Токсины микромицетов в генеративных органах растений семейства Fabaceae

Автор: Кононенко Г.П., Буркин А.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Микотоксины

Статья в выпуске: 5 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

При изучении роли ассоциированных микроскопических грибов в адаптации растений к внешним воздействиям внимание исследователей сосредоточено на таких ключевых аспектах, как смещение состава внутренней микобиоты в процессе роста, направленность колонизации грибами вегетативных и генеративных органов, а также сопутствующие изменения в метаболическом статусе организма (J.A. Wearn с соавт., 2012; V. Arbona с соавт ., 2013; J. Hong с соавт . , 2016). У луговых трав семейства Fabaceae изучена динамика накопления ДНК грибов Alternaria , Clado-sporium и Fusarium в разные месяцы сбора растений (О.П. Гаврилова с соавт., 2017; А.С. Орина с соавт . , 2018) и выявлены сезонные колебания в содержании токсичных метаболитов, свойственных этим группам микромицетов (А.А. Буркин, Г.П. Кононенко, 2018, 2019). У клевера лугового, клевера ползучего, козлятника восточного, люпина многолистного и донников установлена преимущественная локализация микотоксинов в листовых пластинках (Г.П. Кононенко с соавт., 2019). В настоящем исследовании нами впервые описаны комплексы токсичных метаболитов несовершенных грибов в генеративных органах бобовых растений. Целью работы стало изучение компонентного состава и содержания микотоксинов в цельных растениях, цветках и плодах многолетних бобовых трав из шести родов семейства Fabaceae . Луговые травы родов Trifolium L. - клевер луговой ( T. pratense L.), клевер гибридный ( T. hybridum L.), клевер средний ( T. medium L.), клевер ползучий ( T. repens L.), Lathyrus L. - чина луговая ( L. pratensis L.), чина весенняя ( L. vernus (L.) Bernh.), Vicia L. - горошек заборный ( V. sepium L.), горошек мышиный ( V. cracca L.), Lotus L. - лядвенец рогатый ( L. corniculatus L. s.l.), Lupinus L. - люпин многолистный ( L. polyphyllus Lindl.) и Galega L. - козлятник восточный ( G. orientalis Lam.) отбирали из естественных травостоев Московской области в мае-первой половине августа 2019 года, горошек лесной ( V. sylvatica L.) и чину японскую ( L. japonicus Willd. subsp. pubescens Korobkov) - во второй половине августа того же года на побережье Кандалакшского залива Белого моря (Республика Карелия). Надземные части растений, а также цветки и бобы выдерживали при комнатной температуре до воздушно-сухого состояния и измельчали в лабораторной мельнице. Для экстракции применяли смесь ацетонитрила и воды в объемном соотношении 84:16 при расходе 10 мл на 1 г навески. Экстракты после 10-кратного разбавления буферным раствором использовали для непрямого конкурентного иммуноферментного анализа. Содержание микотоксинов - Т-2 токсина (Т-2), дезоксиниваленола (ДОН), зеараленона (ЗЕН), фумонизинов (ФУМ), эргоалкалоидов (ЭА), альтернариола (АОЛ), роридина А (РОА), афлатоксина В1 (АВ1), стеригматоцистина (СТЕ), циклопиазоновой кислоты (ЦПК), эмодина (ЭМО), охратоксина А (ОА), цитринина (ЦИТ), микофеноловой кислоты (МФК), PR-токсина (PR) определяли с помощью коммерческих и исследовательских аттестованных иммуноферментных тест-систем (ГОСТ 31653-2012). Для генеративных органов большинства обследованных растений были выявлены как общие черты (сохранение профиля микотоксинов, типичного для целого растения, при отсутствии или снижении содержания ряда грибных метаболитов), так и особенности. В частности, в цветках трех видов рода Trifolium L. в целом сохранялся комплекс микотоксинов, свойственный вегетативной части, но при этом встречаемость и накопление фузариотоксинов были выше. Для цветков двух видов - клевера гибридного и клевера среднего была характерна сочетанная контаминация ОА и ЦИТ в сопоставимых количествах, редкая для растений. При общей низкой контаминации у лядвенца рогатого фузариотоксины Т-2, ДОН и ЗЕН присутствовали только в генеративных органах. У всех представителей родов Vicia , Lathyrus , Lupinus и Galega метаболический фон в цветках в целом был оценен как ослабленный, в бобах он оказался сходным с надземной частью без отчетливых признаков смены компонентного состава и резкого варьирования содержания микотоксинов.

