Трансгенная птица - создание и области применения (обзор)

Трансгенная птица - создание и области применения (обзор)

Автор: Коршунова Л.Г., Карапетян Р.В., Зиадинова О.Ф., Фисинин В.И.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры

Статья в выпуске: 6 т.54, 2019 года.

Бесплатный доступ

Технологии трансгенеза в птицеводстве могут быть направлены на улучшение качественных и количественных характеристик продукции (Л.Г. Коршунова, 2011), создание птицы, генетически устойчивой к инфекционным заболеваниям и продуцирующей с яйцом рекомбинантные белки различного назначения (D. Cao с соавт., 2015). Для получения трансгенных животных чаще всего прибегают к микроинъекции ДНК в зиготы. Однако особенности размножения птиц создают серьезные проблемы для исследователей. Курица образует в сутки одну оплодотворенную яйцеклетку, которая очень велика и нежна для каких-либо манипуляций с ней. Для нормального эмбрионального развития ей необходимы третичные оболочки - белковая, подскорлупные и скорлупа. Дробление куриной яйцеклетки начинается уже в белковом отделе яйцевода, а в свежеснесенном яйце имеется 50-60 тыс. клеток. Первая трансгенная птица была получена с помощью ретровирусных векторов. В нормальных условиях ретровирусы сами включаются в геномную ДНК хозяина и реплицируются. На сегодняшний день трансгенные куры и перепела получены посредством ретровирусного (D.W. Salter с соавт., 1989; R.A. Bosselman с соавт., 1989; L.B. Crittenden с соавт., 1992) и лентивирусного трансгенеза (H.A. Kaleri с соавт., 2011; A.H. Seidl с соавт., 2013; Н.А. Волкова с соавт., 2015). Эффективные технологии модификации генома кур и перепелов продолжают разрабатываться. К ним относят метод ZFNs (zinc finger nucleases), TALENs (transcription activator-like effector nucleases) (T.S. Park с соавт., 2014), CRISPR/Cas9 (I. Oishi с соавт., 2016; Q. Zuo с соавт., 2016). Технология CRISPR/Cas9 позволяет достичь дальнейшего прогресса в генетических манипуляциях с птицей и создания линий с отредактированным геномом (N. Veron с соавт., 2015). Птичьи эмбрионы, главным образом эмбрионы курицы ( Gallus gallus domesticus ) и перепела ( Coturnix japonica ), более века служили моделью в эмбриологических исследованиях позвоночных. Современные целенаправленные генные манипуляции на эмбрионе цыпленка как модели in vivo стали возможны благодаря системе редактирования CRISPR/Cas9 (V. Morin с соавт., 2017). К другим методам создания трансгенных птиц относится получение химер при подсадке в эмбрионы чужих эмбриональных клеток в качестве переносчиков чужеродной ДНК (J.N. Petitte с соавт., 1990; J.Y. Han с соавт., 2017; Н.А. Волкова с соавт., 2017). Трансгенез с использованием сперматозоидов для доставки в зиготу инородного генетического материала представляется весьма заманчивым, поскольку искусственное осеменение широко используется в птицеводстве (E. Harel-Markowitz с соавт., 2009; А.В. Самойлов с соавт., 2013). Использование спермиев для переноса чужеродной ДНК в яйцеклетки птиц в сочетании с технологией CRISPR/Cas9 позволит значительно сократить время и ресурсы, затрачиваемые на создание трансгенных особей с целевым изменением генотипа в первом поколении, что открывает новые возможности для селекции (C.A. Cooper с соавт., 2017). Классической технологией безвирусного трансгенеза остается микроинъекция ДНК в зиготу. Метод включает прямую инъекцию генной конструкции в цитоплазму свежеоплодотворенной яйцеклетки курицы с последующей инкубацией до вылупления. Яйцеклетка для инъекции должна быть получена сразу после оплодотворения, следовательно, ее движение вниз по яйцеводу прерывается. Далее используется специально разработанная система культивирования (C. Mather, 1994). Другой вариант микроинъекций ДНК в яйцеклетку птиц предусматривает образование ее третичных оболочек естественным образом в половых путях птицы. В основе метода лежит хирургическая операция, которая обеспечивает доступ к яйцеклетке, инъекцию в нее ДНК и имплантацию обратно в яйцевод для формирования полноценного инкубационного яйца (Р.В. Карапетян, 1995). Так были созданы трансгенные куры и перепела с различными генными конструкциями (Р.В. Карапетян, 1996; Л.Г. Коршунова с соавт., 2013).

