Влияние экстрактов растений на инсулинорезистентность при экспериментальном сахарном диабете

Автор: Дымбрылова О.Н., Якимова Т.В., Венгеровский А.И.

Журнал: Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины @cardiotomsk

Рубрика: Экспериментальные исследования

Статья в выпуске: 3 т.37, 2022 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования: оценить влияние экстрактов лекарственных растений на чувствительность к инсулину на животной модели сахарного диабета.Материал и методы. Эксперименты проведены на 110 аутбредных белых крысах-самцах. Сахарный диабет индуцировали введением стрептозотоцина животным, получавшим пищу с высоким содержанием жиров для формирования инсулинорезистентности. Животным вводили водные экстракты крапивы, одуванчика, лопуха, галеги лекарственной, метформин, росиглитазон. При проведении фармакотерапии крыс разделили на 2 группы: одна продолжала получать обогащенную жирами диету, другая - обычный пищевой рацион с содержанием жиров 8%. В крови измеряли уровень глюкозы, гликогемоглобина, триглицеридов, холестерина липопротеинов высокой плотности. Для оценки инсулинорезистентности использовали расчетный показатель - метаболический индекс.Результаты. У животных с моделью сахарного диабета, получавших обогащенную жирами пищу, экстракты крапивы, лопуха снижали концентрацию глюкозы и гликогемоглобина. Экстракт одуванчика не изменял уровень глюкозы в крови натощак, понижал концентрацию гликогемоглобина. У животных, получавших обычный пищевой рацион, экстракты крапивы, галеги, одуванчика уменьшали концентрацию глюкозы в крови, экстракты всех растений снижали уровень гликогемоглобина. При введении экстрактов растений концентрация триглицеридов нормализовалась независимо от режима питания. У животных, получавших экстракты галеги, одуванчика, концентрация холестерина липопротеинов высокой плотности при обоих вариантах диеты повышалась. После терапии экстрактами крапивы, галеги у животных, получавших пищу с содержанием жиров 8%, метаболический индекс не отличается от показателя интактных крыс. Экстракт одуванчика ослабляет инсулинорезистентность у животных, продолжавших получать диету, обогащенную жирами.Заключение. При сахарном диабете, вызванном введением крысам стрептозотоцина, экстракты крапивы, галеги лекарственной, лопуха, одуванчика в такой же степени, как метформин и росиглитазон, улучшают углеводный, липидный обмены. Экстракты крапивы, галеги ослабляют инсулинорезистентность у животных, получавших обычный пищевой рацион, экстракт одуванчика - у животных, получавших пищу, обогащенную жирами.

Еще

Инсулинорезистентность, модель экспериментального сахарного диабета, крапива, лопух, одуванчик, галега

Короткий адрес: https://sciup.org/149141428

IDR: 149141428   |   DOI: 10.29001/2073-8552-2022-37-3-128-135

Список литературы Влияние экстрактов растений на инсулинорезистентность при экспериментальном сахарном диабете