Еще

Бобовые травы, цветки, бобы, микотоксины, иммуноферментный анализ

Короткий адрес: https://sciup.org/142231394

IDR: 142231394   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.5.968rus

Список литературы Токсины микромицетов в генеративных органах растений семейства Fabaceae

  • Saikkonen K., Faeth S.H., Helander M., Sullivan T.J. Fungal endophytes: a continuum of interactions with host plants. Annual Review of Ecology and Systematics, 2003, 29(1): 319-343 (doi: 10.1146/annurev.ecolsys.29.1.319).
  • Rodriguez R.J., White J.F.Jr., Arnold A.E., Redman R.S. Fungal endophytes: diversity and functional roles. New Phytologist, 2009, 182(2): 314-330 (doi: 10.1111/j.1469-8137.2009.02773.x).
  • Card S.D., Faville M.J., Simpson W.R., Johnson R.D., Voisey C.R., de Bonth A.C.M., Hume D.E. Mutualistic fungal endophytes in the Triticeae — survey and description. FEMS Microbiology Ecology, 2014, 88(1): 94-106 (doi: 10.1111/1574-6941.12273).
  • Potshangbam M., Devi S.I., Sahoo D., Strobel G.A. Functional characterization of endophytic fungal community associated with Oryza sativa L. and Zea mays L. Frontiers in Microbiology, 2017, 8: 325 (doi: 10.3389/fmicb.2017.00325).
  • Sánchez Márquez S., Bills G.F., Zabalgogeazcoa I. The endophytic mycobiota of the grass Dactylis glomerata. Fungal Diversity, 2007, 27: 171-195.
  • Wearn J.A., Sutton B.C., Morley N.J., Gange A.C. Species and organ specificity of fungal endophytes in herbaceous grassland plants. Journal of Ecology, 2012, 100(5): 1085-1092 (doi: 10.1111/j.1365-2745.2012.01997.x).
  • Hodgson S., Cates C., Hodgson J., Morley N.J., Sutton B.C., Gange A.C. Vertical transmission of fungal endophytes is widespread in forbs. Ecology and Evolution, 2014, 4(8): 1199-1208 (doi: 10.1002/ece3.953).
  • Kusari S., Spiteller M. Metabolomics of endophytic fungi producing associated plant secondary metabolites: progress, challenges and opportunities. In: Metabolomics /U. Roessner (ed.). In Tech, London, 2012 (doi: 10.5772/31596).
  • Arbona V., Manzi M., de Ollas C., Gómez-Cadenas A. Metabolomics as a tool to investigate abiotic stress tolerance in plants. International Journal of Molecular Sciences, 2013, 14(3): 4885-4911 (doi: 10.3390/ijms14034885).
  • Hong J., Yang L., Zhang D., Shi J. Plant metabolomics: an indispensable system biology tool for plant science. International Journal of Molecular Sciences, 2016, 17(6): 767 (doi: 10.3390/ijms17060767).
  • Гаврилова О.П., Орина А.С., Гагкаева Т.Ю. Количественная оценка зараженности видов рода Trifolium грибами и контаминации микотоксинами. Агрохимия, 2017, 11: 58-66 (doi: 10.7868/S0002188117110072).
  • Орина А.С., Гаврилова О.П., Гагкаева Т.Ю. Выявление зараженности грибами однолетних и многолетних трав семейства Leguminosae методом количественной ПЦР. Вестник защиты растений, 2018, 2(96): 35-41.
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А.Вторичные метаболиты микромицетов в растениях семейства Fabaceae рода Trifolium. Известия Российской академии наук. Серия биологическая, 2018, 2: 150-157 (doi: 10.7868/S0002332918020030).
  • Буркин А.А., Кононенко Г.П. Вторичные метаболиты микромицетов в растениях семейства Fabaceae родов Galega, Glycyrrhiza, Lupinus, Medicago, Melilotus. Известия Российской академии наук. Серия биологическая, 2018, 3: 267-274 (doi: 10.7868/S0002332918030037).
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А. Вторичные метаболиты микромицетов в растениях семейства Fabaceae родов Lathyrus, Vicia. Известия Российской академии наук. Серия биологическая, 2019, 3: 229-235 (doi: 10.1134/S0002332919030044).
  • Бобушева С.Т., Доолоткельдиева Т.Д. Эндофитные грибы-симбионты высших растений различных экосистем Кыргызстана. FenBilimleriDergisi (JournalofNaturalScience), 2008, 9: 1-8.
  • Кононенко Г.П., Зотова Е.В., Устюжанина М.И.Распределение микотоксинов по органам у бобовых и крестоцветных растений. В сб.: Успехи медицинской микологии. М., 2019, 20: 649-653.
  • Губанов И.А., Киселева К.В., Новиков В.С., Тихомиров В.Н. Иллюстрированный определитель растений Средней России. Том 2. М., 2003.
  • Скворцов В.Э. Иллюстрированное руководство для ботанических практик и экскурсий в Средней России. М., 2004.
  • Inch S., Gilbert J. The incidence of Fusarium species recovered from inflorescences of wild grasses in southern Mannitoba. Canadian Journal of Plant Pathology,2003, 25(4): 379-383 doi: 10.1080/07060660309507093).