Еще

Трансгенез, птица, ретровирусы, микроинъекции, примордиальные клетки, сперматозоиды, редактирование генома

Короткий адрес: https://sciup.org/142226269

IDR: 142226269   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2019.6.1080rus

Список литературы Трансгенная птица - создание и области применения (обзор)

  • Cao D., Wu H., Li Q., Sun Y., Liu T., Fei J., Zhao Y., Wu S., Hu X., Li N. Expression of recombinant human lysozyme in egg whites of transgenic hens. PLoS ONE, 2015, 10(2): e0118626 ( ). DOI: 10.1371/journal.pone.0118626
  • Lin S.L., Chang S.E., Ying S.Y. Transgene-like animal models using intronic microRNAs In: MicroRNA protocols. Methods in molecular biology. V. 1733 /S.Y. Ying (ed.). Humana Press, NY, 2018: 239-254 ( ). DOI: 10.1007/978-1-4939-7601-0_20
  • Lee S.H., Gupta M.K., Ho Y.T., Kim T., Lee H.T. Transgenic chickens expressing human urokinase-type plasminogen activator. Poultry Science, 2013, 92(9): 2396-2403 ( ). DOI: 10.3382/ps.2013-03223
  • Byun S.J., Ji M.R., Jang Y.J., Hwang A.I., Chung H.K., Kim J.S., Kim K.W., Chung H.J., Yang B.C., Jeon I., Park J.K., Yoo J.G., Kim T.Y. Human extracellular superoxide dismutase (EC-SOD) expression in transgenic chicken. BMB Reports, 2013, 46(8): 404-409 ( ). DOI: 10.5483/bmbrep.2013.46.8.251
  • Sang H. Prospects for transgenesis in the chick. Mechanisms of Development, 2004, 121(9): 1179-1186 ( ). DOI: 10.1016/j.mod.2004.05.012
  • Bosselman R.A., Hsu R.-Y., Boggs T., Hu S., Bruszewski J., Ou S., Kozar L., Martin F., Green C., Jacobsen F., Nicholson M., Schultz J.A., Semon K.M., Rishell W., Stewart, R.G. Germline transmission of exogenous genes in the chicken. Science, 1989, 243(4890): 533-535 ( ).
  • DOI: 10.1126/science.2536194
  • Crittenden L.B. Retroviral elements in the genome of the chicken: implications for poultry genetics and breeding. Critical Reviews of Poultry Biology, 1991, 3(2): 73-109.
  • Salter D.W., Smith E.J., Hughes S.H., Wright S.E., Crittenden L.B. Transgenic chickens: insertion of retroviral genes into the chicken germ line. Virology, 1987, 157(1): 236-240 (
  • DOI: 10.1016/0042-6822(87)90334-5)
  • Salter D.W., Smith E.J., Hughes S.H., Wright S.E., Fadly A.M., Witter R.L., Crittenden L.B. Gene insertion into the chicken germ line by retroviruses. Poultry Science, 1986, 65(8): 1445-1458 ( ).
  • DOI: 10.3382/ps.0651445
  • Salter D.W., Crittenden L.B. Artificial insertion of a dominant gene for resistance to avian leukosis virus into the germ line of the chicken. Theoretical and Applied Genetics, 1989, 77(4): 457-461 ( ).
  • DOI: 10.1007/BF00274263
  • Crittenden L.B., Salter D.W. A transgene, alv6, that expresses the envelope of subgroup A avian leukosis virus reduces the rate of congenital transmission of a field strain of avian leukosis virus. Poultry Science, 1992, 71(5): 799-806 ( ).
