УФ-индуцированный дрожжевой продуцент липазы с широкой субстратной специфичностью - селекция, свойства и получение ферментного препарата

Автор: Гаскарова Е.Ф., Иванова Л.А., Чурмасова Л.А., Машенцева Н.Г., Клабукова Д.Л.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Биопрепараты и продуценты

Статья в выпуске: 6 т.54, 2019 года.

Бесплатный доступ

Липазы, изменяющие количественные и/или качественные характеристики жиросодержащего сырья, широко применяются при решении разнообразных задач в современной пищевой и агропромышленной отраслях. Для обеспечения растущих потребностей в препаратах этих ферментов необходимы высокоэффективные продуценты, особенно проявляющие множественную активность в отношении жиров различного состава и происхождения. Цель работы заключалась в поиске нового высокоактивного дрожжевого продуцента липазы с широкой субстратной специфичностью и оптимизация условий его культивирования. Также в настоящем исследовании получен ферментный препарат, обеспечивающий высокую степень гидролиза различных масел, и охарактеризованы его технологические свойства. У 110 изолятов дрожжевых культур, выделенных из природных источников и полученных из коллекций ФГБОУ ВО МГУПП и ФГБУ ГосНИИгенетика, были изучены липолитические свойства. Качественное определение липазной активности осуществляли на дифференциальной питательной среде с трибутирином и красителем метиловым красным, количественное - в соответствии с модифицированным методом Y. Ota и K. Yamada при pH реакционной смеси 5,5. Из 23 штаммов, обладавших липолитической активностью (ЛА), 12 имели достаточно высокие показатели ЛА - от 2,5 до 7,5 Ед/см3. Из них выбрали изолят М10 с максимальной ЛА. Были изучены морфологические, культуральные и физиолого-биохимические особенности штаммов и выполнена молекулярно-генетическая идентификация высокоактивного изолята. С помощью филогенетического анализа штамм был идентифицирован как C andida parapsilosis (степень гомологии 99 %) и депонирован во Всероссийскую коллекцию промышленных микроорганизмов (ВКПМ ФГБУ ГосНИИгенетика) под номером Y-4055. После проведения УФ-мутагенеза получен высокоактивный мутант C. parapsilosis М10-10, и с применением методов математического планирования подобран состав питательной среды (ПС), оптимальный для культивирования продуцента и биосинтеза фермента (%): горчичное масло - 2,6; дрожжевой экстракт - 1,8; соевая мука - 1; глюкоза - 0,5; Tween 80 - 0,42; СаСО3 - 0,3; КН2РО4 - 0,03; MgSO4 · 7H2O - 0,02. Установлено, что при использовании посевного материала М10-10 в количестве 5 % от объема ПС липаза достигает наибольшей активности в культуральной жидкости к 48 ч ферментации. При глубинном культивировании штамма М10-10 при температуре 30-40 °С и рН питательной среды 5,5-6,5 получен ферментный препарат (ФП) липазы штамма М10-10 со степенью очистки Г20×, ЛА которого составила 30630 Ед/г. Определены оптимальные условия для действия ФП: температура 37 °С и рН 5,5. По активности полученный ФП не уступает коммерческим отечественными и зарубежными аналогам, в том числе препарату Novozym 435 («Sigma-Aldrich», США), имеющему ЛА 24020 Ед/г. Жирнокислотную специфичность препарата липазы определяли при ферментолизе различных растительных масел и анализе липидных продуктов методом газожидкостной хроматографии на хроматографе ShimadzuGC 2010 («Shimadzu», Япония). Модификация растительных масел ферментным препаратом липазы М10-10 Г20× в эмульсии масло/вода позволила достоверно снизить относительное содержание насыщенных жирных кислот (в том числе пальмитиновой и стеариновой) в 2,4; 4,6; 2,9 и 1,5 раза и увеличить относительное содержание полиненасыщенных жирных кислот (в том числе w-3 линоленовой и w-6 линолевой) в 1,5; 1,6; 1,1 и 12 раз соответственно для оливкового, горчичного, подсолнечного и кокосового масел.