  • Спасов А.А., Петров В.И., Чепляева Н.И., Ленская К.В. Фундаментальные основы поиска лекарственных средств для терапии сахарного диабета 2-го типа. Вестник Российской академии медицинских наук. 2013;(2):43—49. DOI: 10.15690/vramn.v68i2.548.
  • Салухов В.В., Халимов Ю.Ш., Шустов С.Б., Кадин Д.В. Снижение кардиоваскулярного риска у пациентов с сахарным диабетом второго типа: обзор основных стратегий и клинических исследований. Сахарный диабет. 2018;21(3):193-205. DOI: 10.14341/DM9570.
  • Хабриев РУ. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Медицина; 2005:832.
  • Zhang M., Lv X., Li J., Xu Z., Chen L. The characterization of high-fat diet and multiple low-dose streptozotocin induced type 2 diabetes rat model. Exp. Diabetes Res. 2008;2008:704045. DOI: 10.1155/2008/704045.
  • Kawamori D., Kurpad A.J., Hu J., Liew C.W., Shih J.L., Ford E.L. et al. Insulin signaling in alpha cells modulates glucagon secretion in vivo. Cell Metab. 2009;9(4):350-361. DOI: 10.1016/j.cmet.2009.02.007.
  • Rao R.P., Singh A., Jain A.K., Srinivasan B.P. Dual therapy of rosigli-tazone/pioglitazone with glimepiride on diabetic nephropathy in experimentally induced type 2 diabetes rats. J. Biomed. Res. 2011;25(6):411-417. DOI: 10.1016/S1674-8301(11)60054-7.
  • El-Bassossy H.M., Abo-Warda S.M., Fahmy A. Rosiglitazone, a peroxisome proliferator-activated receptor у stimulant, abrogates diabetes-evoked hypertension by rectifying abnormalities in vascular reactivity. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2012; 39(8):643-649. DOI: 10.1111/j.1440-1681.2012.05724.x.
  • Венгеровский А.И., Якимова Т.В., Насанова О.Н. Гиполипидемиче-ское действие экстрактов лекарственных растений при экспериментальном сахарном диабете. Химико-фармацевтический журнал. 2019;53(3):40-44. DOI: 10.30906/0023-1134-2019-53-3-40-44.
  • Якимова Т.В., Насанова О.Н., Венгеровский А.И., Буркова В.Н. Влияние экстракта галеги лекарственной на метаболизм липидов при экспериментальном сахарном диабете. Сибирский медицинский журнал. 2011;26(4):98-102.
  • Ройтберг Г.Е., Дорош Ж.В., Шархун О.О., Ушакова Т.И., Трубино Е.А. Возможности применения нового метаболического индекса при оценке инсулинорезистентности в клинической практике. Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии. 2014;10(3):264-274.
  • Хафизьянова Р.Х., Бурыкин И.М., Алеева Г.Н. Математическая статистика в экспериментальной фармакологии. Казань: Медицина; 2006:373.
  • Горбунов Е.А., Бригадирова А.А., Качаева Е.В., Путиловский М.А., Тарасов С.А. Перспективные фармакологические мишени для лечения заболеваний, сопряженных с дефектом сигнального пути рецептора инсулина. Проблемы эндокринологии. 2015;61(6):36-43.
  • Behl T., Gupta A., Sehgal A., Albarrati A., Albratty M., Meraya A.M. et al. Exploring protein tyrosine phosphatases (PTP) and PTP-1B inhibitors in management of diabetes mellitus. Biomed. Pharmacother. 2022;153:113405. DOI: 10.1016/j.biopha.2022.113405.
  • Uddin Z., Song Y.H., Ulla M., Li Z., Kim J.Y., Park K.H. Isolation and characterization of protein tyrosine phosphatase 1B (PTP1B) inhibitory polyphenolic compounds from Dodonaea viscosa and their kinetic analysis. Front. Chem. 2018;6(40):1-10. DOI: 10.3389/ fchem.2018.00040.
  • Akhtar M.S., Ahmed M., Gulzar K., Adnan H. Hypoglycaemic activity of Dodonaeae viscosa leaves normal and alloxan-induced diabetic rabbits. Diabetologia Croatica. 2011;40(3):71-79.
  • Tamrakar A.K., Yadav P.P., Tiwari P., Maurya R., Srivastava A.K. Identification of pongamol and karanjin as lead compounds with antihy-perglycemic activity from Pongamia pinnata fruits. J. Ethnopharmacol. 2008;118(3):435-439. DOI: 10.1016/j.jep.2008.05.008.
  • Belete T.M. A Recent achievement in the discovery and development of novel targets for the treatment of type-2 diabetes mellitus. J. Exp. Pharmacol. 2020;12:1-15. DOI: 10.2147/JEP.S226113.
  • Hu T., Shi J.J., Fang J., Wang Q., Chen Y.B., Zhang S.J. Quercetin ameliorates diabetic encephalopathy through SIRT1/ER stress pathway in db/db mais. Aging (Albany NY). 2020;12(8):7015-7029. DOI: 10.18632/ aging.103059.
  • Curry A.M., White D.S., Donu D., Cen Y. Human sirtuin regulators: The "Success" stories. Front. Physiol. 2021;12:752117. DOI: 10.3389/ fphys.2021.752117.
  • Huynh F.K., Hershberger K.A., Hirschey M.D. Targeting sirtuins for the treatment of diabetes. Diabetes Manag. (Lond.). 2013;3(3):245-257. DOI: 10.2217/dmt.13.6.
Еще
Статья научная