  • DOI: 10.3382/ps.0710799
  • Petropoulos C.J., Payne W., Salter D.W., Hughes S.H. Appropriate in vivo expression of a muscle-specific promoter by using avian retroviral vectors for gene transfer [corrected]. Journal of Virology, 1992, 66(6): 3391-3397.
  • Poynter G., Huss D., Lansford R. Japanese quail: an efficient animal model for the production of transgenic avians. Cold Spring Harbor Protocols, 2009, 2009(1): pdb emo112 ( ).
  • DOI: 10.1101/pdb.emo112
  • McGrew M.J., Sherman A., Lillico S.G., Taylor L., Sang H. Functional conservation between rodents and chicken of regulatory sequences driving skeletal muscle gene expression in transgenic chickens. BMC Developmental Biology, 2010, 10: 26 ( ).
  • DOI: 10.1186/1471-213X-10-26
  • Kwon M.S., Koo B.C., Choi B.R., Park Y.Y., Lee Y.M., Suh H.S., Park Y.S., Lee H.T., Kim J.H., Roh J.Y., Kim N.H., Kim T. Generation of transgenic chickens that produce bioactive human granulocyte-colony stimulating factor. Molecular Reproduction and Development, 2008, 75(7): 1120-1126 ( ).
  • DOI: 10.1002/mrd.20860
  • Scott B.B., Lois C. Generation of tissue-specific transgenic birds with lentiviral vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2005, 102(45): 16443-16447 ( ).
  • DOI: 10.1073/pnas.0508437102
  • Ayers K.L., Smith C.A., Lambeth L.S. The molecular genetics of avian sex determination and its manipulation. Genesis, 2013, 51(5): 325-336 ( ).
  • DOI: 10.1002/dvg.22382
  • Seidl A.H., Sanchez J.T., Schecterson L., Tabor K.M., Wang Y., Kashima D.T., Poynter G., Huss D., Fraser S.E., Lansford R., Rubel E.W. Transgenic quail as a model for research in the avian nervous system: a comparative study of the auditory brainstem. The Journal of Comparative Neurology, 2013, 521(1): 5-23 ( ).
  • DOI: 10.1002/cne.23187
  • Park F. Lentiviral vectors: are they the future of animal transgenesis? Physiological Genomics, 2007, 31(2): 159-173 ( ).
  • DOI: 10.1152/physiolgenomics.00069.2007
  • Intarapat S., Stern C.D. Chick stem cells: current progress and future prospects. Stem Cell Research, 2013, 11(3): 1378-1392 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.scr.2013.09.005
  • Byun J.S., Yuk S.S., Jang Y.J., Choi H., Jeon M.H., Erdene-Ochir T.O., Kwon J.H., Noh J.Y., Kim J.S., Yoo J.G., Song C.S. Transgenic chickens expressing the 3D8 single chain variable fragment protein suppress avian influenza transmission. Scientific Reports, 2017, 7(1): 5938 ( ).
  • DOI: 10.1038/s41598-017-05270-8
  • Kaleri H.A., Xu S.Y., Lin H.L. Generation of transgenic chicks using an oviduct-specific expression system. Genetics and Molecular Research, 2011, 10(4): 3046-3055 ( ).
  • DOI: 10.4238/2011.December.8.1
  • Волкова Н.А., Фомин И.К., Томгорова Е.К., Ветох А.Н., Меннибаева Э.Р., Брем Г., Зиновьева Н.А. Изучение условий эффективного введения трансгенов в эмбриональные клетки кур с использованием лентивирусной векторной системы. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(4): 458-466 ( ).
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2015.4.458rus
  • Park S.H., Kim J.N., Park T.S., Lee S.D., Kim T.H., Han B.K., Han J.Y. CpG methylation modulates tissue-specific expression of a transgene in chickens. Theriogenology, 2010, 74(5): 805-816.e1 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.theriogenology.2010.04.005
  • Park T.S., Lee H.G., Moon J.K., Lee H.J., Yoon J.W., Yun B.N., Kang S.C., Kim J., Kim H., Han J.Y., Han B.K. Deposition of bioactive human epidermal growth factor in the egg white of transgenic hens using an oviduct-specific minisynthetic promoter. The FASEB Journal, 2015, 29(6): 2386-2396 ( ).