Еще

Продуцент липазы, ферментный препарат, уф-мутагенез, условия ферментации, липолитическая активность, модификация растительных масел, насыщенные жирные кислоты, ненасыщенные жирные кисоты

Короткий адрес: https://sciup.org/142226288

IDR: 142226288   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2019.6.1290rus

Список литературы УФ-индуцированный дрожжевой продуцент липазы с широкой субстратной специфичностью - селекция, свойства и получение ферментного препарата

  • Ипатова Л.В., Кочеткова А.А., Нечаев А.П., Тутельян В.А. Жировые продукты для здорового питания. Современный взгляд. М., 2009.
  • Raveendran S., Parameswaran B., Ummalyma S.B., Abraham A., Mathew A.K., Madhavan A., Rebello S., Pandey A. Applications of microbial enzymes in food industry. Food Technology and Biotechnology, 2018, 56(1): 16-30 ( ). DOI: 10.17113/ftb.56.01.18.5491
  • Тутельян В.А., Нечаев А.П. Пищевые ингредиенты в создании современных продуктов питания. М., 2014.
  • Benjamin S., Pandey A. Isolation and characterization of three distinct forms of lipases from Candida rugosa produced in solid state fermentation. Brazilian Archives of Biology and Technology, 2001, 44(2): 213-221 ( ). DOI: 10.1590/S1516-89132001000200016
  • Olempska-Beer Z.S., Merker R.I., Ditto M.D., DiNovi M.J. Food-processing enzymes from recombinant microorganisms - a review. Regulatory Toxicology and Pharmacology, 2006, 45(2): 144-158 ( ). DOI: 10.1016/j.yrtph.2006.05.001
  • Hasan F., Shah A.A., Hameed A. Industrial applications of microbial lipases. Enzyme and Microbial Technology, 2006, 39: 235-251 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.enzmictec.2005.10.016
  • Lipase market - global forecast to 2020. Режим доступа: https://www.marketsandmarkets.com/Market-Reports/lipase-market-205981206.html. Дата обращения 15.06.2019.
  • Jooyandeh H., Kaur A., Minhas K.S. Lipases in dairy industry: a review. Journal of Food Science and Technology-Mysore, 2009, 46(3): 181-189.
  • Houde A., Kademi A., Leblank D. Lipases and their industrial applications. Appl. Biochem. Biotechnol., 2004, 118(1-3): 155-170 (doi: 10.1385/abab:118:1-3:155).
  • Collins Y.F., McSweeney P.L., Wilkinson M.G. Evidence of a relationship between autolysis of starter bacteria and lipolysis in cheddar cheese during ripening. Journal of Dairy Research, 2003, 70(1): 105-113 ( ).
  • DOI: 10.1017/s0022029902005915
  • Guerrand D. Lipases industrial applications: focus on food and agroindustries. Oilseeds and fats, Crops and Lipids, 2017, 24(4): D403 ( ).
  • DOI: 10.1051/ocl/2017031
  • Sharma R., Chisti Y., Banerjee U.C. Production, purification, characterization, and applications of lipases. Biotechnology Advances, 2001, 19(8): 627-662 (
  • DOI: 10.1016/s0734-9750(01)00086-6)
  • Грачева И.М., Кривова А.Ю. Технология ферментных препаратов. М., 2000.
  • Shukla P., Gupta K. Ecological screening for lipolytic molds and process optimization for lipase production Rhizopus oryzae KG-5. Journal of Applied Sciences in Environmental Sanitation, 2007, 2(2): 35-42.
  • Sambrook J., Russell D.W. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, NY, 2001.
  • Наумова Е.С., Серпова Е.В., Наумов Г.И. Молекулярная систематика дрожжей рода Lachancea. Биохимия, 2007, 72(12): 1659-1667.
