Влияние фотонов ближней ультрафиолетовой области на рост и развитие свеклы сахарной (Beta vulgaris L. ssp. vulgaris var. saccharifera Alef.) в условиях закрытой агробиотехносистемы

Оригинальные статьи / Originalarticles

Свет является одним из основных факторов жизни растений, источником энергии для фото- синтеза, оказывает регуляторную роль в морфогенезе растений [1]. С точки зрения сельскохозяйственного производителя свет также наиболее важный фактор, определяющий урожайность и качество продукции в теплицах и других сооружениях защищенного грунта [2]. В этой связи проводятся многочисленные исследования по изучению влияния искусственного освещения на рост и развитие растений [3]. Различные длины волн света оказывают различное воздействие на рост и развитие растений [4,5].

Ультрафиолетовый спектр условно включает УФ-А область (315-400 нм), УФ-Б (280-315 нм) и УФ-С (100280 нм), действие которых на живые организмы сильно различаются. В диапазоне 180-200 нм УФ-облучение вызывает распад белков и нуклеиновых кислот, их фотоокисление,образование перекисей и перекисных соединений. В диапазоне 250-280 нм оно приводит к реакциям гидратации и димеризации. УФ-излучение в диапазоне 330-340 нм не имеет ярко выраженного радикального действия на нуклеиновые кислоты, однако совместно с различного рода интеркаляторами способно вызвать однонитевые и двунитевые разрывы в молекулах ДНК. Механизмы устойчивости к стрессовому воздействия УФ-излучения имеют генетическую обусловленность. Было показано, что гены, активизированные УФ-Б и УФ-С излучением, отличаются от генов, активизированных УФ-А излучением [6,7].

Одним из основных эффектов повышенного уровня УФ-радиации является снижение общей биомассы и урожайности сельскохозяйственных культур, снижение интенсивности фотосинтеза, в частности, снижается транспорт электронов в циклах фотосинтеза, ингибируются фотохимические реакции на предварительных стадиях фотосинтеза и др. [8].

Ослабление фотосинтеза часто сопровождает изменения пигментации листовой пластинки, анатомии и толщины листа [6,9]. Происходят также существенные изменения на биохимическом уровне [10,11].

Ближняя область УФ-А составляет до 98,7% ультрафиолетового излучения, достигающего поверхности земли, однако было проведено недостаточно исследований физиологических и биохимических реакций растений на УФ-А излучение [12]. Нейгард и Шрейнер (2018) указали, что реакция растений на облучение УФА может отличаться от УФ-Б и необходим индивидуальный подход к оценке эффектов [13]. Ряд данных свидетельствует о положительной роли УФ-А для роста, развития растений и повышения качества выращенной продукции. УФ-А повышает концентрацию хлорофилла и каротиноидов, увеличивает размер листьев, длину стебля, свежую и сухую массу, а также способствует накоплению биомассы в салате [14]. В работе М.С. Гинс и Н.Т. Гамбурова установлена положительная роль УФ-А излучения в повышении антиоксидантных свойств амаранта [15]. Установлено также, что УФ-А уменьшает развитие возбудителей ряда заболеваний, в частности, плесени плодов цитрусовых ( Penicillium italicum и P. digitatum ), а также индуцирует синтез ряда защитных биологически активных соединений, таких, как скопа-рон, нобилетин, гесперидин, танжеретин [16,17].

В то же время отмечены и отрицательные эффекты УФ-А излучения. Так, УФ-А воздействие ограничивало расширение площади листьев и препятствовало накоплению биомассы сои [13]. Облучение УФ-А растений салата также снижало площадь листьев и биомассу, но увеличивало содержание хлорофилла, растворимого протеина, сахаров, витамина С, ряда флавоноидов и увеличивало антиоксидантную активность [18,19]. В исследовании [21] также установлено значительное влияние УФ-А диапазона на химический состав микрозелени капустных культур (по многим культурам возрастало содержание полифенолов, аскорбиновой кислоты, антоцианов, бета-каротина и др. в большинстве случаев), в то же время часто отмечалось снижение высоты растений, сырой и сухой биомассы, площади листьев, накопление токоферолов и др. [21]. Авторы считают обязательным введение небольшого количества УФ-А в практику искусственного освещения растений для регуляции морфогенеза и минерального питания растений.