  • DOI: 10.1096/fj.14-264739
  • Park T.S., Lee H.J., Kim K.H., Kim J.S., Han J.Y. Targeted gene knockout in chickens mediated by TALENs. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2014, 111(35): 12716-12721 ( ).
  • DOI: 10.1073/pnas.1410555111
  • Oishi I., Yoshii K., Miyahara D., Kagami H., Tagami T. Targeted mutagenesis in chicken using CRISPR/Cas9 system. Scientific Reports, 2016, 6: 23980 ( ).
  • DOI: 10.1038/srep23980
  • Zuo Q., Wang Y., Cheng S., Lian C., Tang B., Wang F., Lu Z., Ji Y., Zhao R., Zhang W., Jin K., Song J., Zhang Y., Li B. Site-directed genome knockout in chicken cell line and embryos can use CRISPR/Cas gene editing technology. G3: Genes, Genomes, Genetics, 2016, 6(6): 1787-1792 ( ).
  • DOI: 10.1534/g3.116.028803
  • Davey M.G., Balic A., Rainger J., Sang H.M., McGrew M.J. Illuminating the chicken model through genetic modification. Int. J. Dev. Biol., 2018, 62: 257-264 ( ).
  • DOI: 10.1387/ijdb.170323mm
  • Fineran P.C., Charpentier E. Memory of viral infections by CRISPR-Cas adaptive immune systems: acquisition of new information. Virology, 2012, 434(2): 202-209 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.virol.2012.10.003
  • Jinek M., Chylinski K., Fonfara I., Hauer M., Doudna J.A., Charpentier E. A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity. Science, 2012, 337(6096): 816-821 ( ).
  • DOI: 10.1126/science.1225829
  • Wiedenheft B., Sternberg S.H., Doudna J.A. RNA-guided genetic silencing systems in bacteria and archaea. Nature, 2012, 482(7385): 331-338 ( ).
  • DOI: 10.1038/nature10886
  • Cox D.B.T., Platt R.J., Zhang F. Therapeutic genome editing: prospects and challenges. Nature Medicine, 2015, 21(2): 121-131 ( ).
  • DOI: 10.1038/nm.3793
  • Ramanan V., Shlomai A., Cox D.B.T., Schwartz R.E., Michailidis E., Bhatta A., Scott D.A., Zhang F., Rice C.M., Bhatia S.N. CRISPR/Cas9 cleavage of viral DNA efficiently suppresses hepatitis B virus. Scientific Reports, 2015, 5: 10833 ( ).
  • DOI: 10.1038/srep10833
  • Véron N., Qu Z., Kipen P.A.S., Hirst C.E., Marcelle C. CRISPR mediated somatic cell genome engineering in the chicken. Developmental Biology, 2015, 407(1): 68-74 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.ydbio.2015.08.007
  • Abu-Bonsrah K.D., Zhang D., Newgreen D.F. CRISPR/Cas9 targets chicken embryonic somatic cells in vitro and in vivo and generates phenotypic abnormalities. Scientific Reports, 2016, 6: 34524 ( ).
  • DOI: 10.1038/srep34524
  • Cheng Y., Lun M., Liu Y., Wang H., Yan Y., Sun J. CRISPR/Cas9-mediated chicken TBK1 gene knockout and its essential role in STING-mediated IFN-beta induction in chicken cells. Frontiers in Immunology, 2018, 9: 3010 ( ).
