Валидация панели SNP-маркеров для контроля происхождения локальных российских пород овец

Автор: Денискова Т.Е., Доцев А.В., Гладырь Е.А., Сермягин А.А., Багиров В.А., Хомподоева У.В., Ильин А.Н., Брем Г., Зиновьева Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Геномное сканирование, контроль происхождения

Статья в выпуске: 6 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Создание панелей для контроля происхождения овец на основе наиболее высокоинформативных SNP (single nucleotide polymorphism) с частотой минорных аллелей MAF ≥ 0,3 - актуальная проблема овцеводства. Международным обществом генетики животных (International Society for Animal Genetics, ISAG) предлагается использование панели происхождения из 88 аутосомных SNP, разработанной Международным консорциумом по геномике овец (International Sheep Genomics Consortium, ISGС). Однако эта панель базируется на результатах оценки ДНК-профилей только североамериканских, новозеландских и австралийских пород овец. Российские породы не были включены в исследование, и вопрос о возможности применения панели ISAG для подтверждения достоверности их происхождения остается открытым. Мы провели полногеномное исследование SNP у четырех аборигенных российских пород овец - романовской (ROM, n= 22), забайкальской тонкорунной (ZBL, n = 7), полугрубошерстной бурятской овцы Буубей (BUB, n= 15) и тувинской короткожирнохвостой (TUV, n = 16) с использованием Ovine SNP50k BeadChip. Обработку полученных данных проводили для общего числа маркеров (54241 SNP) и для 88 аутосомных SNP, рекомендованных ISAG. Для оценки информативности панели в контроле происхождения для каждой из пород и для всей выборки в целом определяли долю MAF≥ 0,3, среднюю частоту MAF, вероятность совпадения генотипов (PI) и вероятности исключения в качестве родителей (P1, P2, P3). Универсальность панели оценивали посредством сравнения степени генетической дифференциации пород на основании всего спектра SNP и панели ISAG, используя в качестве критериев значения индекса F st (AMOVA) при парном сравнении и результаты анализа главных компонент (PCA плот). Для расчетов использовали программное обеспечение Plink 1.09 и GenAlEx 6.5. По результатам контроля качества всей выборки было отобрано 47385 SNP со средним значением MAF = 0,292±0,131. Значение MAF для 88 SNP происхождения составило 0,380±0,091. Большая часть SNP (81,8 %) оказались информативными (MAF ≥ 0,3). Доля информативных SNP различалась между породами и составляла 56,8 % у ROM, 63,4 % - у ZBL, 71,6 % - у BUB и 72,7 % - y TUV. При этом 21 SNP (23,9 %) были высокоинформативны во всех четырех породах; 37 SNP (42,0 %), 17 SNP (19,3 %) и 10 SNP (11,4 %) оказались информативными соответственно в трех, двух или только в одной породе. Маркер DU196132_525.1 был мономорфен у овец TUV (MAF = 0). Три SNP с MAF st при использовании 88 SNP по сравнению с полногеномными SNP-профилями при сохранении характера выявленных связей подтвердили высокую универсальность панели ISAG. Низкая породная зависимость SNP панели подтверждалась формированием на PCA плоте слабо консолидированных перекрывающихся массивов, соответствующих отдельным породам. Вероятность совпадения генотипов по 88 SNP составила от 4,32×10 -33 у TUV до 7,48×10 -33 у BUB. Вероятность исключения в качестве родителя составила P1 ≥ 99,99 % для всех четырех пород. Значение P2 оказалось максимальным для TUV (P2 ≥ 99,99 %), для трех остальных пород - P2 ≥ 99,98 %, значение P3 для всех пород было A 99,99 %. Полученные нами данные, хотя и обнаруживают некоторую породную зависимость панели ISAG, в целом показывают ее пригодность для контроля достоверности происхождения четырех аборигенных российских пород овец.

Еще

Генотипирование snp, локальные породы овец, панель isag, контроль происхождения

Короткий адрес: https://sciup.org/142133638

IDR: 142133638   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.746rus

Список литературы Валидация панели SNP-маркеров для контроля происхождения локальных российских пород овец