  • Esteve-Zarzoso В., Belloch C., Uruburu F., Querol A. Identification of yeasts by RFLP analysis of the 5.8S rDNA gene and two ribosomal internal transcribed spacers. International Journal of Systematic Bacteriology, 1999, 49(1): 329-337 ( ).
  • DOI: 10.1099/00207713-49-1-329
  • Полыгалина Г.В., Чередниченко B.C., Римарева Л.В. Определение активности ферментов. М., 2003.
  • Оттавей Б.П. Обогащение пищевых продуктов и биологически активные добавки. М., 2010.
  • Kuhn D.M., Mikherjee P.K., Clark T.A., Pujol C., Chandra J., Hajjeh R.A., Warnock D.W., Soil D.R., Ghannoum M.A. Candida parapsilosis characterization in an outbreak setting. Emerging Infectious Diseases, 2004, 10(6): 1074-1081 ( ).
  • DOI: 10.3201/eid1006.030873
  • Иванова Л.А., Войно Л.И., Иванова И.С. Пищевая биотехнология. Кн. 2. Переработка растительного сырья /Под ред. И.М. Грачевой. М., 2008.
  • Treichel H., de Oliveira D., Mazutti M.A., di Luccio M., Oliveira J.V. A review on microbial lipases production. Food Bioprocess Technol., 2010, 3(2): 182-196 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11947-009-0202-2
  • Maldonado R.R., Macedo G.A., Rodrigues M.I. Lipase production using microorganism from different agro-industrial by-product. International Journal of Applied Science and Technology, 2014, 4: 108-115.
  • Darvishi F., Nahvi I., Zarkesh-Esfahani H., MomenbeikF. Effect of plant oils upon lipase and citric acid production in Yarrowia lipolytica yeast. Journal of Biomedicine and Biotechnology, 2009, 2009: article ID 562943 ( ).
  • DOI: 10.1155/2009/562943
  • Lakshmi B.S., Kangueane P., Abraham B., Pennathur G. Effect of vegetable oils in the secretion of lipase from Candida rugosa (DSM 2031). Letters in Applied Microbiology, 1999; 29: 66-70 ( ).
  • DOI: 10.1046/j.1365-2672.1999.00578.x
  • Fickers P., Nicaud J.M., Gaillardin C., Destain J., Thonart P. Carbon and nitrogen sources modulate lipase production in the yeast Yarrowia lipolytica. Journal of Applied Microbiology, 2004, 96(4): 742-749 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1365-2672.2004.02190.x
  • Vargas G.D.L.P., Treichel H., de Oliveira D., Beneti S.C., Freire D.M.G., Di Luccio M. Optimization of lipase production by Penicillium simplicissimum in soybean meal. J. Chem. Technol. Biotechnol., 2008, 83(1): 47-54 ( ).
  • DOI: 10.1002/jctb.1776
  • Dobrev G., Strinska H., Zhekova B., Dobreva V., Delchev N. Influence of the fermentation medium composition on lipase production by Rhizopus arrhizus. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 2014, 20(Suppl.1): 42-45.
  • Chen J., Shimura S., Kirimura K., Usami S. Enhancement of lipase production from hydrocarbons by mutation of Trichosporon fermentans. Appl. Microbiol. Biotechnol., 1993, 38(6): 714-718 ( ).
  • DOI: 10.1007/BF00167133
  • Sandana Mala J.G., Kamini N.R., Puvanakrishnan R. Strain improvement of Aspergillus niger for enhanced lipase production. The Journal of General and Applied Microbiology, 2001, 47(4): 181-186 ( ).
  • DOI: 10.2323/jgam.47.181
  • Pignède G., Wang H., Fudalej F., Gaillardin C., Seman M., Nicaud J.M. Characterization of an extracellular lipase encoded by LIP2 in Yarrowia lipolytica. Journal of Bacteriology, 2000, 182(10): 2802-2810 ( ).
  • DOI: 10.1128/jb.182.10.2802-2810.2000