  • DOI: 10.3389/fimmu.2018.03010
  • Tang N., Zhang Y., Pedrera M., Chang P., Baigent S., Moffat K., Shen Z., Nair V., Yao Y. A simple and rapid approach to develop recombinant avian herpesvirus vectored vaccines using CRISPR/Cas9 system. Vaccine, 2018, 36(5): 716-722 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.vaccine.2017.12.025
  • Williams R.M., Senanayake U., Artibani M., Taylor G., Wells D., Ahmed A.A., Sauka-Spengler T. Genome and epigenome engineering CRISPR toolkit for in vivo modulation of cis-regulatory interactions and gene expression in the chicken embryo. Development, 2018, 145(4): dev160333 ( ).
  • DOI: 10.1242/dev.160333
  • Gandhi S., Piacentino M.L., Vieceli F.M., Bronner M.E. Optimization of CRISPR/Cas9 genome editing for loss-of-function in the early chick embryo. Developmental Biology, 2017, 432(1): 86-97 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.ydbio.2017.08.036
  • Morin V., Véron N., Marcelle C. CRISPR/Cas9 in the chicken embryo. In: Avian and reptilian developmental biology. Methods in molecular biology, vol. 1650 /G. Sheng (ed.). Humana Press, NY, 2017: 113-123 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-1-4939-7216-6_7
  • Hirst C.E., Serralbo O., Ayers K.L., Roeszler K.N., Smith C.A. Genetic manipulation of the avian urogenital system using in ovo electroporation. In: Avian and reptilian developmental biology. Methods in molecular biology, vol. 1650 /G. Sheng (ed.). Humana Press, NY, 2017: 177-190 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-1-4939-7216-6_11
  • Petitte J.N., Clark M.E., Liu G., Verrinder Gibbins A.M., Etches R.J. Production of somatic and germline chimeras in the chicken by transfer of early blastodermal cells. Development, 1990, 108(1): 185-189.
  • Han J.Y., Lee B.R. Isolation and characterization of chicken primordial germ cells and their application in transgenesis. In: Avian and reptilian developmental biology. Methods in molecular biology, vol. 1650 /G. Sheng (ed.). Humana Press, NY, 2017: 229-242 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-1-4939-7216-6_15
  • Волкова Н.А., Багиров В.А., Томгорова Е.К., Ветох А.Н., Волкова Л.А., Зиновьева Н.А. Выделение, культивирование и характеристика примордиальных зародышевых клеток перепелов. Сельскохозяйственная биология, 2017, 52(2): 261-267 ( ).
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.261rus
  • Choi H.J., Lee H.C., Kang K.S., Lee H.G., Ono T., Nagai H., Sheng G., Han J.Y. Production of interspecific germline chimeras via embryo replacement. Biology of Reproduction, 2015, 93(2): Article 36 ( ).
  • DOI: 10.1095/biolreprod.114.127365
  • Haraguchi S., Matsubara Y., Hosoe M. Chick embryos can form teratomas from microinjected mouse embryonic stem cells. Develop. Growth Differ., 2016, 58(2): 194-204 ( ).
  • DOI: 10.1111/dgd.12260
  • Brazolot C.L., Petitte J.N., Etches R.J., Verrinder Gibbins A.M. Efficient transfection of chicken cells by lipofection, and introduction of transfected blastodermal cells into the embryo. Molecular Reproduction and Development, 1991, 30(4): 304-312 ( ).
  • DOI: 10.1002/mrd.1080300404
  • Petitte J.N., Karagenc L., Ginsburg M. The origin of the avian germ line and transgenesis in birds. Poultry Science, 1997, 76(8): 1084-1092 ( ).
  • DOI: 10.1093/ps/76.8.1084
  • Etches R.J. Transgenic chickens. Proc. 10th European poultry conference "The poultry industry towards the 21st century". Jerusalem, Israel, 1998: 3-6.
  • Savva D., Page N., Vick L., Simkiss K. Detection of foreign DNA in transgenic chicken embryos using the polymerase chain reaction. Research in Veterinary Science, 1991, 50(2): 131-133 (
  • DOI: 10.1016/0034-5288(91)90094-5)
  • Petitte J.N., Liu G., Yang Z. Avian pluripotent stem cells. Mechanisms of Development, 2004, 121(9): 1159-1168 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.mod.2004.05.003
  • Song Y., Duraisamy S., Ali J., Kizhakkayil J., Jacob V.D., Mohammed M.A., Eltigani M.A., Amisetty S., Shukla M.K., Etches R.J., de Lavoir M.C. Characteristics of long-term cultures of avian primordial germ cells and gonocytes. Biology of Reproduction, 2014, 90(1): Article 15 ( ).