  • Dodds K.G., Tate M.L., Sise J.A. Genetic evaluation using parentage information from genetic markers. J. Anim. Sci., 2005, 83: 2271-2279.
  • Зиновьева Н.А., Харзинова В.Р., Сизарева Е.И., Гладырь Е.А., Костюнина О.В., Луговой С.И., Тапиха В.А., Гамко Л.Н., Овсеенко Е.В., Шавырина К.М., Эрнст Л.К. Оценка вклада различных популяций в генетическое разнообразие свиней корня крупной белой породы. Сельскохозяйственная биология, 2012, 6: 35-42 ( , 10.15389/agrobiology.2012.6.35eng) DOI: 10.15389/agrobiology.2012.6.35rus
  • Tautz D., Renz M. Simple sequences are ubiquitous repetitive components of eukaryotic genomes. Nucl. Acids Res., 1984, 12: 4127-4138 ( ) DOI: 10.1093/nar/12.10.4127
  • Dakin E.E., Avise J.C. Microsatellite null alleles in parentage analysis. Heredity, 2004, 93: 504-509 ( ) DOI: 10.1038/sj.hdy.6800545
  • Зиновьева Н.А., Харзинова В.Р., Логвинова Т.И., Гладырь Е.А., Сизарева Е.И., Чинаров Ю.И. Микросателлитные профили как критерии определения чистопородности и оценки степени гетерогенности подборов родительских пар в свиноводстве. Сельскохозяйственная биология, 2011, 6: 47-53.
  • Новгородова И.П., Волкова В.В., Гладырь Е.А., Селионова М.И., Растоваров Е.И., Фисинин В.И., Зиновьева Н.А. Изучение информативности микросателлитов кур G. gallus для характеристики аллелофонда индеек M. gallopavo. Достижения науки и техники АПК, 2011, 10: 66-67.
  • Киселева Т.Ю., Подоба Б.Е., Заблудовский Е.Е., Терлецкий В.П., Воробьев Н.И., Кантанен Ю. Анализ 30 микросателлиных маркеров у шести локальных популяций крупного рогатого скота. Сельскохозяйственная биология, 2010, 6: 20-25.
  • Хлесткина Е.К. Молекулярные маркеры в генетических исследованиях и селекции. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2013, 17(4/2): 1044-1054.
  • Werner F.A., Durstewitz G., Habermann F.A., Thaller G., Kramer W., Kollers S., Buitkamp J., Georges M., Brem G., Mosner J., Fries R. Detection and characterization of SNPs useful for identity control and parentage testing in major European dairy breeds. Anim. Genet., 2004, 35: 44-49 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-2052.2003.01071.x
  • Kijas J.W., Townley D., Dalrymple B.P., Heaton M.P., Maddox J.F., McGrath A., Wilson P., Ingersoll R.G., McCulloch R., McWilliam S., Tang D., McEwan J., Cockett N., Oddy V.H., Nicholas F.W., Raadsma H. A genome wide survey of SNP variation reveals the genetic structure of sheep breeds. PLoS ONE, 2009, 4: e4668 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0004668
  • Hayes B.J. Technical note: Efficient parentage assignment and pedigree reconstruction with dense single nucleotide polymorphism data. J. Dairy Sci., 2011, 94: 2114-2117 ( ) DOI: 10.3168/jds.2010-3896
  • Clarke S.M., Henry H.M., Dodds K.G., Jowett T.W.D., Manley T.R., Anderson R.M., McEwan J.C. A high throughput single nucleotide polymorphism multiplex assay for parentage assignment in New Zealand sheep. PLoS ONE, 2014, 9(4): e93392 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0093392
  • Heaton M.P., Leymaster K.A., Kalbfleisch T.S., Kijas J.W., Clarke S.M., McEwan J., Maddox J.F., Basnayake V., Petrik D.T., Simpson B., Smith T.P.L., Chitko-McKown C.G., the International Sheep Genomics Consortium. SNPs for parentage testing and traceability in globally diverse breeds of sheep. PLoS ONE, 2014, 9(4): e94851 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0094851
  • Gill P. An assessment of the utility of single nucleotide polymorphisms (SNPs) for forensic purposes. Int. J. Legal Med., 2001, 114: 204-210 ( ) DOI: 10.1007/s004149900117
  • Li L., Li C.-T., Li R.-Y., Liu Y., Lin Y. SNP genotyping by multiplex amplification and microarrays assay for forensic application. Forensic Sci. Int., 2006, 162: 74-79 ( ) DOI: 10.1016/j.forsciint.2006.06.010
  • Rohrer G.A., Freking B.A., Nonneman D. Single nucleotide polymorphisms for pig identification and parentage exclusion. Anim. Genet., 2007, 38(3): 253-258 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2052.2007.01593.x