В ряде исследований изучено влияние УФ излучение на прорастание семян растений и отмечены как положительные, так и отрицательные эффекты УФ [22,23].

Таким образом, исследования по изучению УФ-А области спектра продолжают активно проводиться, так как многие вопросы остаются недостаточно изученными. В частности, практически нет исследований по корнеплодным культурам. Поэтому целью данного исследования явилось изучить реакцию роста растений Beta vulgaris L. ssp . vulgaris var. saccharifera Alef . на изменение спектрального состава света, а именно, увеличение доли ультрафиолета А с длиной волны 380 нм.

Материалы и методы исследований

Объект и условия выращивания растений

В качестве объекта исследований использовали растения сахарной свеклы ( Beta vulgaris L. ssp. vulgaris var. saccharifera Alef.) гибрида Смена. Эксперименты проводили в закрытой камере устройства «синерго-трон» модели ИСР 2.01 конструкции АНО «Институт стратегий развития» (г. Москва) [24,25]. Использовали облучение растений свеклы сахарной светом разного состава: полихромное (контроль) и полихромное с увеличенной долей в ближнем ультрафиолетовом диапазоне. Растения выращивали при 18-часовом фотопериоде, при температуре воздуха 25^оС днем и 22^оС ночью, относительная влажность воздуха составляла 70-80%. Спектральный состав при облучении светодиодными светильниками определяли на спектрометре PG 100 N компании UPRtek, Тайвань. Растения выращивали гидропонным методом на минераловатном субстрате. В лотках размером 1000*540 мм помещалось по 28 растений. В онтогенезе, по срокам определения, отбирали по 4 растения из каждого варианта.

Закрытая камера с искусственным микроклиматом

Синерготрон представляет собой устройство для выращивания растений на основе программно-управляемой внутренней среды, облачной обработки информации и разработанного языка описания с обратной связью по параметрам влажности, состава культивационных сред, температуры, освещения, акустических воздействий, газового состава, движения воздуха и других. Функция облучения реализована светодиодными светильниками, разработанными ЗАО «Золотой шар» (Москва, Россия) с использованием светодиодов компании Cree (США) с максимумом излучения в области от 365 до 1980 нм, т.е. от ультрафиолетового до инфракрасного излучения. Потребляемая единичная мощность от 300 до 1300 Вт. Мощность облучения в области ФАР на расстоянии 100 мм от светильников для 300-ваттного облучателя достигает 1900 мкмоль/м2·с, для 1300-ваттного – 3600 Мкмоль/м2·с. Светильники имеют программное управление 9-ю спектральными линейками, как по силе излучения определенного светового спектра, так и по их комбинированию в определённую световую гамму. В устройстве реализована возможность проведения испытаний индивидуально по 8 лоткам в рабочей секции с различной интенсивностью облучения, спектром, пульсацией.

В настоящем эксперименте, в соответствии с целью и задачами исследований, светильники запрограммированы на светодиодное облучение растений свеклы светом разного состава: полихромное (контроль) и полихромное с увеличенной долей в ближнем ультрафиолетовом диапазоне.

В экспериментах использовали комбинированный субстрат: минераловатные маты толщиной 70 мм, однако в точках посева семян вырезали отверстия диаметром 70 мм и глубиной 60 мм и заполняли подготовленным кокосовым субстратом. Посев проводили по 3 соплодия в гнездо, после появления всходов оставляли одно наиболее развитое растение. Схема посева 135мм*150мм. Полив проводили гидропонным питательным раствором следующего состава (в мг/л): N-NО 3 – 140; N-NН 4 – 5; P – 41; K – 275; Ca – 100; Mg – 24; S – 30; Fe – 0,94; Mn – 0,14; B – 0,16; Cu – 0,03; Zn – 0,13; Mo – 0,03; рН 5,5-6,0; ЕС 1,5-2.

Анализы сахаристости и накопления сухого вещества

Определение сахаристости корнеплодов проводилось во ВНИИ сахарной свеклы и сахара им. А.Л. Мазлумова способом холодного водного диспергирования в соответствии с «Инструкцией по химико-техническому контролю и учету сахарного производства»

(Киев, ВНИИСП, 1989) и ГОСТ Р 53036-2008 «Свекла сахарная. Методы испытаний». Определение проводили у растений в возрасте 82 дней от посева семян, т.е. при завершении эксперимента. Одновременно определяли содержание сухого вещества в корнеплодах по стандартной методике.

Определение динамики роста растений

В период проведения эксперимента в динамике (на 41,50,56,63,70,77 и 82 день после посева семян) проводили измерение площади листьев, высоты и биомассы растений, определяли долю массы надземной части (листьев) и подземной (корнеплоды).

Измерение параметров переменной флуоресценции.

С помощью метода переменной флуоресценции, с использованием прибора мини-ПАМ-Junior (PAM-Jnior, Heinz Walz, Germany), определяли активность фотосистемы 2 (ФС2). Листья растений экспонировали в темноте в течение 15 мин., затем освещали их вспышками света [9].

Определяли: F v /F m – показатель функционального состояния ФС2, где F v – фотоиндуцированные изменения флуоресценции; F m – максимальная флуоресценция, Y(II) - эффективный квантовый выход ФС 2 (при интенсивности измерения флуоресценции); NPQ -нефотохимическое тушение флуоресценции (NPQ), оценивает часть энергии, которая используется растением для нефотохимических реакций; ЕТR - относительная скорость транспорта электронов, косвенный показатель скорости фотосинтеза.

Статистическая обработка результатов опытов

Эксперименты выполняли в 4-кратной аналитической и 3-кратной биологической повторности. Общая закономерность не изменялась по вариантам опыта, поэтому результаты приведены по данным одной биологической повторности. Статистическую обработку результатов проводили с помощью пакета программ Exсel. На рисунках приведены средние арифметические значения ( M ) со стандартной ошибкой (±SEM). Достоверность различий определяли по t -критерию Стьюдента при P = 0,95.

Результаты исследований

На рисунке 1 приведены спектральные характеристики светодиодных облучателей при выращивании растений в камерах синерготрона.

Рис.1. Спектральные характеристики светодиодных облучателей при выращивании растений в камерах синерготрона

Fig.1. Spectralcharacteristics ofLED irradiators when growing plants in synergotron chambers

Таблица 1. Анализ световых режимов выращивания сахарной свеклы (данные спектров) в камере синерготрона ИСР 2.01 Table 1. Analysis of light modes of sugar beet cultivation (spectra data) in the IPS 2.01Synergotron Camera

Вариант	Интенсивность освещения по видам спектра, мкМоль/м2·с и соотношение спектров
	PPFD*	PFD*	UV	Red	Far red	UV/PPFD	FR/ Red
Контроль	454,4	503,1	3,4	212,3	45,9	0,0075	0,216
Опыт (УФ)	536,6	600,2	14,5	236,5	47,9	0,027	0,202

Вариант	Blue	Green	Red	B/R	B /G +R	G/R	G/B+R
Контроль	147	96,8	212,3	0,62	0,48	0,46	0,28
Опыт (УФ)	194,3	107,7	236,5	0,82	0,56	0,22	0,25

* UV ультрафиолет, Blue –синий, Green – зеленый, Red – красный, Far red – дальний красный, PPFD – фотосинтетически активная радиация, PFD радиация, включает ультрафиолет + дальний красный + фотосинтетически активная радиация.

Рис.2.Динамика развития листового аппарата сахарной свеклы в зависимости от доли ультрафиолетового света в спектре освещения Fig.2.Dynamics ofthe developmentofsugar beetleafapparatus depending on the share ofUV lightrange in the spectrum oflight

вано многократное повышение отношения UV/PPFD (0,027) по сравнению с контролем (0,0075). При этом интенсивности облучения в других областях спектра (синем, зеленом, красном) были близки по вариантам, что позволяет получать сопоставимые данные и выделить влияние именно УФ - А диапазона (Таблица 1).

Изменение соотношения UV/PPFD в спектре облучения растений приводило к изменению морфологических показателей растений с течением времени. Анализ динамики развития листового аппарата растений свеклы сахарной, выращиваемой в замкнутой агробиотехносистеме, показал, что площадь листьев при освещении светом с усиленной долей УФ-А выше, чем в контрольном варианте на протяжении всего периода выращивания (рис. 2). В конце эксперимента нарас

В опытном варианте (Рис. 1В) интенсивность света в ближней ультрафиолетовой области (УФ – A, 380 нм) составляла 14,5 мкмоль/м2·с, в контроле – 3,4 мкмоль/м2·с (Рис. 1А). Интенсивность облучения по всем спектральным линиям в опыте и контроле сопоставима и составляла в контроле 454,4, в опыте 536,6 мкмоль/м2с. В результате в опытном варианте реализо- тание листовой массы в опытном и контрольном вариантах замедлилось за счет оттока ассимилянтов в корнеплоды и частичного отмирания нижних листьев.

В то же время удельная масса листовой пластинки практически не отличалась по сравнению с контролем при росте доли УФ-А света в спектре облучения (табл. 2).

Таблица 2. Удельная масса листовой пластинки свеклы сахарной в зависимости от режимов освещения, г/см2 Table 2. The specific mass of the leaf blade depending on the lighting modes, g/cm2

Вариант	Сутки после посева семян
	50	56	63	70	77	82
Контроль – полихромное освещение	0,0500	0,0592	0,0607	0,0611	0,0669	0,0671
Опыт (УФ)	0,0500	0,0518	0,0540	0,0582	0,0591	0,0612

Наряду с изменениями площади листовой поверхности можно было ожидать, что растения в условиях различного спектрального состава облучения формируют фотосинтетический аппарат, различающийся по своей активности. Определение активности световой стадии фотосинтеза показало, что повышение доли ультрафиолета А в спектре облучения приводит к изменению параметров флуоресценции хлорофилла и фотосинтеза. Происходит повышение нефотосинтетического тушения флуоресценции NPQ. В то же время снижаются реальный квантовый выход фотосинтеза Y(II) и скорость электронного транспорта (ETR), изменение максимального квантового выхода Fv/Fm статистически недостоверно (Рис. 3).

При увеличении доли УФ-А света биомасса надземной части в начальный период проведения эксперимента (41-50 суток от посева семян) несколько превышала контрольный вариант (рис. 4). В дальнейшем разница между вариантами резко увеличивалась, и к концу эксперимента биомасса в опытном варианте в 2,2 раза превышала контроль. Очевидно, ближнее УФ-облучение стимулирует рост надземной части растений свеклы сахарной.

Отметим, что количество листьев в расчете на 1 растение в контроле и опытном варианте практически не отличалось. В тоже время воздействие УФ-А облучения приводило к увеличению и площади листьев, и их биомассы. Следовательно, рост листового аппарата мог происходить либо за счет увеличения размеров каждого отдельного листа, либо за счет увеличения удельной массы. Однако, согласно данным таблицы 2, удельная масса листовой пластинки в опытном и контрольном вариантах различалась незначительно. Кроме того, рост биомассы в относительных величинах выражен значительно сильнее, чем увеличе-

Рис.4.Динамика накопления надземной биомассы растений сахарной свеклы в зависимости от освещения Fig.4. Dynamics ofaccumulation ofabove-ground biomass ofsugar beetplants depending on the lighting

ние площади листьев в расчете на 1 растение. Рассматривалось предположение, что причина может заключаться в изменении соотношения частей листового аппарата с различающимися биометрическими показателями - листовой пластинки и черешка. Поэтому в эксперименте проводили измерение доли листовой пластинки и черешков в общей величине надземной массы. Установлена закономерность значительного роста доли черешков по сравнению с долей листовой пластинки в общей надземной биомассе (рис. 5). В конце эксперимента, на 82 сутки после посева семян, в контрольном варианте доля черешков в надземной биомассе составляла 37,8%, в опытном – 64,8%, т.е выше на 71%. Повышенная доля черешков проявлялась в течение всего периода эксперимента. Соответственно, уменьшалась доля листовой пластинки. Черешки в опытном варианте развиты значительно сильнее, чем в контроле (по размерам и биомассе). Таким образом, УФ-А облу-

Рис.5.Изменение доли черешков в надземной биомассе растений свеклы сахарной в зависимости от доли ближнего ультрафиолетового света в спектре освещения.

Fig.5.Proportion ofleafpetiole in the generalbiomass ofsugar beetleaves depending on the lighting

Рис.7. Доля корнеплодов (подземной части)в общей биомассе растения сахарной свеклы в зависимости от освещения

Fig.7.Proportion ofrootcrops (underground)in the generalbiomass plantof sugar beets depending on the lighting

чение способствовало росту надземной биомассы растений, но в большей части за счет роста черешков, и в меньшей -за счет увеличения площади листовых пластинок. Вероятно, вследствие этого при увеличении доли УФ-А рост площади листьев в относительных величинах был меньше, чем увеличение биомассы листьев в целом.

На рисунке 6 приведены данные по динамике роста корнеплодов свеклы сахарной. В начальный период выращивания увеличение доли УФА спектра незначительно сказывалось на биомассе корнеплодов по сравнению с контролем. Однако, начиная с 56-63 суток эксперимента, усиление интенсивности УФ-А радиации приводило к ослаблению, а затем к остановке роста корнеплодов (масса корнеплода на 82 сутки в среднем на 86,9% ниже по сравнению с контролем).

Влияние УФ-А на перераспределение потока ассимилянтов от корнеплодов к листьям показано на рис. 7. Доля корнеплодов в общей биомассе растений в контрольном варианте возрастала выше 60%, т.е. наблюдался отток пластических веществ в корнеплоды. При облучении растений спектром с увеличенной интенсивностью УФ-А доля корнеплодов составляла только порядка 30%, т.е. основная часть ассимилянтов накапливалась в надземной биомассе. Разница особенно заметна во вторую половину эксперимента, примерно с 63 суток после посева, когда наблюдался активный рост корнеплодов. Соответственно, в онтогенезе растений происходило изменение доли листьев (надземной части растения).

Таким образом, интенсивность УФ-А света приводит к существенному изменению биометрии растений свеклы сахарной и перераспределению потока ассимилянтов. По своей генетической природе современные сорта свеклы сахарной отличаются преимущественным накоплением подземной биомассы (корнеплодов), однако УФ-А приводит к изменению данной закономерности. Усиливается рост надземной части (в ущерб корнеплодам), характерно значительное усиление роста черешков по сравнению с листовой пластинкой. Очевидно, УФ-А облучение вызывает изменение экспрессии генов, определяющих основные параметры роста растений, т.е. имеет эпигенетическую природу.

Под влиянием УФ-А радиации также происходит изменение химического состава корнеплодов свеклы сахарной. В первую половину вегетаций не установлено значительных различий опытного и контрольного вариантов по содержанию сухих веществ в корнеплодах (рис. 8). Однако при последующем активном росте корнеплода (70-77 сутки после посева семян) в корнеплодах контрольного варианта наблюдалось возрастание концентрации сухих веществ, в опытном – нет. Разница между вариантами составила 2,1% в конце периода выращивания. Таким образом, в период активного роста корне- плодов усиление интенсивности УФ-А облучения снижает накопление сухих веществ в корнеплодах. Как уже показано выше, УФ-А радиация в целом отрицательно влияет на рост и накопление биомассы корнеплода.

По данным рисунка 9, при выращивании растений с увеличенной долей ультрафиолета А в корнеплодах на 82 сутки содержалось меньше на 1,8% по сравнению с контролеме, а содержание сухих веществ – меньше на 1,58% (рис. 9). Содержание сухих веществ при анализе по стандартной методике во ВНИИ сахарной свеклы и сахара им. А.Л. Мазлумова несколько отличалось от результатов анализа при сушке на влагомере МХ-50 (рис.8), однако закономерность снижения накопления сухих веществ под воздействием спектра с увеличенной долей УФ-А сохранялась. Доля сахара в сухом веществе также была ниже в опытном варианте (на 4,2%).

Общий вид растений, выращиваемых в камере синерготрона ИСР 2.01. при облучении светом с различной долей УФ-А в спектре приведен на рисунке 10.

Обсуждение

В научной литературе наибольшее число исследований проведено в области изучения повреждающих эффектов УФ-В излучения и защитных механизмов [20]. В то же время Нейгард и Шрейнер (2018) указали, что традиционно считавшиеся вредными для сельскохозяйственных культур, недавние данные показывают, что естественные уровни ультрафиолетового излучения (УФ; 280-400 нм) в солнечном свете на самом деле могут оказывать ряд полезных эффектов на урожайность и питательные качества многих фруктов, овощей и декоративных культур [13]. А.А. Тихомиров с соавторами считают, что если УФ в диапазоне 280-320 нм оказывает отрицательное воздействие на растения, то УФ 320-400 нм играет регуляторную роль. Для нормального роста и развития растений в солнечном спектре должно присутствовать несколько процентов УФ-А. При этом на регуляцию требуется в 100-1000 раз меньше энергии, чем на фотосинтез, именно поэтому низкие дозы УФ могут быть эффективными [26].

Большинство исследователей сообщают о снижении биомассы, высоты растений и площади листьев под воздействием УФ-А облучения [12,13,18]. В то же время имеются сообщения о повышении биомассы [19]. При этом изменяется соотношение надземных и подземных органов, соотношение побег/корень снижается [27]. Сообщение о неоднозначном эффекте УФ облучения приведено также в работе [28].

В нашем эксперименте объектом исследования были корнеплодные растения (сахарная свекла), у которых селекционным путем достигнуто преобладание к моменту уборки урожая подземной биомассы. Увеличение в эксперименте интенсивности УФ-А приводило к существенному изменению биометрических показа-

Рис.8.Динамика накопления сухих веществ в корнеплодах сахарной свеклы в зависимости от светового режима выращивания растений. Fig.8. Dynamics ofaccumulation ofdrysubstances in the leaves (overhead bio-mass)ofsugar beets depending on the lighting

1 - содержание сухого вещества, %, 2 - сахаристость, %

1 - содержание сухого вещества, %, 2 - сахаристость, %

Рис.9. Сахаристость и содержание сухого вещества в корнеплодах сахарной свеклы на 82 день после появления всходов в зависимости от освещения

82 days after the appearance ofshoots,depending on the lighting

Рис.10. Фото образцов свеклы сахарной на 82 сутки эксперимента в камере синерготрона ИСР 2.01. Слева - контрольный образец,справа -опытный образец.

Рис.11.Внешний вид синерготрона ИСР 2.01 (АНО "Институт стратегий развития",Москва)

Fig.11.Generalview ofSynergotron IPR 2.01 ("Institute of DevelopmentStrategies",Moscow)

телей растений и перераспределению ассимилянтов. Ближнее УФ-облучение стимулировало рост надземной части растений (надземная биомасса увеличивается в 2,2 раза по сравнению с контролем), и в то же время существенно снижало массу корнеплода (на 86,9%). Доля корнеплодов в общей биомассе растений снижалась с 60% в контроле до 30% в опыте, т.е. основная часть ассимилянтов накапливалась в надземной биомассе. Установлена закономерность существенного роста доли черешков по сравнению с долей листовой пластинки в общей надземной биомассе. В контрольном варианте доля черешков в надземной биомассе составляла 37,8%, в опытном – 64,8%, т.е выше на 27%. Таким образом, УФ-А облучение в эксперименте способствовало росту сырой надземной биомассы растений, но в большей степени за счет черешков, а не листовых пластинок. Поэтому прирост надземной биомассы в относительных единицах выражен значительно сильнее, чем прирост площади листовых пластинок (без черешков) в течение того же времени. В целом площадь листьев в опытном варианте превышала аналогичные показатели в контроле в течение всего периода выращивания.

Ряд исследователей отмечает изменение биометрии листьев. Так, в работе [29] установлено, что у всех изученных растений уменьшается толщина листовой пластинки. В наших исследованиях удельная масса листовой пластинки также уменьшалась при воздействии УФ-А облучения.

Ультрафиолетовое излучение, по данным исследователей, обычно приводит к снижению фотосинтеза и более высокому синтезу вторичных метаболитов растений [8,13], синтез хлорофилла и каротиноидов может возрастать [18,19 ,23]. В нашем исследовании показано изменение параметров флуоресценции хлорофилла при повышении доли УФ-А в спектре облучения. Так, происходило повышение, нефотосинтетического тушения флуоресценции NPQ и снижение реального квантового выхода фотосинтеза Y(II), а также скорости электронного транспорта (ETR), статистически достоверного изменения максимального квантового выхода Fv/Fm не было установлено.

В эксперименте УФ-А излучение приводило также к изменению химического состава корнеплодов, что в целом согласуется с указанными выше литературными данными. В частности, при увеличении УФ-А облучения по сравнению с контролем несколько уменьшалось накопление сухих веществ (на 1,58%) и снижалась сахаристость (на 1,8%).

Таким образом, ряд современных авторов считают необходимым введение небольшого количества УФ-А в практику искусственного освещения растений для регуляции морфогенеза и минерального питания растений [18,30,31]. По нашему мнению, использование УФ-А излучения перспективно как агротехнический прием для управления соотношением отдельных частей продукции, в частности, при выращивании листовых и черешковых форм овощных культур.

Заключение

Полученные в работе результаты позволяют оценить влияние УФ-А на отдельные показатели роста и развития в онтогенезе растений сахарной свеклы, активность фотосинтетического аппарата в период активного нарастания листовой поверхности. Используемый подход и полученные данные могут быть использованы при разработке систем освещения растений свеклы сахарной на разных этапах онтогенеза при выращивании в закрытых агробиотехносистемах для проведения селекционных работ в осенне-зимний-весенний периоды в контролируемых условиях.

Об авторах:

Aboutthe Authors:

Vyacheslav V. Latushkin – Cand. Sci. (Agriculture),

Leading Researcher,

,

Valery N. Zelenkov – Doc. Sci. (Agriculture),Prof.,

Senior Researcher, ,

Anatoly A. Kosobryukhov – Doc. Sci. (Biological),

Leading Researcher, ,

Vladimir B. Novikov – Head of Engineering Department, , Lyudmila N. Putilina – Cand. Sci. (Agriculture), Leading Researcher,

Maria I. Ivanova – Doc. Sci. (Agriculture), Prof.,

Senior Researcher, ,

Petr A. Vernik – Director, ,

Sergey V. Gavrilov – Head of the Telemetry Department, 9302,