Влияние диоксида кремния «Ковелос-Сорб» на параметры роста Rhododendron roseum (Loise.) Rehder в культуре in vitro
Автор: Немцова Е. В., Харин А. В., Разлуго И. А.
Журнал: Вестник Нижневартовского государственного университета @vestnik-nvsu
Рубрика: Экология растений
Статья в выпуске: 1, 2020 года.
Бесплатный доступ
В настоящей работе описано стимулирующее действие синтетического аморфного диоксида кремния на параметры роста мериклонов Rhododendron roseum (Loisel.) Rehder, размножаемого в культуре in vitro . Целью работы являлось определение оптимального состава питательных сред на основе аморфного кремнезема «Ковелос-Сорб», используемых для клонального микроразмножения рододендронов. Установлено, что оптимальным для стимуляции роста побегов мериклонов Rhododendron roseum (Loisel.) Rehder являлось добавление в питательную среду Андерсона 100 мг/л аморфного диоксида кремния. Для стимуляции размножения и получения большого количества посадочного материала оптимальным являлось использование среды Андерсона, содержащей 50 мг/л аморфного кремнезема. Для укоренения растений-регенерантов Rhododendron roseum (Loisel.) Rehder в культуре in vitro оптимальным являлось использование среды Андерсона, содержащей синтетический аморфный диоксид кремния в количестве 50-150 мг/л в сочетании с ИУК в количестве 1,5 мг/л.
Аморфный диоксид кремния "ковелос-сорб", клональное микроразмножение
Короткий адрес: https://sciup.org/14117204
IDR: 14117204 | DOI: 10.36906/2311-4444/20-1/08
Список литературы Влияние диоксида кремния «Ковелос-Сорб» на параметры роста Rhododendron roseum (Loise.) Rehder в культуре in vitro
- Anderson W. C. Propagation of rhododendrons by tissue culture. 1. Development of a culture medium for multiplication of shoots // Comb Proc Int Plant Propag Soc. 1975.
- Avestan S., Naseri L. A., Hassanzade A., Sokri S. M., Barker A. V. Effects of nanosilicon dioxide application on in vitro proliferation of apple rootstock // Journal of Plant Nutrition. 2016. Vol. 39. № 6. P. 850-855. DOI: 10.1080/01904167.2015.1061550
- Balakhnina T., Borkowska A. Effects of silicon on plant resistance to environmental stresses // International Agrophysics. 2013. Vol. 27. № 2. P. 225-232. DOI: 10.2478/v10247-012-0089-4
- Epstein E. Silicon: its manifold roles in plants // Annals of applied Biology. 2009. Vol. 155. № 2. P. 155-160. DOI: 10.1111/j.1744-7348.2009.00343.x
- Jones K. W. Silicon in banana plants: uptake, distribution and interaction with the disease fusarium wilt. 2014. DOI: 10.14264/uql.2014.470
- Moriguchi T., Kozaki I., Matsuta N., Yamaki S. Plant regeneration from grape callus stored under a combination of low temperature and silicone treatment // Plant cell, tissue and organ culture. 1988. Vol. 15. № 1. P. 67-71. DOI: 10.1007/BF00039890
- Qing W., Huiying H., Jinwen Z. Effect of exogenous silicon and proline on potato plantlet in vitro under salt stress // China Vegetables. 2005. Vol. 9. P. 16-18.
- Radovet-Salinschi D., Cachita-Cosma D. Testing the regenerative capacity of Solanum tuberosum var. Gersa explants after 24 weeks storage in living collection // Analele Universitatii din Oradea, Fascicula: Ecotoxicologie, Zootehnie si Tehnologii de Industrie Alimentara. 2012. Vol. 11. P. 423-430.
- Sivanesan I., Park S. W. The role of silicon in plant tissue culture // Frontiers in plant science. 2014. Vol. 5. P. 571. DOI: 10.3389/fpls.2014.00571
