья научная