  • Harrow S.A., Farrokhi-Nejad R., Pitman A.R., Scott I.A.W., Bentley A., Hide C., Cromey M.G. Characterization of New Zealand Fusarium populations using a polyphasic approach differentiates the F. avenaceum/F. acuminatum/F. tricinctum species complex in cereal and grassland systems. Fungal Biology, 2010, 114(4): 293-311 (doi: 10.1016/j.funbio.2010.01.005).
  • Postic J., Cosic J., Vrandecic K., Jurkovic D., Salch A.A., Leslie J.F. Diversity of Fusarium species isolated from weeds and plant debris in Croatia. Journal of Phytopathology, 2012, 160(2): 76-81 (doi: 10.1111/j.1439-0434.2011.01863.x).
  • Lofgren L.A., LeBlanc N.R., Certano A.K., Nachtigall J., LaBine K.M., Riddle J., Broz K., Dong Y., Bethan B., Kafer C.W., Kistler H.C. Fusarium graminearum: pathogen or endophyte of North American grasses? New Phytologist, 2017, 217(3): 1203-1212 (doi: 10.1111/nph.14894).
  • Буркин А.А., Кононенко Г.П. Вторичные метаболиты грибов (микотоксины) в лишайниках разной таксономической принадлежности. Известия Российской академии наук. Серия биологическая, 2014, 3: 228-235.
  • Kononenko G.P., Burkin A.A. Peculiarities of feed contamination with citrinin and ochratoxin A. Agricultural Sciences, 2013, 4(1): 34-38 (doi: 10.4236/as.2013.41006).
  • Wawrzyniak J., Waskiewicz A. Ochratoxin A and citrinin production by Penicillium verrucosum on cereal solid substrates. Food Additives and Contaminants, Part A,2014, 31(1): 139-148 (doi: 10.1080/19440049.2013.861933).
  • Schmidt-Heydt M., Stoll D., Schütz P., Geisen R. Oxidative stress induces the biosynthesis of citrinin by Penicillium verrucosum at the expanse of ochratoxin. International Journal of Food Microbiology, 2015, 192: 1-6 (doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2014.09.008).
  • Geisen R., Schmidt-Heydt M., Touhami N., Himmelsbach A. New aspects of ochratoxin A and citrinin biosynthesis in Penicillium. Current Opinion in Food Science, 2018, 23: 23-31 (doi: 10.1016/j.cofs.2018.04.001).
  • Larsen T.O., Svendsen A., Smedsgaard J. Biochemical characterization of ochratoxin A-producing strains of the genus Penicillium. Applied and Environmental Microbiology, 2001, 67(8): 3630-3635 (doi: 10.1128/AEM.67.8.3630-3635.2001).
  • Буркин А.А., Кононенко Г.П., Мосина Л.В. Первое микотоксикологическое исследование горчицы белой (SinapisalbaL.). Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(1): 186-194 (doi: 10.15389/agrobiology.2019.1.186rus).
  • Moretti A., Logrieco A.F., Susca A. Mycotoxins: an underhand food problem. In: Mycotoxigenic Fungi. Methods and Protocols /A. Moretti, A. Susca (eds.). Humana Press, New York, NY, 2017: 3-12 (doi: 10.1007/978-1-4939-6707-0).
  • Ali H., Ries M.I., Nijland J.G., Lankhorst P.P., Hankemeier T., Bovenberg R.A.L., Vreeken R.J., Driessen A.J.M. A branched biosynthetic pathway is involved in production of roquefortine and related compounds in Penicillium chrysogenum. PLoS One, 2013, 8(6): e65328 (doi: 10.1371/journal.pone.0065328).
  • Santana M.F., Queiroz M.V.Transposable elements in fingi: A genomic approach. Scientific Journal of Genetics and Gene Therapy, 2015, 1(1): 012-016.
  • Благовещенская Е.Ю. Эндофит-растение как сложная динамическая система. В сб.: Микология сегодня /Под ред. Ю.Т. Дьякова, А.Ю. Сергеева. М., 2011, 2: 126-134.
  • van Kan J.A.L., Shaw M.W., Grant-Downton R.T. Botrytis species: relentless necrotropic thugs or endophytes gone roque? Molecular Plant Pathology, 2014, 15(9): 957-961 (doi: 10.1111/mpp.12148).
  • Busby P.E., Ridout M., Newcombe G.Fungal endophytes: modifiers of plant disease. Plant Molecular Biology, 2016, 90(6): 645-655 (doi: 10.1007/s11103-015-0412-0).
  • Harrison J.G., Griffin E.A. The diversity and distribution of endophytes across biomes, plant phylogeny and host tissues: how far have we come and where do we go from here? Environmental Microbiology, 2020, 22(6): 2107-2123 (doi: 10.1111/1462-2920.14968).
  • Vorob’eva I., Toropova E. Fungi ecological niches of the genus Fusarium Link. Bio Web of Conferences, 2020, 24: 00095 (doi: 10.1051/bioconf/20202400095).
  • Орина А.С., Гаврилова О.П., Гагкаева Т.Ю. Колонизация культурных и дикорастущих злаковых растений грибами родов Alternaria, Cladosporium и Fusarium. Защита и карантин растений, 2017, 3: 25-27.
  • Чуб В.В. Физиология растений. Глава 7. Рост и развитие растений. 2003. Режим доступа: https://web.archive.org/web/20070120092003/http://herba.msu.ru/russian/departments/physiology/spezkursi/chub/index_7.html. Без даты.
Еще
Статья научная