  • Heaton M.P., Harhay G.P., Bennett G.L., Stone R.T., Grosse W.M., Casas E., Keele J.W., Smith T.P.L., Chitko-McKown C.G., Laegreid W.W. Selection and use of SNP markers for animal identification and paternity analysis in U.S. beef cattle. Mammalian Genome, 2002, 13: 272-281 ( ) DOI: 10.1007/s00335-001-2146-3
  • Fisher P.J., Malthus B., Walker M.C., Corbett G., Spelman R.J. The number of single nucleotide polymorphisms and on-farm data required for whole-herd parentage testing in dairy cattle herds. J. Dairy Sci., 2009, 92: 369-374 ( ) DOI: 10.3168/jds.2008-1086
  • Dodds K.G. The number of markers required for parentage assignment. Proc. Association for the Advancement of Animal Breeding and Genetic. Melbourne, Victoria, Australia, 2003, 15: 39-42.
  • Jones A.G., Small C.M., Paczolt K.A., Ratterman N.L. A practical guide to methods of parentage analysis. Molecular Ecology Resources, 2010, 10: 6-30 ( ) DOI: 10.1111/j.1755-0998.2009.02778.x
  • Jones A.G., Ardren W.R. Methods of parentage analysis in natural populations. Mol. Ecol., 2003, 12: 2511-2523 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294x.2003.01928.x
  • Chakraborty R., Stivers D.N. Paternity exclusion by DNA markers: effects of paternal mutations. J. Forensic Sci., 1996, 41: 671-677 ( ) DOI: 10.1520/JFS13976J
  • Kijas J.W., Lenstra J.A., Hayes B., Boitard S., Porto Neto L.R., San Cristobal M., Servin B., McCulloch R., Whan V., Gietzen K., Paiva S., Barendse W., Ciani E., Raadsma H., McEwan J., Dalrymple B. Genome wide analysis of the world’s sheep breeds reveals high levels of historic mixture and strong recent selection. PLoS ONE, 2012, 10: e1001258 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0094851
  • Consortium ISG (2013) ISGC SNP Loci for Parentage Assignment (http://www.sheephap-map.org/news/parentage_page.php, http://sheephapmap.org/news/89_CorePanel.pdf).
  • Bell A., Henshall J., Gill S., Gore K., Kijas J. Success rates of commercial SNP based parentage assignment in sheep. Proc. 20th Biennial Conference of the Association for the Advancement of Animal Breeding and Genetics 2013/N.L. Villalobos (ed.). Napier, New Zealand, 2013: 278-282.
  • ISAG (2012) (http://www.isag.us/Docs/AppGenSheepGoat2012.pdf).
  • Kijas J.W., McEwan J., Clarke S., Henry H., Maddox J., McCulloch R., Driver F., Ilic K., Heaton M. Development of a SNP Panel for Parentage Assignment in Sheep. International Sheep Genomics Consortium, 2012 (http://sheep-hapmap.org/news/PAG_2012_ParentagePoster.pdf).
  • Weir B.S., Cockerham C.C. Estimating F-statistics for the analysis of population structure. Evolution, 1984, 38: 1358-1370.
  • Purcell S., Neale B., Todd-Brown K., Thomas L., Ferreira M.A.R., Bender D., Maller J., Sklar P., de Bakker P.I.W., Daly M.J., Sham P.C. PLINK: a tool set for whole-genome association and population-based linkage analyses. Am. J. Hum. Genet., 2007, 81: 559-575 ( ) DOI: 10.1086/519795
  • R Development Core Team. R: A language and environment for statistical computing. 2009. R Foundation for statistical computing. Vienna, Austria, 2005 (ISBN 3-900051-07-0) (http://www.Rproject.org).
  • Waits L.P., Luikart G., Taberlet P. Estimating the probability of identity among genotypes in natural populations: cautions and guidelines. Mol. Ecol., 2001, 10: 249-256 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294X.2001.01185.x
  • Jamieson A. The effectiveness of using co-dominant polymorphic allelic series for (1) checking pedigrees and (2) distinguishing full-sib pair members (in Festschrift in Honour of Dr Clyde J. Stormont). Anim. Genet., 1994, 25(Suppl. 1): 37-44.
  • Jamieson A., Taylor S.C.S. Comparisons of three probability formulae for parentage exclusion. Anim. Genet., 1997, 28: 397-400 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2052.1997.00186.x
  • Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research -an update. Bioinformatics, 2012, 28: 2537-2539 ( ) DOI: 10.1093/bioinformatics/bts460
  • Baruch E., Weller J.I. Estimation of the number of SNP genetic markers required for parentage verification. Anim. Genet., 2008, 39: 474-479 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2052.2008.01754.x
Еще
Статья научная