  • Darvishi F. Expression of native and mutant extracellular lipases from Yarrowia lipolytica in Saccharomyces cerevisiae. Microbial Biotechnology, 2012, 5(5): 634-641 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1751-7915.2012.00354.x
  • Юзбашева Е.Ю., Юзбашев Т.В., Гордеева Т.Л., Лаптев И.А., Выборная Т.В., Синеокий С.П. Штамм дрожжей Yarrowia lipolytica - продуцент клеточно-связанной липазы. Патент РФ № RU 2475532 C1. Заявл. 09.02.2012. Опубл. 20.02.2013. Бюл. № 5.
  • Dayton C.L.G., Galhardo F. Enzymatic degumming utilizing a mixture of PLA and PLC phospholipases. Patents US № US20080182322A1. Priority date 2007-01-30. Pub. Date 2008-07-31.
  • Ciafardini G., Zullo B.A. Virgin olive oil yeasts: a review. Food Microbiology, 2018, 70: 245-253 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.fm.2017.10.010
  • Gupta R., Kumari A., Syal P., Singh Y. Molecular and functional diversity of yeast and fungal lipases: their role in biotechnology and cellular physiology. Progress in Lipid Research, 2015, 57: 40-54 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.plipres.2014.12.001
  • Faber K. Biotransformations in organic chemistry: a textbook. Springer Int. Publ., 2018 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-3-319-61590-5
  • Tanino T., Aoki T., Chung W.Y., Watanabe Y., Ogino C., Fukuda H., Kondo A. Improvement of a Candida antarctica lipase B-displaying yeast whole-cell biocatalyst and its application to the polyester synthesis reaction. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2009, 82(1): 59-66 ( ).
  • DOI: 10.1007/s00253-008-1764-z
  • Su G.D., Zhang X., Lin Y. Surface display of active lipase in Pichia pastoris using Sed1 as an anchor protein. Biotechnol. Lett., 2010, 32(8): 1131-1136 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10529-010-0270-4
  • Madzak C., Gaillardin C., Beckerich J.M. Heterologous protein expression and secretion in the non-conventional yeast Yarrowia lipolytica: a review. Journal of Biotechnology, 2004, 109(1-2): 63-81 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.jbiotec.2003.10.027
  • Liu W.S., Pan X.X., Jia B., Zhao H.Y., Xu L., Liu Y., Yan Y.J. Surface display of active lipases Lip7 and Lip8 from Yarrowial ipolytica on Saccharomyces cerevisiae. Appl. Microbiol. Biotechnol, 2010, 88: 885-891 ( ).
  • DOI: 10.1007/s00253-010-2782-1
  • Gopinath S.C.B., Hilda A., Lakshmi priya T., Annadurai G., Anbu P. Purification of lipase from Geotrichum candidum: conditions optimized for enzyme production using Box-Behnken design. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2003, 19(7): 681-689 (doi: 10.1023/A:1025119222925).
  • Ciafardini G., Zullo B.A., Iride A. Lipase production by yeasts from extra virgin olive oil. Food Microbiology, 2006, 23(1): 60-67 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.fm.2005.01.009
  • Böer E., Mock H.P., Bode R., Gellissen G., Kunze G. An extracellular lipase from the dimorphic yeast Arxula adeninivorans: molecular cloning of the ALIP1 gene and characterization of the purified recombinant enzyme. yeast, 2005, 22(7): 523-535 ( ).
  • DOI: 10.1002/yea.1230
  • Akoh C.C., Lee G.C., Shaw J.F. Protein engineering and applications of Candida rugosa lipase isoforms. Lipids, 2004, 39: 513-526 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11745-004-1258-7
Еще
Статья научная