Влияние хлорида кадмия на жирнокислотный состав высших водных растений реки Ангара
Автор: Кириченко К.А., Побежимова Т.П., Соколова Н.А., Дударева Л.В., Войников В.К.
Журнал: Журнал стресс-физиологии и биохимии @jspb
Статья в выпуске: 1 т.7, 2011 года.
Бесплатный доступ
Проведён сравнительный анализ содержания жирных кислот в тканях Myriophyllum spicatum L. и Elodea canadensis Michx. в условиях воздействия 0,05 М раствора хлорида кадмия в течение 24 часов. Показаны изменения в составе жирных кислот в ответ на воздействие токсиканта. Выявлены отличия в динамике изменения содержания жирных кислот под воздействием хлорида кадмия у исследованных видов.
Высшие водные растения, байкальский регион, хлорид кадмия, токсическое воздействие, жирные кислоты
Короткий адрес: https://sciup.org/14323514
IDR: 14323514
Текст научной статьи Влияние хлорида кадмия на жирнокислотный состав высших водных растений реки Ангара
Проведён сравнительный анализ содержания жирных кислот в тканях Myriophyllum spicatum L. и Elodea canadensis Michx. в условиях воздействия 0,05 М раствора хлорида кадмия в течение 24 часов. Показаны изменения в составе жирных кислот в ответ на воздействие токсиканта. Выявлены отличия в динамике изменения содержания жирных кислот под воздействием хлорида кадмия у исследованных видов.
Кадмий относится к группе тяжёлых металлов, обладает значительной токсичностью, подвижностью, проницаемостью и способностью к накоплению в тканях живых организмов. Поступает в водоёмы со стоками предприятий горнодобывающей, обогатительной и электролизной промышленности, а также с сельскохозяйственных полей при использовании удобрений. Особенно значительное влияние кадмий оказывает на организмы, обитающие в водоёмах с низкой минерализацией или пониженными значениями рН (Квеситадзе, 2005; Кузнецова и др., 2008; Моисеенко, 2009).
Неудовлетворительное качество воды является причиной почти 80% всех заболеваний в мире. Состав природных вод формируется под влиянием абиотических факторов и биоты водоёмов. В последнее время всё большее влияние на состав воды многих водоёмов оказывают антропогенные факторы (Раткович, 2003; Фаинс и др., 2007; Бреховских и др., 2008).
Высшие водные растения являются первопродуцентами в водных экосистемах, принимают участие в обмене биогенных элементов, самоочищении воды, способны накапливать и трансформировать поллютанты. Они используются при биоиндикации и биотестировании состояния водоёмов. Однако недостаточность сведений по экологии и физиологии большинства видов макрофитов ограничивает возможности для их использования в качестве индикаторных видов (Садчиков, Кудряшов, 2005; Бреховских и др., 2008; Кокин, 1982; Егоркина, 2000; Мелихова и др., 2008).
В водоёмах байкальского региона сосредоточены значительные запасы пресных вод, только в озере Байкал содержится до 20% её мировых запасов. Сток воды из озера осуществляется только через реку Ангара. Флора и фауна озера Байкал, его водосборного бассейна и реки Ангара содержит в себе значительное разнообразие эндемичных таксонов, а также ряд широко распространённых видов. Гидрохимические и гидрофизические условия характеризуются высоким содержанием кислорода, низкой минерализацией и температурой (Тимошкин и др., 2001; Ижболдина, 2007; Тахтеев и др., 2009). При разработке методов биологической оценки состояния водоёмов байкальского региона, стоит учитывать специфику их биотических и абиотических особенностей.
Под воздействием факторов окружающей среды происходят изменения в липидном и жирнокислотном составе мембран растений. Метаболизм липидов тесно связан с дыханием, фотосинтезом, стрессовой реакцией и другими физиологическими процессами. Сравнительное изучение липидного и жирнокислотного состава гидробионтов позволяют выявить нарушения ещё до проявления морфологических и популяционных изменений (Чиркова, 1997; Розенцвет и др., 1999; Верещагин, 2005; Ипатова, 2005).
Целью исследования было изучить и сравнить относительный состав жирных кислот общих липидов наиболее массовых видов высших водных растений реки Ангара при воздействии хлорида кадмия.
Материалы и Методы:
Макрофиты: Elodea canadensis Michx. и M yriophyllum spicatum L. собирались в верхнем течении реки Ангара на левом берегу стандартными методами гидроботаники в июле – сентябре 2009 г., средняя температура воды при вылове составляла 10–12ºС. После вылова растения промывались проточной водой для избавления от эпифитов, разделялись по видам и содержались 14–30 дней в аквариумах при постоянной аэрации и замене ½ объёма воды каждые 2–4 дня. Воду для содержания растений брали из реки Ангара. Температура содержания в лабораторных условиях составляла 19–20ºС, фотопериод 16 ч. Источником света служили флуоресцентные фито-лампы Sylvania F18W/GRO (Германия) с максимумами выделения в красной и синей областях спектра (отношение интенсивности излучения красного света к интенсивности излучения синего 1,42). Интенсивность освещения 1000 лк.
Оба вида относятся к цветковым – Magnoliophyta. Elodea canadensis многолетнее, погружённое в воду, слабоукореняющееся, двудомное растение семейства Водокрасовых, класса Liliopsida. В Евразию занесены только женские растения. Myriophyllum spicatum – многолетнее корневищное растение с прямыми, ветвистыми, погружёнными в воду стеблями, относится к семейству Сланоягодниковые, классу Magnoliopsida (Азовский, Чепинога, 2007).
После культивирования растения экспериментальной группы помещали в 0,05 М раствор хлорида кадмия на 24 ч. Для анализа отбиралась усреднённая проба биомассы, состоящая из нескольких побегов целиком (стебель с листьями) весом 1 г. Растения промывались щеточками с мягким ворсом в проточной воде, для избавления от эпифитов. Навеску растительного материала фиксировали жидким азотом и растирали в фарфоровой ступке до получения гомогенной массы. Липиды экстрагировали смесью хлороформ:метанол (2:1) (Bligh, Dyer, 1959). Хлороформ из липидного экстракта удаляли под вакуумом с помощью роторного испарителя ИР-1ЛТ, Labtex (Россия). Для получения метиловых эфиров жирных кислот к экстракту суммарных липидов после удаления растворителя добавляли 5% метанольный раствор Н 2 SO 4 и нагревали на водяной бане при 60°С в течение 30 минут. Метиловые эфиры жирных кислот, после охлаждения, трижды экстрагировались гексаном (Christie, 1993). Дополнительную очистку метиловых эфиров жирных кислот проводили методом ТСХ на алюминиевых пластинках с силикагелем Sorbfil ПТСХ-АФ-В (Россия) в камере с бензолом. Анализ метиловых эфиров жирных кислот проводили методом газожидкостной хроматографии с использованием хромато-масс-спектрометра 5973N/6890N MSD/DS Agilent Technologies
(США). Детектор – масс-спектрометра – квадруполь, способ ионизации электронный удар (EI), энергия ионизации 70 эВ, для анализа использовали режим регистрации полного ионного тока. Для разделения использовали капиллярную колонку HP-INNOWAX, (30м × 250 мкм × 0,50 мкм). Неподвижная фаза – полиэтиленгликоль. Подвижная фаза: гелий, скорость потока газа 1 мл/мин. Температура испарителя 250ºС, источника ионов 230ºС, детектора 150ºС, температура линии, соединяющей хроматограф с масс-спектрометром, 280ºС. Диапазон сканирования 41-450 а.е.м. Объем вводимой пробы – 1 мкл, разделение потоков 5:1. Хроматографирование выполняли в изократическом режиме при 200ºС. Идентификацию метиловых эфиров жирных кислот проводили с помощью расчета эквивалентной длины алифатической цепи (ECL). Кроме этого использовали библиотеки масс-спектров NIST 05, Christie, а также сравнение времени удерживания со временами удерживания стандартных соединений. Относительное содержание жирных кислот определяли в весовых процентах от общего их содержания в исследуемом образце. Для оценки степени ненасыщенности жирных кислот рассчитывали индекс двойной связи (ИДС), как сумму произведений весовых процентов каждой ненасыщеной кислоты на число двойных связей в её молекуле, делённую на 100, согласно методу, предложенному Lyons с соавт. (Lyons et al., 1964).
Достоверность различий оценивали с помощью Т -критерия Манна-Уитни (Гланц, 1998).
Результаты :
Как видно из таблицы у исследованных видов на кислоты с длиной цепи 16 и 18 атомов углерода приходилось более 95%. Данная особенность не является уникальной и характерна для многих систематических групп живых организмов, в том числе и для высших растений, так как преимущественно 16-ти и 18-ти углеродные жирные кислоты образуют основу клеточных мембран (Гудвин, Мерсер, 1986; Gunstone, 1996; Napolitano, 1998). У исследованных видов в составе липидов содержится меньше насыщенных жирных кислот, чем ненасыщенных.
Экспозиция исследованных видов в 0,05 М растворе хлорида кадмия в течение 24-х ч приводила к изменению в составе жирных кислот их тканей. Соотношение суммарных долей ненасыщенных и насыщенных жирных кислот менялось под воздействием хлорида кадмия. Насыщенных кислот становилось больше, их суммарное содержание увеличилось с 20% до 21% у M.spicatum и с 25% до 29% у E. canadensis .
Под воздействием хлорида кадмия происходило увеличение содержания всех насыщенных жирных кислот у M.spicatum, кроме гептадекановой кислоты (С17:0), чьё содержание, напротив, снижалось и арахиновой кислоты (С20:0), её доля не изменялась. Однако у M. spicatum достоверное увеличение содержания, по сравнению с контролем, выявлено только для миристиновой (С14:0) и пентадекановой (С15:0) кислот. Ненасыщенных жирных кислот у данного вида становилось больше, исключение составили линолевая (С18:2ω6) и гондоиновая (C20:1ω9) кислоты, тем не менее, статистически достоверных изменений в содержании ненасыщенных жирных кислот не выявлено. Перераспределение относительного содержания насыщенных, моно- и полиненасыщенных жирных кислот у M. spicatum не сказывалось на значении индекса двойной связи.
Относительное содержание жирных кислот E. canadensis менялось иным образом, чем у M. spicatum . Увеличивалось содержание всех кислот, кроме α-линоленовой (С18:3ω3), но достоверно только пентадекановой (С15:0), стеариновой (С18:0) и арахиновой (С20:0). Содержание же α-линоленовой кислоты (С18:3ω3) достоверно снижалось по сравнению с контролем. Изменения массовых долей жирных кислот E. canadensis приводило к снижению индекса двойной связи, однако данное изменение не носило статистически достоверного характера.
Таким образом, можно констатировать, что под воздействием 0,05 М хлорида кадмия в течение 24 ч состав жирных кислот меняется у исследованных видов по-разному. Менее выражены эти изменения у M. spicatum , по сравнению с E. canadensis . В целом, состав жирных кислот M. spicatum оказался более стабильным к воздействию токсиканта.
Обсуждение :
Известно, что кадмий является токсичным, накапливаясь в тканях организмов, не подвергается биодеградации и практически не выводится из организма. Показано, что тяжёлые металлы, в том числе кадмий снижают рост растений, негативно сказываются на их развитии, нарушают процессы транспорта ассимилятов и минерального питания, влияют на водный и гормональный обмен, снижают активность фотосинтеза и дыхания (Кузнецова и др., 2008; Гармаш, Головко, 2009; Колесниченко, 2009). Вероятно, выявленные изменения состава жирных кислот у исследованных видов связаны с воздействием кадмия на процессы жизнедеятельности и метаболизм липидов в частности.
Таблица. Состав (% весовой) жирных кислот общих липидов высших водных растений в контроле и после воздействия 0,05М CdCl2
M.spicatum |
M.spicatum |
α |
E.canadensis |
E.canadensis |
α |
|
кон. |
24 ч CdCl 2 |
кон. |
24 ч CdCl 2 |
|||
С14:0 |
0,34±0,04 |
0,56±0,14 |
0,032 |
0,54±0,24 |
0,62±0,14 |
нет |
С15:0 |
0,08±0,02 |
0,18±0,05 |
0,016 |
0,14±0,04 |
0,32±0,11 |
0,032 |
С16:0 |
17,30±1,93 |
18,17±2,72 |
нет |
20,00±1,89 |
22,15±2,92 |
нет |
С17:0 |
0,27±0,11 |
0,18±0,03 |
нет |
0,56±0,09 |
0,78±0,21 |
нет |
С18:0 |
1,23±0,60 |
1,54±0,56 |
нет |
2,66±0,67 |
4,06±0,76 |
0,032 |
С20:0 |
0,14±0,07 |
0,14±0,07 |
нет |
0,33±0,11 |
0,48±0,11 |
0,063 |
С21:0 |
- |
- |
нет |
0,14±0,021 |
0,15±0,04 |
нет |
С22:0 |
0,21±0,081 |
0,22±0,052 |
нет |
0,37±0,16 |
0,50±0,21 |
нет |
∑ С16:1* |
0,71±0,14 |
0,83±0,19 |
нет |
1,65±0,73 |
1,75±0,64 |
нет |
∑ С18:1** |
2,75±0,81 |
2,99±1,41 |
нет |
1,90±0,69 |
2,40±0,85 |
нет |
С18:2ω6 |
28,02±4,36 |
23,94±1,20 |
нет |
18,04±3,09 |
18,99±0,94 |
нет |
С18:3ω3 |
47,84±7,61 |
50,65±6,02 |
нет |
53,51±4,08 |
47,35±4,96 |
0,063 |
C20:1ω9 |
0,22±0,091 |
0,15±0,07 |
нет |
0,06±0,012 |
0,07±0,013 |
нет |
ИДС |
2,03±0,14 |
2,04±0,15 |
нет |
2,00±0,10 |
1,84±0,14 |
нет |
Приведено среднее значение ± стандартное отклонение, n = 5 для контрольной выборки и n = 4 для экспериментальной; «1» – n = 4; «2» – n = 3;«3» – n = 2; * – сумма изомеров пальмитолеиновой кислоты; ** -сумма олеиновой и цис- вакценовой кислот; α – уровень значимости при сравнении экспериментальной выборки с контрольной; «нет» – статистически достоверных отличий не выявлено, «-» кислота не обнаружена.
Одним из механизмов токсического действия тяжелых металлов и, в частности, кадмия является его соединение с SH-группами белков и инициация перекисного и свободнорадикального окисления. Под воздействием тяжёлых металлов нарушаются функции мембран, показателем их трансформации служат изменения в составе жирных кислот. Жирные кислоты, будучи составным компонентом мембранных липидов, влияют на физико-химические свойства мембран, от которых, в свою очередь, зависят многие физиологические процессы. Выполняя свои барьерные функции, мембраны представляют собой первичную мишень и являются первым рубежом на пути загрязняющих веществ. В ряде работ предлагается считать изменения состава жирных кислот липидов неспецифической реакцией.
Неспецифичность проявляется в увеличении ненасыщенности в ответ на воздействие разных стрессоров. Однако показано, что под воздействием тяжелых металлов увеличивается количество насыщенных жирных кислот, что делает упаковку мембранных липидов более плотной и тем самым стабилизирует мембраны и уменьшает их проницаемость (Чиркова, 1997; Холодова и др., 2005; Кузнецова и др., 2008; Колесниченко, 2009; Нестеров и др., 2009; Ху и др., 2009). Изменения жирнокислотного состава у исследованных видов под воздействием хлорида кадмия были выражены в разной степени. Можно предположить, что действие токсиканта на метаболизм липидов каждого вида имеет свои особенности. Мембраны E. canadensis, вероятно, подвергаются более глубоким модификациям, так как у данного вида происходит достоверное снижение содержания линоленовой кислоты (С18:3ω3). Снижение доли этой кислоты, возможно, может быть обусловлено активацией перекисного окисления липидов, снижением активности дыхания или совместным влиянием обоих факторов. У данного вида, также достоверно увеличивается содержание пентадекановой (С15:0), стеариновой (С18:0) и арахиновой (С20:0) кислот. Жирнокислотный состав M. spicatum остаётся более стабильным, и, вероятно, метаболизм липидов в меньшей степени подвержен влиянию хлорида кадмия. Известно, что данный вид рекомендован для фиторемедиации от загрязнения тяжёлыми металлами, в том числе кадмием (Квеситадзе и др., 2005). Таким образом, нами установлено, что у исследованных растений изменение состава жирных кислот в ответ на токсическое воздействие 0,05 М хлорида кадмия является видоспецифическим. В связи с этим, выявленные биохимические отличия стоит учитывать при разработке методов оценки качества и очистки загрязнённой воды.
Список литературы Влияние хлорида кадмия на жирнокислотный состав высших водных растений реки Ангара
- Азовский, М.Г., Чепинога, В.В. (2007) Высшие водные растения озера Байкал. Иркутск: Изд-во Иркутского гос. ун-та. 157 с.
- Бреховских, В.Ф., Казьмирук, В.Д., Вишневская, Г.Н. (2008) Биота в процессах массопереноса в водных объектах. М.: Наука,. 315 с.
- Верещагин, А.Г. (2005) Хроника. Шестнадцатый международный симпозиум по липидам растений (1-4 июня 2004 г., Будапешт, Венгрия). Физиология растений. Т. 52. № 3. 467-474.
- Гармаш, Е.В., Головко, Т.К. (2009) Влияние кадмия на рост и дыхание ячменя при двух температурных режимах выращивания. Физиология растений. Т. 56. № 3. 382-387.
- Гланц, С. (1998) Медико-биологическая статистика. М.: Практика. 459 c.
- Гудвин, Т., Мерсер, Э. (1986) Введение в биохимию растений. В 2-х т. Т.1. М.: Мир. 393 c.
- Егоркина, Г.И., Зарубина, Е.Ю., Кириллов, В.В. (2000) Использование высших водных растений для оценки генотоксичности поверхностных вод. Сибирский экологический журнал. Вып. 6. 685-688.
- Ижболдина, Л.А. (2007) Атлас и определитель водорослей бентоса и перифитона озера Байкал (мейо-и макрофиты) с краткими очерками по их экологии. Новосибирск.: Изд-во «Наука-Центр». 248 с.
- Ипатова, В.И. (2005) Адаптация водных растений к стрессовым абиотическим факторам среды. М.: Изд-во «Графикон-принт». 224 с.
- Квеситадзе, Г.И., Хатисашвили, Г.А., Садунишвили, Т.А., Евстигнеева, З.Г. (2005) Метаболизм антропогенных токсикантов в высших растениях. М.: Наука. 199 с.
- Колесниченко, В.В. (2009) Изучение влияния разных концентраций кадмия на этиолированные проростки пшеницы (Triticum aestivum L.) и рапса (Brassica napus). Journal of Stress Physiology & Biochemistry. V. 5. № 1-2. 16-31.
- Кузнецова, Т.Ю., Ветчинникова, Л.В., Титов, А.Ф., Ильинова, М.К. (2008) Влияние кадмия на состав жирных кислот липидов в побегах карельской берёзы in vitro. Физиология растений. Т. 55. № 5. 731-737.
- Кокин, К.А. (1982) Экология высших водных растений. М.: Изд-во МГУ. 160 с.
- Мелихова, О.П., Сарапульцева, Е.И. и др. (2008) Биологический контроль окружающей среды: биоиндикация и биотестирование: учебное пособие для студентов высших учебных заведений/под ред. Мелиховой О.П., Сарапульцевой Е.И. М.: Издательский центр «Академия». 288 с.
- Моисеенко, Т.И. (2009) Водная экотоксикология: теоретические и прикладные аспекты. М.: Наука. 400 с.
- Нестеров, В.Н., Розенцвет, О.А., Мурзаева, С.В. (2009) Изменение состава липидов у пресноводного растения Hydrilla verticillata при накоплении и удалении из тканей ионов тяжелых металлов. Физиология растений. Т. 56. № 5. 97-106.
- Раткович, Д.Я. (2003) Актуальные проблемы водообеспечения. М.: Наука. 352 с.
- Розенцвет, О.А., Козлов, В.Г., Дембицкий, В.М. (1999) Сравнительное изучение липидов четырёх доминирующих видов растений и водорослей реки Шульган. Биохимия. Т. 64. Вып. 11. 1527-1535.
- Садчиков, А.П., Кудряшов, М.А. (2005) Гидроботаника: Прибрежно-водная растительность. М.: Издательский центр «Академия». 240 с.
- Тахтеев, В.В. и др. (2009) Биота водоёмов Байкалской рифтовой зоны. Отв. ред. Плешанов, А.С. Иркутск.: Изд-во Иркутского гос. ун-та. 231 с.
- Тимошкин, О.А. и др. (2001) Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна: в 2 томах, том I, кн. 1/отв. ред. Тимошкин О.А. Новосибирск.: Наука. 832 с.
- Фаинс, Д., Максимов, В.Н., Моричи, Дж., Назелли-Флорес, Л. (2007.) Мультимедийный словарь по экологии. М.: Наука. 183 с.
- Холодова, В.П., Волков, К.С., Кузнецов, Вл.В. (2005) Адаптация к высоким концентрациям солей меди и цинка растений хрустальной травки и возможность их использования в целях фиторемедиации. Физиология растений. Т. 52. № 6. 848-858.
- Ху, Ж.Ц., Пей, Д.Л., Лиан, Ф., Ши, Г.С. (2009) Влияние загрязнения воды кадмием на рост растений Sagittaria sagittifolia. Физиология растений. Т. 56. № 5. 759-767.
- Чиркова, Т.В. (1997) Клеточные мембраны и устойчивость растений к стрессовым воздействиям. Соросовский Образовательный Журнал. № 9. с. 12-17.
- Bligh, E.G., Dyer, W.J. (1959) A rapid method of total lipid extraction and purification. Canad. J. Biochem. Physiol. V. 37. p. 911-919.
- Christie, W.W. (1993) Preparation of ester derivatives of fatty acids for chromatographic analysis//Advances in lipid methodology -Two/Ed. Christie, W.W. Dundee: Oily Press, pp. 69-111.
- Gunstone, F.D. (1996) Fatty Acid and Lipid Chemistry. London.: Blackie Academic and Professional. 252 p.
- Lyons, J.M., Wheaton, T.A., Pratt, H.K. (1964) Relationship between the Physical Nature of Mitochondrial Membranes and Chilling Sensitivity in Plant. Plant Physiology. V. 39. P. 262-268.
- Napolitano G.E. Fatty acids as trophic and chemical markers in freshwater ecosystems//Lipids in freshwater ecosystems/Eds. Arts M.T., Wainman B.C. New York: Springer, 1998. pp. 21-25.