Влияние карбоксиметилированных препаратов и ризоторфина на микробиологическую активность черноземов Приобской лесостепи и симбиотическую активность сои

Бесплатный доступ

Изучено влияние инокуляции семян сои пре-паратом «Ризоторфин», содержащим штамм симбиотических бактерий Risobium japonicum, и препаратами, содержащими карбоксимети-лированную синтетическую и органическую целлюлозу, на численность бактериальной и грибной микрофлоры черноземов выщелочен-ных и симбиотическую активность сои сорта Надежда. Исследования проводили в полевом мелкоделяночном опыте в условиях умеренно засушливой и колочной степи Алтайского края. Препараты использовали как отдельно, так и в сочетании с ризоторфином. Установ-лено достоверное увеличение микробиологи-ческой активности черноземов при обработке семян сои ризоторфином как отдельно, так и совместно с карбоксиметилированными пре-паратами. Численность бактерий, использу-ющих органические формы азота, увеличива-лась в 1,6-2,2 раза, количество микрофлоры, растущей на КАА и использующей минераль-ные формы азота, - в 1,1-2,3 раза, числен-ность грибов снижалась в 1,2-1,9 раза, нитро-геназная активность сои возрастала в 1,9 раза. Наибольшее увеличение отмечено при исполь-зовании карбоксиметилированного препарата из половы овса совместно с ризоторфином.

Еще

Соя, ризоторфин, карбок-симетилированные препараты, микробиологи-ческая активность, симбиотическая актив-ность, микроорганизмы, нитрогеназная ак-тивность

Короткий адрес: https://sciup.org/14084642

IDR: 14084642

Текст научной статьи Влияние карбоксиметилированных препаратов и ризоторфина на микробиологическую активность черноземов Приобской лесостепи и симбиотическую активность сои

Введение . Соя ( Glycine hispida ) является ценнейшей белково-масляничной культурой. Ее семена содержат в среднем 37–42 % белка и до 19–22 % жира. Она обладает уникальными свойствами, позволяющими производить из нее широкий спектр разнообразных продуктов. Кроме того, соя имеет большое агротехническое значение. Она обогащает почву азотом, что характеризует ее как хорошего предшественника, а также дает возможность успешно бороться с сорняками [1, 2].

Как бобовая культура соя вступает в симбиоз с клубеньковыми бактериями, однако в большинстве сибирских почв отсутствуют природные (аборигенные) бактерии, специфичные для сои. Поэтому для повышения ее урожайности применяют инокуляцию семян симбиотическими бактериями [1–3, 12]. Микроорганизмы фиксируют азот из атмосферы, продуцируют физиологически активные вещества, воздействуя на рост и развитие растения, вырабатывают антибиотики, подавляющие развитие патогенной микрофлоры, что в конечном итоге снижает заболеваемость растений. А также они способны регулировать состав и численность микробного комплекса, что, в конечном счете, отражается на продуктивности и качестве растениеводческой продукции [3–5].

Для улучшения прилипания препаратов симбиотических азотфиксаторов рекомендуют использовать различные вещества (молочная сыворотка, натрий-карбоксиметилцеллюлозу (Na-КМЦ)), которые оказывают эффект лучшего связывания препарата с семенами. На кафедре органической химии АлтГУ разработан и запатентован способ карбоксиметилирования лигно-углеводных материалов [6]. Получены препа- раты, которые проявляют клеящие свойства, за счет содержащейся Na-КМЦ, они могут найти применение в качестве прилипателей симбиотических азотфиксаторов, а также обладают рострегулирующими свойствами [6, 7].

Цель исследований : изучение влияния обработки семян ризоторфином и карбоксимети-лированными препаратомами на микробиологическую активность черноземов и симбиотическую активность сои в условиях умеренно засушливой и колочной степи Алтайского края.

Методика исследований . Исследования проводили на черноземе выщелоченном среднемощном малогумусном легкосуглинистом в условиях умеренно засушливой колочной степи Алтайского края на опытном поле учхоза «Пригородное» в полевом мелкоделяночном опыте в 2013–2014 гг. Посев сои сорта Надежда – среднеспелого типа проводили в 3-й декаде мая, норма высева – 600 тыс. всхожих семян на 1 га, ширина междурядий – 45 см. Повторность опыта – 3-кратная, расположение делянок – рендо-мизированное, площадь делянки – 4 м2. Для инокуляции использовали ризоторфин – препарат симбиотических азотфиксирующих бактерий, содержащий чистую культуру Rhizobium japonicum из лаборатории экологии микроорганизмов ВНИИСХиМ. В качестве прилипателей использовали натрий-карбокси-метилцеллюлозу (обойный клей, Na-КМЦ) и карбоксиметилиро-ванный препарат из растительного сырья половы овса («Эко-Стим», содержащий Na-КМО), предоставленный кафедрой органической химии АлтГУ. Препараты Na-КМЦ и Na-КМО использовали в виде растворов с концентрацией 0,4 г/л. Доза ризоторфина – 300 г на гектарную норму семян. Обработку семян препаратами проводили в день посева. Все агротехнические работы проводили вручную, уборку урожая – в фазе полной спелости семян. Математическую обработку производили по Б.А. Доспехову [8]. В период вегетации отбирали почвенные образцы для учета численности зимогенной микрофлоры. Численность микроорганизмов определяли методом посева на плотные питательные среды. Их учет проводили по количеству колонеоб-разующих единиц (КОЕ). На среде МПА учитывали бактерии, использующие органические формы азота, на среде КАА – актиномицеты и бактерии, использующие минеральный азот. Грибы определяли на подкисленной среде Чапека, нитрогеназную активность – ацетиленовым методом [9].