  • DOI: 10.1095/biolreprod.113.113381
  • Leighton P.A., van de Lavoir M.C., Diamond J.H., Xia C., Etches R.J. Genetic modification of primordial germ cells by gene trapping, gene targeting, and phiC31 integrase. Molecular Reproduction and Development, 2008, 75(7): 1163-1175 ( ).
  • DOI: 10.1002/mrd.20859
  • Motono M., Yamada Y., Hattori Y., Nakagawa R., Nishijima K., Iijima S. Production of transgenic chickens from purified primordial germ cells infected with a lentiviral vector. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2010, 109(4): 315-321 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.jbiosc.2009.10.007
  • Nakamura Y., Usui F., Ono T., Takeda K., Nirasawa K., Kagami H., Tagami T. Germline replacement by transfer of primordial germ cells into partially sterilized embryos in the chicken. Biology of Reproduction, 2010, 83(1): 130-137 ( ).
  • DOI: 10.1095/biolreprod.110.083923
  • Park K.J., Kang S.J., Kim T.M., Lee Y.M., Lee H.C., Song G., Han J.Y. Gamma-irradiation depletes endogenous germ cells and increases donor cell distribution in chimeric chickens. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Animal, 2010, 46(10): 828-833 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11626-010-9361-8
  • Nakamura Y., Usui F., Miyahara D., Mori T., Ono T., Kagami H., Takeda K., Nirasawa K., Tagami T. X-irradiation removes endogenous primordial germ cells (PGCs) and increases germline transmission of donor PGCs in chimeric chickens. Journal of Reproduction and Development, 2012, 58(4): 432-437 ( ).
  • DOI: 10.1262/jrd.2012-045
  • Song Y., D'Costa S., Pardue S.L., Petitte J.N. Production of germline chimeric chickens following the administration of a busulfan emulsion. Molecular Reproduction and Development, 2005, 70(4): 438-444 ( ).
  • DOI: 10.1002/mrd.20218
  • Nakamura Y., Yamamoto Y., Usui F., Atsumi Y., Ito Y., Ono T., Takeda K., Nirasawa K., Kagami H., Tagami T. Increased proportion of donor primordial germ cells in chimeric gonads by sterilisation of recipient embryos using busulfan sustained-release emulsion in chickens. Reproduction, Fertility, and Development, 2008, 20(8): 900-907 ( ).
  • DOI: 10.1071/rd08138
  • Mucksová J., Reinišová M., Kalina J., Lejčková B., Hejnar J., Trefil P. Conservation of chicken male germline by orthotopic transplantation of primordial germ cells from genetically distant donorsdagger. Biology of Reproduction, 2019, 101(1): 200-207 ( ).
  • DOI: 10.1093/biolre/ioz064
  • Harel-Markowitz E., Gurevich M., Shore L.S., Katz A., Stram Y., Shemesh M. Use of sperm plasmid DNA lipofection combined with REMI (restriction enzyme-mediated insertion) for production of transgenic chickens expressing eGFP (enhanced green fluorescent protein) or human follicle-stimulating hormone. Biology of Reproduction, 2009, 80(5): 1046-1052 ( ).
  • DOI: 10.1095/biolreprod.108.070375
  • Самойлов А.В., Кесян А.З., Сураева Н.М. Получение трансгенных кур с геном гранулоцитарного колониестимулирующего фактора человека методом опосредованного генного переноса с помощью сперматозоидов. Известия Российской академии наук. Серия биологическая, 2013, 5: 517-521 ( ).
  • DOI: 10.7868/S0002332913040140
  • Коршунова Л.Г., Карапетян Р.В., Зиадинова О.Ф. Электропорация спермиев петухов с целью получения трансгеноза у кур. Птицеводство, 2017, 4: 22-25.
