Влияние картофельного сока на некоторые показатели иммунного профиля и микробиоту кишечника крыс

Исследования микробиоты кишечника и связанной с ней иммунной защиты относятся к важным направлениям в физиологии питания, поскольку все три фактора (пища-кишечная микробиота-иммунные клетки) непрерывно взаимодействуют между собой и участвуют в формировании резистентности макроорганизма к вирусным и бактериальным инфекциям. Введение в рацион растительных компонентов может заметно улучшить состав микробиоты кишечника и эффективность иммунной защиты. Картофель (Solanum tuberosum L.) - традиционный продукт питания, являющийся уникальным источником макро- (белки, жиры и углеводы) и микронутриентов (аскорбиновая кислота, ниацин, рибофлавин, тиамин, железо, фосфор, кальций, калий, антоцианы, каротиноиды). Одним из способов сохранить высокое содержание и биодоступность функциональных пищевых компонентов картофеля может стать его употребление в виде сока из неочищенных клубней, не подвергавшихся термической обработке. Состав клубней и получаемого из них сока значительно варьируются в зависимости от сортовых особенностей картофеля, окраски его мякоти и кожуры, содержания вторичных метаболитов. Ожидаемо, что различия в химическом составе сока определяют специфичность его действия на организм. Однако ранее эксперименты, подтверждающие эту гипотезу, не проводились. Цель исследования - сравнительная оценка влияния сока, полученного из неочищенных клубней картофеля сортов с разной пигментацией клубней, на иммунный профиль и микробиоту кишечника крыс. В эксперименте на шнековой соковыжималке получали сок из трех сортов картофеля: Багира (фиолетовый картофель), Лила (розовый картофель) и Аляска (белый картофель). Все сорта картофеля исследовали на содержание сухого вещества, крахмала, протеина, моно- и дисахаров, витамина С. Полученный сок выпаивали крысам в первой половине дня. В эксперименте использовали четыре группы нелинейных крыс-самцов по 9 особей в каждой (возраст 9-10 нед), три группы получали сок из фиолетового, розового и белого картофеля, одна (контроль) получала питьевую воду. В начале эксперимента (фон, 0-е сут) проводили взвешивание животных, отбирали образцы цельной крови для гематологических и иммунологических исследований, а также фекалий для бактериологического анализа. Далее в течение 4 нед экспериментальной диеты крыс всех групп еженедельно взвешивали. На 28-е сут отбирали образцы цельной крови и фекалий для проведения повторных лабораторных исследований. Гематологические показатели определяли на полуавтоматическом ветеринарном анализаторе Abacus Junior Vet («Diatron», Австрия). Лейкоцитарную формулу подсчитывали в мазках крови, окрашенных по Романовскому-Гимзе, по общепринятой методике. Подсчитывали Т- и В-лимфоциты, вычисляли Т/В-индекс, показатель фагоцитарной активности, фагоцитарный индекс, рассчитывали индекс системного воспаления, индекс системного воспалительного ответа, совокупный индекс системного воспаления, соотношение числа нейтрофилов и лимфоцитов, тромбоцитов и лимфоцитов, моноцитов и лимфоцитов. Бактериологические исследования проводили в соответствии с рекомендациями по выявлению условно-патогенных микроорганизмов в клинической микробиологии. Применяли методы описательной статистики, выполняли попарную оценку различий (U-критерий Манна-Уитни) и построение диаграмм (программы Jamovi, «The Jamovi Project», Австралия; https://www.jamovi.org/, Microsoft Office Excel 2023). Результаты считали статистически значимыми при p function show_abstract() { $('#abstract1').hide(); $('#abstract2').show(); $('#abstract_expand').hide(); }