Результаты исследований . Многие авторы указывают на то, что погодные условия влияют на сроки и темпы прохождения фенологических фаз, а также на продолжительность вегетационного периода сои, ее урожайность и качество [10–12]. По метеорологическим показателям оба года исследований были с высоким увлажнением. В 2013 г. ГТК 1 (май-июнь) составил 2,2, а ГТК 2 (май-август) – 1,6; в 2014 г. ГТК 1 (гидротермический коэффициент) – 1,0, а ГТК 2 – 1,27. Распределение тепла и влаги было более выгодно для сои в 2013 г., поэтому он являлся более благоприятным для ее роста и развития.

Инокуляция семян сои ризоторфином и кар-боксиметилированными препаратами способствовала увеличению численности ризосферной микрофлоры. Численность микроорганизмов, использующих органические формы азота, зависела как от условий года, так и от используемых препаратов. В условиях 2013 г. она была выше в 1,9–2,2 раза, чем в 2014 г. (табл. 1). В оба года количество неспоровых бактерий преобладало над численностью споровых. Среди споровых бактерий доминировали Bacillus megaterium , Bacillus subtilis , Bacillus mesentericus . Неспоровые бактерии были представлены родами Flavobacterium , Pseudomonas и др. Использование ризоторфина и прилипателей достоверно повышало численность микробной флоры, но более значительное их увеличение было отмечено от совместного использования ризо-торфина с органическим прилипателем из половы овса. Так, в 2013 г. оно увеличивалось с 7,5 млн на контроле до 27,5 млн КОЕ, а в 2014 г. – с 3,3 млн до 14,2 млн КОЕ.

Микроорганизмы, растущие на КАА, используют минеральные формы азота и представлены в основном бактериями и актиномице-тами, которые требовательны к плодородию почвы и азотистой пище. В опыте их численность также изменялась в зависимости от условий года и использования ризоторфина и при-липателей. В оба года исследований преобладало количество бактерий над количеством ак-тиномицетов. Общая численность микроорганизмов, использующих минеральные формы азота, достоверно увеличивалась от изучаемых средств (табл. 2). В условиях 2013 г. она была выше и на контроле составляла 23,7 млн КОЕ/г абс. сухой почвы. Более активное развитие отмечалось от обработки семян ризоторфином совместно с Na-KMO, и инокуляция повышала их численность до 37,4 млн КОЕ. Это выше в 1,7–2,4 раза, чем в условиях 2014 г.

Использование ризоторфина и прилипателей оказало влияние и на численность грибов в ризосфере сои (табл. 3). В целом в условиях 2014 г. их численность была выше, что связано с низкой температурой. В среднем за два года количество грибов при использовании Na-KMЦ увеличивалось с 102,1 до 159,1 тыс. КОЕ/г абс. сухой почвы, т. е. в 1,6 раза. Обработка семян ри-зоторфином несколько сглаживала развитие грибов до 114,1 тыс. КОЕ. Органический препарат из половы овса снижал численность грибов до 85,6 тыс. КОЕ, а совместно с ризоторфином – до 53,7 тыс. КОЕ, т. е. в 1,9 раза.

Таблица 1

Численность микроорганизмов в ризосфере сои при использовании ризоторфина и прилипателей (фаза цветения)(среда МПА)

Вариант

Численность микроорганизмов, млн КОЕ/г абс. сухой почвы

2013 г.

2014 г.

Споровые

Неспоровые

Общее

Споровые

Неспоровые

Общее

Контроль

2,5

5,0

7,5

1,1

2,3

3,4

Na-КМЦ

2,8

9,6

12,4

2,2

4,6

6,8

Na-KMO

2,4

11,1

13,5

2,5

5,5

8,0

Ризоторфин

3,0

10,8

13,8

2,5

6,2

8,7

Ризоторфин + Na-КМЦ

4,9

13,5

18,4

2,3

7,9

10,2

Ризоторфин + Na-KMO

6,1

21,4

27,5

3,9

10,3

14,2

НСР 05

1,70

1,38

Таблица 2

Численность микроорганизмов в ризосфере сои при использовании ризоторфина и прилипателей (фаза цветения)(среда КАА)

Вариант

Численность микроорганизмов, млн КОЕ/г абс. сухой почвы

2013 г.

2014 г.

Бактерии

Актиномицеты

Общее

Бактерии

Актиномицеты

Общее

Контроль

21,0

2,7

23,7

8,4

1,2

9,6

Na-КМЦ

23,0

5,6

28,6

9,9

2,4

12,3

Na-KMO

20,4

6,3

26,7

11,4

2,7

14,1

Ризоторфин

23,5

5,8

29,3

11,9

4,6

16,5

Ризоторфин + Na-КМЦ

26,3

6,5

32,8

12,3

5,9

18,2

Ризоторфин + Na-KMO

30,0

7,4

37,4

14,8

7,3

22,1

НСР 05

2,95

0,94

Таблица 3

Численность грибов, тыс. КОЕ/г абс. сух. почвы в ризосфере сои при использовании ризоторфина и прилипателей

Год

Контроль

Nа-КМЦ

Na-KMO

Ризоторфин

Ризоторфин+ Nа-КМЦ

Ризоторфин + Na-KMO

НСР 05

2013

98,8

176,0

72,0

70,2

117,8

41,0

14,49

2014

105,3

142,1

99,3

80,5

110,2

66,3

15,16

Среднее

102,1

159,1

85,6

75,4

114,1

53,7

14,70

Использование ризоторфина и прилипателей отразилось и на симбиотической активности сои (табл. 4). Клубеньки в оба года формировались только на вариантах с использованием ризо-торфина. В условиях 2013 г. их число было больше в 1,3–1,8 раза. Клубеньки были более крупные и красные, т. е. эффективные, поэтому нитрогеназная активность также была выше в 3,6–4,2 раза. От использования прилипателей

Таблица 4

Симбиотическая активность сои при использовании ризоторфина и прилипателей (фаза цветения)

достоверное увеличение симбиотической активности сои наблюдалось при обработке семян Na-KMO. В среднем за два года использование органического прилипателя из половы овса (Na-KMO) увеличивало количество клубеньков на 6,1 шт., их массу – на 0,59 г, а нитрогеназную активность – на 0,21 мкг N 2 /растение·ч.

Вариант

Кол-во клубеньков, шт. на растение

Масса клубеньков, г на растение

Нитрогеназная активность, мкг N 2 /растение·ч

2013

2014

Среднее

2013

2014

Среднее

2013

2014

Среднее

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

Ризоторфин

12,0

9,3

10,7

0,99

0,15

0,57

0,80

0,17

0,45

Ризоторфин + Na-КМЦ

12,4

9,8

11,1

1,02

0,19

0,61

0,88

0,21

0,54

Окончание табл. 4

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

Ризоторфин + Na-KMO

22,0

12,3

17,2

2,15

0,24

1,20

1,27

0,52

0,89

НСР 05

5,01

3,19

4,10

0,32

0,11

0,22

0,42

0,18

0,30

Выводы

  • 1.    Микробиологическая активность черноземов выщелоченных и симбиотическая активность сои зависит от распределения тепла и влаги в период вегетации. В условиях достаточного увлажнения численность зимогенной микрофлоры увеличивается в 1,7–2,4 раза, количество эффективных клубеньков возрастает в 1,3–1,8, а их нитрогеназная активность – в 3,6– 4,2 раза.

  • 2.    Использование ризоторфина и прилипа-телей при инокуляции семян сои, как отдельно, так и совместно, повышает численность сапрофитной микрофлоры в 1,6–2,2 раза, количество бактерий и актиномицетов, использующих минеральные формы азота, – в 1,1–2,3 раза, снижает численность грибов в 1,2–1,9 раза и повышает формирование симбиотического аппарата сои. Наиболее высокие показатели микробиологической и симбиотической активности отмечены при обработке карбоксиметилирован-ным препаратом из половы овса совместно с ризоторфином. Поэтому полученные результаты позволяют рекомендовать использование данных препаратов для возделывания сои в условиях умеренно засушливой колочной степи.

Список литературы Влияние карбоксиметилированных препаратов и ризоторфина на микробиологическую активность черноземов Приобской лесостепи и симбиотическую активность сои

  • Возделывание сои в Алтайском крае: рекомендации/под ред. В.В. Яковлева, В.И. Усенко; РАСХН, Сиб. отд-ние, АНИИЗиС. -Барнаул, 2000. -30 с.
  • Соя в Западной Сибири/Н.И. Кашеваров, В.А. Солошенко, Н.И. Васякин /РАСХН, Сиб. отд-ние СибНИИ кормов. -Новосибирск: Юпитер, 2004. -256 с.
  • Емцев В.Т., Мишустин Е.Н. Микробиология: учеб. для вузов. -5-е изд., перераб. и доп. -М.: Колос, 2005. -445 с.
  • Subba Rao R.B., Dart P.J. Nitrogen fixation as-sociated with sorghum and millet//Associative N2-fixation. BocaRaton: CRCPress, 1981. -V. 1. -P. 169-177.
  • Завалин А.А. Биопрепараты, удобрения и урожай. -М.: Изд-во ВНИИА, 2005. -302 с.
  • Маркин В.И. Карбоксиметилирование расти-тельного сырья: теория и практика. -Бар-наул: Изд-во АГУ, 2010. -167 с.
  • Исследование влияния карбоксиметилиро-ванного растительного сырья на активность прорастания яровой мягкой пшеницы/Е.В. Калюта, М.И. Мальцев, В.И. Маркин //Химия растительного сырья. -2013. -№ 3. -С. 249-253.
  • Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. -М.: Агропромиздат, 1985. -351 с.
  • Теппер Е.З., Шильникова В.К., Переверзева Г.И. Практикум по микробиологии: учеб. пособие для вузов/под ред. В.К. Шильниковой. -М.: Дрофа, 2004. -256 с.
  • Демиденко Г.А. Влияние экологических фак-торов на формирование посевных качеств сои в Красноярской лесостепи//Вестн. Крас-ГАУ. -2015. -№ 3. -С. 64-68.
  • Ведров Н.Г., Дмитриев В.Е., Халипский А.Н. Сибирское растениеводство. -Красноярск: Изд-во КрасГАУ, 2002. -216 с.
  • Чураков А.А., Халипский А.Н., Ведров Н.Г. Влияние микробиологических удобрений на урожайность и качество сои в Красноярской лесостепи//Успехи современной науки. -2015. -№ 2. -С. 71-74.
  • Vozdelyvanie soi v Altajskom krae: rek-omendacii/pod red. V.V. Jakovleva, V.I. Usenko; RASHN, Sib. otd-nie, ANIIZiS. -Bar-naul, 2000. -30 s.
  • Soja v Zapadnoj Sibiri/N.I. Kashevarov, V.A. Soloshenko, N.I. Vasjakin /RASHN, Sib. otd-nie SibNII kormov. -Novosibirsk: Jupi-ter, 2004. -256 s.
  • Emcev V.T., Mishustin E.N. Microbiology: uchebn. dlja vuzov. -5-e izd., pererab. i dop. -M.:Bustard, 2005. -445 s.
  • Subba Rao R.B., Dart P.J. Nitrogen fixation as-sociated with sorghum and millet//Associative N2-fixation. Boca Raton: CRC Press, 1981. -V. 1. -P. 169-177.
  • Zavalin A.A. Biopreparaty, udobrenija i urozhaj. -M.: Izd-vo VNIIA, 2005. -302 s.
  • Markin V.I. Karboksimetilirovanie rastitel'nogo syr'ja: teorija i praktika. -Barnaul: Izd-vo AGU, 2010. -167 s.
  • Issledovanie vlijanie karboksimetilirovannogo rastitel'nogo syr'ja na aktivnost' prorastanija ja-rovoj mjagkoj pshenicy/E.V. Kaljuta, M.I. Mal'cev, V.I. Markin //Himija rastitel'nogo syr'ja. -2013. -№ 3. -S. 249-253.
  • Dospehov B.A. Metodika polevogo opyta. -M.: Agropromizdat, 1985. -351 s.
  • Tepper E.Z., Shil'nikova V.K., Pereverzeva G.I.Praktikum po mikrobiologii: ucheb. posobie dlja vuzov/pod red. V.K. Shil'nikovoj. -M.: Drofa, 2004. -256 s.
  • Demidenko G.A. Vlijanie jekologicheskih faktorov na formirovanie posevnyh kachestv soi v Krasnojarskoj lesostepi//Vestn. KrasGAU. -2015. -№ 3. -S. 64-68.
  • Vedrov N.G., Dmitriev V.E., Halipskij A.N. Sibir-skoe rastenievodstvo. -Krasnojarsk: Izd-vo KrasGAU, 2002. -216 s.
  • Churakov A.A., Halipskij A.N., Vedrov N.G. Vlijanie mikrobiologicheskih udobrenij na urozhajnost' i kachestvo soi v Krasnojarskoj lesostepi//Uspehi sovremennoj nauki. -2015. -№ 2. -S. 71-74.
Еще
Статья научная