Трансформация модифицированных полихлорбифенилов штаммом Rhodococcus wratisla viensis КТ112-7 в условиях засоления
Автор: Егорова Д.О.
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Микробиология
Статья в выпуске: 3, 2018 года.
Бесплатный доступ
Показано, что штамм Rhodococcus wratislaviensis КТ112-7 способен разлагать смесь соединений, образованную после химической модификации коммерческой смеси полихлорированных бифени-лов марки Совол, в условиях засоления. Смесь состоит из тетра- и пентахлорированных бифени-лов, гидрокси-полихлорированных бифенилов, аминоэтокси-полихлорированных бифенилов и гидроксиаминоэтокси-полихлорированных бифенилов. Установлено, что величина деструкции данной смеси штаммом R. wratislaviensis КТ112-7 в присутствии в среде 60 г/л хлорида натрия составляет 73.8%. В условиях засоления среды штамм КТ112-7 проявляет деградативную активность ко всем модифицированным и не модифицированным конгенерам полихлорбифенилов, представленных в смеси. Разложение данных соединений происходило с образованием и накоплением в среде хлорированных и гидроксилированных бензойных кислот, а также катехола.
Полихлорированные бифенилы, соз, штаммы-деструкторы, химическая модификация
Короткий адрес: https://sciup.org/147227029
IDR: 147227029
Список литературы Трансформация модифицированных полихлорбифенилов штаммом Rhodococcus wratisla viensis КТ112-7 в условиях засоления
- Горбунова Т.И. и др. Пример междисциплинарного подхода к проблеме обезвреживания техногенных полихлорбифенилов // Доклады Академии наук. 2014. Т. 454, № 4. С.411-416. DOI: 10.7868/S086956521404015X
- Горбунова Т.И. и др. Полихлорирбифенилы. Проблемы экологии, анализа и химической утилизации. М.: Красанд, 2011. 400 с.
- Егорова Д. О. и др. Деструкция ароматических углеводородов штаммом Rhodococcus wratis-lavensis KT112-7, выделенным из отходов соледобывающего предприятия // Прикладная биохимия и микробиология. 2013. Т. 49, № 3. С. 267-278. DOI: 10.7868/S0555109913030070
- Егорова Д.О. и др. Бактериальная деструкция смеси, полученной при химической модификации поли-хлорированных бифенилов полиэтиленгликолями // Биотехнология. 2013. № 4. С. 56-64.
- Егорова Д.О. и др. Особенности разложения хлорированных бифенилов штаммом Rhodococcus wratislaviensis КТ112-7 в условиях засоления // Прикладная биохимия и микробиология. 2018. Т. 54, № 3. С. 253-263. 10.7868/ S0555109918030042. DOI: 10.7868/S0555109918030042
- Егорова Д.О. и др. Утилизация полихлорбифе-нилов с использованием химических и биологических процессов // Доклады Академии наук. 2011. Т. 441, № 3. С. 328-331.
- Трегер Ю. СОЗ - стойкие и очень опасные // The Chemical Journal. 2013. № 1. С. 30-34.
- Agullo L., Pieper D.H., Seeger M. Handbook of Hydrocarbon and lipid Microbiology / ed. N.T. Kenneth. Berlin; Heidelberg: Springer, 2017. P. 1-28.
- Bhalla R., Tehrani R., Van Aken B. Toxicity of hy-droxylated polychlorinated biphenyls (HO-PCBs) using the bioluminescent assay Microtox // Ecotoxicology. 2016. Vol. 25. P. 1438-1444.
- Erikson M.D., Kaley II R.G. Applications of poly-chlorinated biphenyls // Environmental Science Pollution Reserch. 2011. Vol. 18(2). P. 135-151.
- DOI: 10.1007/s11356-010-0392-1
- Field J.A., Sierra-Alvarez R. Microbial transformation and degradation of polychlorinated biphenyls // Environmental Pollution. 2008. Vol. 155, № 1. P. 1-12.
- Frankova K. et al. Ability of bacterial biphenyl di-oxygenases from Burkholderia sp. LB400 and Co-mamonas testosteroni B-356 to catalyse oxygenation of ortho-hydroxychlorobiphenyla formed from PCBs by plants // Environmental Pollution. 2004. Vol. 127. P. 41-48.
- Makova M. et al. Biotransformation of PCBs by plants and bacteria - consequences of plant-microbe interactions // European Journal of Soil Biology. 2007. Vol. 43. P. 233-241.
- Margesin R., Schinner F. Biodegradation and bioreme-diation of hydrocarbons in extreme environments // Applied Microbiology Biotechnology. 2001. Vol. 56. P. 650-663.
- DOI: 10.1007/s002530100701
- Mizukami-Murata S. et al. Detoxification of hydroxy-lated polychlorobiphenyls by Sphingomonas sp. strain N-9 isolated from forest soil // Chemosphere. 2016. Vol. 165. P. 173-182.
- Murugan K., Vasudevan N. Intracellular toxicity by PCBs and role of VBNC bacterial strains in biodegradation // Ecotoxicology Environmental Safety. 2018. Vol. 157. P. 40-60.
- DOI: 10.1016/j.ecoenv.2018.03.014
- Pieper D.H. Aerobic degradation of polychlorinated biphenyls. // Applied Microbiology Biotechnology. 2005. Vol. 67, № 2. P. 170-191.
- DOI: 10.1007/s00253-004-1810-4
- Raymond R.L. Microbial oxidation of n-paraffinic hydrocarbons // Developments in Industrial Microbiology. 1961. Vol. 2. P. 23-32.
- Ross G. The public health implications of polychlori-nated biphenyls (PCBs) in the environment // Ecotoxicology Environmental Safety. 2004. Vol. 59. P. 275-291.
- DOI: 10.1016/j.ecoenv.2004.06.003
- Sandossi M. et al. Metabolism of hydroxibiphenyl and chloro-hydroxybiphenyl by biphenyl/chlorobiphe-nyl degrading Pseudomonas testosteroni, strain B-356 // Journal of Industrial Microbiology. 1991. Vol. 7. P. 77-88.
- Tehrani R. et al. Biodegradation of mono-hydro-xylated PCBs by Burkholderia xenovorans // Biotechnology Letters. 2012. Vol. 34. P. 2247-2252.
- Tehrani R., Lyv M.M., Van Aken B. Transformation of hydroxylated derivatives of 2,5-dichlorobiphenyl and 2,4,6-trichlorobiphenyl by Burkholderia xenovorans LB400 // Environmental Science Pollution Reserch. 2014. Vol. 21. P. 6346-6353.
- Tehrani R., Van Aken B. Hydroxylated polychlori-nated biphenyls in the environment: sources, fate, and toxicities // Environmental Science Pollution Reserch 2014. Vol. 21. P. 6330-6345.
- DOI: 10.1007/s11356-013-1742-6