  • Chaparian S., Abdulahnejad A., Rashidi F., Toghyani M., Gheisari A., Eghbalsaied S. Is passive transmission of non-viral vectors through artificial insemination of sperm-DNA mixtures sufficient for chicken transgenesis? Journal of Reproduction and Development, 2016, 62(3): 265-270 ( ).
  • DOI: 10.1262/jrd.2015-176
  • Wang L., Li J. "Artificial spermatid"-mediated genome editing. Biology of Reproduction, 2019, 101(3): 538-548 ( ).
  • DOI: 10.1093/biolre/ioz087
  • Cooper C.A., Challagulla A., Jenkins K.A., Wise T.G., O'Neil T.E., Morris K.R., Tizard M.L., Doran T.J. Generation of gene edited birds in one generation using sperm transfection assisted gene editing (STAGE). Transgenic Research, 2017, 26(3): 331-347 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11248-016-0003-0
  • Sang H.M., Perry M.M., Gribbin C., Mather C., Morrice D., Love J. Chick embryo culture and gene transfer. In: AFRC Institute of Animal Physiology and Genetics Research. Report for 1990-1991 /R.B. Heap, H.D. Griffin, G. Leng et al. (eds.). Agricultural and Food Research Council, Cambridge, 1992: 52-53.
  • Andacht T., Hu W., Ivarie R. Rapid and improved method for windowing eggs accessing the stage X chicken embryo. Molecular Reproduction and Development, 2004, 69(1): 31-34 ( ).
  • DOI: 10.1002/mrd.20155
  • Mather C. Transgenic chicken by DNA microinjection. Poultry International, 1994, 33(6): 16-18.
  • Ellendorff F., Gulyas N., Muhlbauer E., Klein S. Potential use of molecular sex recognition in layer birds. Proc. XX World's Poultry Congress. New Delhi, India, 1996: 3-4.
  • Эрнст Л.К., Фисинин В.И., Журавлев И.В., Карапетян Р.В., Матвеенко Н.П., Зиадинова О.Ф., Кудрявцев И.В., Кузин Б.А., Ениколопов Г.Н. Способ трансплантации куриной яйцеклетки. Пат. 1565025 SU. № 4396482. Заявл. 23.03.88. Опубл. 15.01.90. Бюл. № 18.
  • Карапетян Р.В. Микроинъекции ДНК в яйцеклетки кур. Доклады РАСХН, 1995, 4: 27-29.
  • Карапетян Р.В. Получение трансгенных кур микроинъекцией ДНК в яйцеклетки. Доклады РАСХН, 1996, 2: 19-20.
  • Фисинин В.И., Эрнст Л.К., Карапетян Р.В., Матвеенко Н.П., Зазыкина Т.В., Зиадинова О.Ф., Жаданов А.Б. Способ повышения яичной продуктивности птицы. Пат. 2061366 RU. № 93019970/15. Заявл. 19.04.93. Опубл. 10.06.96. Бюл. № 16.
  • Коршунова Л.Г., Карапетян Р.В., Фисинин В.И. Методы генетической модификации и селекция сельскохозяйственной птицы. Сельскохозяйственная биология, 2013, 6: 3-15.
  • Коршунова Л.Г., Фисинин В.И., Карапетян Р.В. Трансгенез у кур микроинъекцией ДНК в зиготу. Птица и птицепродукты, 2015, 2: 47-49.
  • Korshunova L.G., Karapetyan R.V., Ziadinova O.F. Modification of chicken genome by interferon gene. Russian Agricultural Sciences, 2014, 40(5): 379-381 ( ).
  • DOI: 10.3103/s1068367414050140
  • Коршунова Л.Г., Карапетян Р.В. Гормональный и иммунный статус трансгенных перепелов. Ветеринария, 2009, 5: 15-16.
  • Коршунова Л.Г. Биологические и продуктивные качества перепелов, трансгенных по гену бычьего соматотропина. Сельскохозяйственная биология, 2011, 2: 46-50.
Еще
Статья обзорная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp