Влияние микробиоты кишечника и ее метаболитов на центральные и периферические циркадные часы
Автор: Писарев И.В., Варницына В.В.
Журнал: Тюменский медицинский журнал @tmjournal
Статья в выпуске: 1 т.23, 2021 года.
Бесплатный доступ
В статье описаны факторы, влияющие на микробиоту кишечника, изменения которой, в свою очередь, приводят к изменению в центральных и периферических циркадных часах хозяина. Рассматривается роль рациона питания и влияние цикла сон-бодрствование на микробиоту кишечника, взаимосвязь питания и микробиоты на экспрессию генов, а также обсуждается влияние микробных метаболитов, в частности, короткоцепочечных жирных кислот на экспрессию генов биологических часов.
Микробиота кишечника, короткоцепочечные жирные кислоты, цикл сон-бодрствование, циркадные часы, ритмы микробиоты, рацион питания, гены
Короткий адрес: https://sciup.org/140303369
IDR: 140303369 | DOI: 10.36361/2307-4698-2020-23-1-16-21
The effect of the intestinal microbiota and its metabolites on the central and peripheral circadian clock
The article describes the factors affecting the intestinal microbiota, which, in turn, lead to changes in the central and peripheral circadian clocks of the host. The role of the diet and the sleep-wake cycle on the intestinal microbiota, the relationship of nutrition and microbiota on gene expression are discussed, and the influence of microbial metabolites, short-chain fatty acids on the expression of clock genes are considered.
Текст научной статьи Влияние микробиоты кишечника и ее метаболитов на центральные и периферические циркадные часы
Введение. Сон – это физиологическое состояние, выполняющее важную гомеостатическую функцию. Несмотря на то, что сон клинически проявляется как бездействие, физиологически он представляет собой период интенсивной активности, воздействующей на восстановление тканей, консолидацию памяти и соматический рост (Губин и Вайнерт, 1991; Davis et al., 2004). Недостаток сна снижает трудоспособность человека, приводит к развитию ряда патологических процессов в организме (Карпова, 2017).
Регуляция цикла сон/бодрствование осуществляется определёнными структурами мозга, а также гормонами, которые продуцируются гипоталамусом. У млекопитающих есть эндогенная система синхронизации в супрахиазматических ядрах (SCN) гипоталамической области мозга. Основные гены циркадных часов в циркадной системе млекопитающих включают: BMAL1, CLOCK, PER1, PER2, PER3, CRY1 и CRY2. У млекопитающих гены Period (Per 1 и Per 2) важны для воспроизведения циркадных часов в ответ на свет и темноту, а ген Bmal1 является их антагонистом (Cagampang & Bruce, 2012; Губин, 2013).
Микробы имеют свои собственные биологические ритмы (Тимохина и Губин, 2011; Николенко и др., 2011). В том числе и кишечные микробы имеют свои собственные циркадианные циклы, одним из проявлений которых является колебание ключевых метаболических медиаторов, которые встраиваются в циркадный ритм хозяина и поддерживают метаболический гомеостаз (Thaiss et al., 2014; Leone et al., 2015).
Влияние рациона питания на качественный и количественный состав микробиоты кишечника.
Очевидно, что пища может влиять на качественный и количественный состав микробиоты кишечника (Zhu et al., 2020; Voigt et al., 2014; Trompette et al., 2014; Leone et al., 2015; Swiatecka D et al., 2011; Keim et al., 2014; Hildebrandt M. A., 2009). И это действительно так, диета на основе жирной пищи увеличивает количество желчеустойчивых бактерий и снижает количество таксонов, метаболизирующих полисахариды (Zhu et al., 2020). Повышенное потребление клетчатки и углеводов увеличивает количество Bifidobacterium spp, Bacteroidetes, Akkermansia municiphila, Clostridium spp и Prevotella spp. (Keim et al., 2014; Zhu et al., 2020; Trompette et al., 2014) В свою очередь, это приводит к усилению целостности барьера, чувствительности к инсулину, уменьшению воспаления и улучшению метаболизма липидов (Matenchuk et al., 2020). Как правило, в диетах с высоким содержанием жиров насыщенные жиры увеличивают количество Firmicutes, Proteobacteria и Bilophila spp (Hildebrandt M. A. et al., 2009; Zhu et al., 2020) и приводят к усилению эндотоксемии (Poroyko et al, 2016).
Влияние сдвига цикла сон-бодрствование на микробиоту кишечника.
В случае нарушения циркадного ритма питания, как при генетическом дефиците часов (Liang et al., 2015), смены часовых поясов или сменной работы (Wu et al., 2018; Wang et al., 2014; Thaiss et al., 2014; Zarrinpar et al., 2014), происходит нарушение колебания микробиоты. Было выяснено, что хроническое смещение циркадных ритмов у мышей и нарушение биоритмов, вызванное сдвигом во времени, у людей приводит к изменению ритма приема пищи и неспособность поддерживать ритмичность и состав микробиоты, что переходит в дисбактериоз и трансмиссивные метаболические последствия, включающие ожирение и непереносимость глюкозы (Thaiss et al., 2014).
Во время смены часовых поясов у путешествующих людей тип микробов Firmicutes стал более многочисленным, в то время как количество бактерий Bacteroidetes сократилось в микробиоте кишечника. Восстановление от дисбиотических эффектов смены часовых поясов произошло в течение двух недель. Однако, у стерильных мышей, которым была проведена трансплантация кишечных микробов из образцов, полученных во время смены часовых поясов у людей, наблюдался значительный прирост веса и более высокий уровень глюкозы в крови после перорального приема глюкозы по сравнению с мышами без микробов, которым была проведена трансплантация кишечных микробов до смены часовых поясов. Наблюдаемые метаболические последствия не были устранены регулярным режимом сна и бодрствования у стерильных мышей (Thaiss et al., 2014). Интересно, что повышенное количество Firmicutes связано с более высокой склонностью к ожирению и метаболическим заболеваниям в исследованиях на людях (Ley et al., 2006). Дисбактериоз и метаболические последствия нарушения циркадных часов могут быть связаны с повышенной проницаемостью кишечного эпителиального барьера (Poroyko et al., 2016).
Взаимосвязь питания и микробиоты кишечника на экспрессию генов.
Некоторые авторы предполагают, что гены часов присутствуют в желудочно-кишечном тракте и являются частью функциональных молекулярных часов, которые координируют ритмические физиологические функции. В ходе исследований было выяснено, что гены часов ритмично экспрессировались по всему желудочно-кишечному тракту. Питание по времени приводило к сдвигу экспрессии гена часов на уровне РНК и белка, но не сдвигало экспрессию гена часов в центральных часах (Hoogerwerf et al., 2007).
В другом исследовании было продемонстрировано, что стерильные мыши, получавшие диету с низким или высоким содержанием жиров, показывали изменение экспрессии генов центральных и печеночных циркадных часов и не прибавляли в весе по сравнению с аналогичными мышами, выращенными традиционным способом. Микробные метаболиты, в частности короткоцепочечные жирные кислоты, выделяемые бактериями при употреблении диеты с высоким и низким содержанием жиров, приводят к изменению экспрессии генов циркадных часов в гепатоцитах. Таким образом, предполагается, что микробные метаболиты, поступающие в организм хозяина, обладают способностью регулировать или изменять центральные и печеночные циркадные ритмы и метаболическую функцию хозяина, особенно при соблюдении диеты (Leone et al., 2015; Marcinkevicius et al., 2015).
Ритмы микробиома кишечника.
До 60% от общего микробного состава, а именно Clostridiales, Lactobacillales и Bacteroidales, колеблются ритмично в 24-часовом цикле. В исследовании на мышах было выяснено о существовании функциональной активности микробиоты, специфичной для времени суток. Например, в темновую фазу (активную для мышей) наблюдалось повышение энергетического метаболизма, репарации ДНК и рост клеток. Световая фаза (неактивная для мышей, сон) характеризовалась большим количеством «поддерживающих» путей, вовлеченных в детоксикацию, подвижность и восприятие окружающей среды (Thaiss et al., 2014).
Устранение ритмов микробиоты при лечении антибиотиками и у стерильных мышей приводит к потере колебаний хроматина, а также к временной реорганизации метаболических путей как в кишечнике, так и в печени (Leone et al., 2015; Thaiss et al., 2016).
Микробиота кишечника – это тот фактор, который определяет экспрессию генов периферических часов (Tahara et al., 2018; Mukherji et al., 2013; Tahara et al., 2018; Leone et al., 2015). Однако, основные часы и связанные с ними гены колеблются независимо от микробных воздействий (Hoogerwerf et al., 2007). Некоторые авторы (Thaiss et al., 2014) в своём исследовании предположили, что молекулярные часы, а также уравновешенные промоторные и энхансер-ные области большой части генома подвергаются са-моподдерживающейся ритмичности, в то время как последующая индукция ритмичности в некоторых частях транскриптома зависит от правильной интерпретации сигналов окружающей среды, таких как восприятие колеблющихся уровней изобилия метаболитов.
Колебания микробиоты кишечника могут нарушаться под действием некоторых факторов, например, таких как диета с высоким содержанием жиров (Leone et al., 2015; Zhu et al., 2020; Voigt et al., 2014;
Hildebrandt et al., 2009), ограничение пищи, состав пищи (Zhu et al., 2020; Keim et al., 2014; Swiatecka et al., 2011), дефицит генов молекулярных часов (Liang et al., 2015) и фазовые сдвиги в цикле свет-темнота (Voigt et al., 2014). Поскольку бактериальные таксоны, такие как Bacteroides, Rumminococcus, Bifidobacteria и Roseburia, используют углеводы, неудивительно, что они реагируют на цикл питания / голодания (Poroyko et al., 2016).
Короткоцепочечные жирные кислоты влияют на экспрессию часовых генов и характер сна.
Один из наиболее важных сигналов, которые люди получают ежедневно – это микробные метаболиты, абсорбированные желудочно-кишечным трактом, некоторые из которых связаны со снижением риска аллергических и метаболических заболеваний (Trompette et al., 2014). Кишечные микробные метаболиты, такие как бутират и ацетат короткоцепочечных жирных кислот, могут влиять на экспрессию часовых генов (Leone et al., 2015; Gao et al., 2020; Tahara et al., 2018). Концентрация этих метаболитов зависит от активности хозяина и времени приёма пищи, поэтому меняется в течение дня, при этом самые высокие концентрации в образцах фекалий приходятся на активный период и снижаются в неактивный период (Tahara et al., 2018). Часовые гены экспрессируются в нескольких отделах кишечника. Установлено, что наибольшее количестве мРНК часовых генов находится в клетках тощей кишки и толстой кишки по сравнению с другими отделами кишечника. Тощая и слепая кишки посредством эпителия поглощают SCFA, образующиеся в результате микробной ферментации (Froy & Chapnik, 2007; Hoogerwerf et al., 2007).
В исследовании Leone et al., 2015 обнаружили, что у стерильных от микробов мышей дефицит микробных метаболитов приводит к нарушению экспрессии генов центральных и печеночных циркадных часов. Исследование включало опыты in vitro и in vivo. Было показано, что экспрессия часового гена Bmal1 повышается после обработки бутиратом и ацетатом, а часовой ген Per2 также увеличивался под действием бутирата, но снижался в ответ на обработку ацетатом в клетках печени in vitro. У стерильных мышей под действием бутирата происходило значительное увеличение соотношения мРНК Per2/Bmal1 в клетках печени, а также незначительное увеличение в медиобазальных клетках гипоталамуса in vivo.
Имеются данные, что гены Bmal1 и Per2 регулируют циркадные процессы на молекулярном уровне. Соотношение Per2/Bmal1 является маркером метаболических регуляторных сетей в печени. Далее в исследовании было показано, что интрапортальная инъекция бутирата приводит к увеличению на 70% времени non-REM фазы сна у мышей; однако системные подкожные и внутрибрюшинные инъекции бутирата не влияли на сон (Leone et al., 2015). Эти результаты свидетельствуют о том, что вызывающие сон эффекты бутирата опосредуются печеночными сенсорными механизмами.
По результатам исследований Lin et al., 2015 видно, что SCFA регулируют экспрессию генов и транскрипцию хроматина путем ингибирования гистоновых деацетилаз (HDAC). Активность HDAC ингибируется внутриклеточным бутиратом, пропионатом и ацетатом. Инъекция бутирата натрия вызвала гиперацетилирование гистонов в гиппокампе и лобной коре, однако, введение бутирата натрия внутрибрюшинно сопровождалось хроническим ингибированием HDAC, что улучшало обучение и память у мышей дикого типа и мышей с атрофией мозга (Fischer et al., 2007).
Влияние кишечной микробиоты и её метаболитов на циркадные ритмы в эпителиальных клетках кишечника.
В эпителии кишечника происходит циркадная ритмичная экспрессия часовых генов, в частности, таких как RORα (Sato et al, 2004) и Rev-Erbα (Cho et al, 2012), которые контролируют многочисленные гены, участвующие в гомеостазе функций эпителиальных клеток кишечника. Например, RORα и RevErbα включены в процесс регуляции Toll-подобных рецепторов (TLR). TLR-опосредованная передача сигналов микробиоты следует ритмическому паттерну и приводит к контролю гомеостаза эпителия кишки (Froy & Chapnik, 2007; Mukherji et al., 2013; Lin et al., 2015).
В исследовании (Mukherji et al., 2013) на мышах, которым проводилась антибиотикотерапия, в эпителии кишечника происходило увеличение транскриптов RevErbα, PPARα, а транскрипты RORα и PPARβ уменьшались. Также транскрипты Bmal1 и Cry1 уменьшились, тогда как транскрипты Per1 и Per2 увеличились, а транскрипты Clock остались без изменений. То есть можно сказать, что отсутствие микробиоты препятствует передаче сигналов, опосредованной PRR (об-раз-распознающие рецепторы), и нарушает функцию часов, что проявляется в нарушении транскрипции всех генов, экспрессия которых зависит как от PRR, так и компонентов часов. Так, в отсутствии микробиоты происходит следующая цепочка событий: нарушение передачи сигнала от PRR – постоянная экспрессия PPARα в эпителии кишечника – постоянное увеличение экспрессии RevErbα и репрессия гена E4BP4 (регулирует фермент Cyp11a1) приводит к конститутивной экспрессии фермента Cyp11a1, который катализирует скоростьлимитирующую первую стадию стероидогенеза, превращения холестерина в прегненолон (Guryev et al., 2003).
Постоянная экспрессия PPARα в результате отсутствия микробиоты кишечника приводит к нарушению экспрессии часовых генов Bmal1 и Cry1 в эпителиальных клетках кишечника (Mukherji et al., 2013, Grimaldi et al., 2010).
Бутират увеличивает содержание PPARα в энтеро-цитах как на уровне мРНК, так и на уровне белка. Можно предположить, что содержание PPARα может быть связано с обилием PER2 (Wachtershauser et al, 2000). Примечательно, что высокие концентрации SCFA могут ингибировать свой собственный переносчик MCT1 в эпителии кишки по обратной связи, в результате транспорт короткоцепочечных жирных кислот снижается (Zhao et al., 2019).
Выводы.
Циркадные часы существуют во всех системах организма и проявляются во многих физиологических процессах организма. Для поддержания циркадных ритмов человеку необходим правильный здоровый сон, а также правильное и ритмичное питание. Естественно, что микробиота кишечника также имеет свои циркадные ритмы, которые преимущественно регулируются режимом питания и голодания, а также метаболическим путем влияния организма человека на микробиоту. Постоянная сменяемость часовых поясов в связи с перелетами или у сменных рабочих, а также нарушение циклического режима питания / голодания способны нарушить естественные колебания микробиоты кишечника. При этом наблюдается нарушение выработки метаболитов кишечной микробиотой, то есть происходит нарушение циклов обмена веществ. Качественные и количественные изменения в микробиоте проявляются в риске развития метаболических заболеваний, таких как ожирение, сердечно-сосудистые заболевания (гиперлипидемия, атеросклероз и гипертония), инсулинорезистент-ность, диабет 2 типа, подагра и гиперурикемия. Поэтому можно сделать вывод, что здоровье человека и микробиота кишечника имеют между собой прямую зависимость.
Один из механизмов работы циркадных часов в том, что в соответствии с суточными изменениями окружающей среды происходит регуляция физиологических процессов посредством координации колебаний транскриптома в центральных и периферических тканях. В каждой отдельной клетке ритмическая программа транскрипции выполняется сетью факторов транскрипции основных часов, включая Per, Cry, Bmal и Clock, которые изменяют динамику хроматина. В результате до 20% общего транскриптома ткани и до 50% всех транскриптов в организме состоят из колеблющихся элементов, которые определяют суточный характер клеточной и организменной активности.
Активность циркадных часов в значительной степени влияет на клеточный метаболизм, что позволяет учитывать временные изменения метаболических процессов организма в течение дня. Так, например, систему циркадных часов печени нужно учитывать при процессе биотрансформации ксенобиотиков, что представляет практический интерес в фармакологии.
Список литературы Влияние микробиоты кишечника и ее метаболитов на центральные и периферические циркадные часы
- Губин ГД, Вайнерт Д. Биоритмы и возраст. Успехи физиол. наук. 1991;22:96.
- Губин ДГ. Молекулярные механизмы циркадианных ритмов и принципы развития десинхроноз. Успехи физиологических наук. 2013;44 (4):65-87.
- Карпова ТВ. Влияние сна на организм человека. Наука, техника и образование. 2017. 4 (34):117-119.
- Николенко МВ, Тимохина ТХ, Варницына ВВ. Морфофункциональная активность Candida albicans в течение суток. Медицинская наука и образование Урала. 2011; 4:46-48.
- Тимохина ТХ, Губин ДГ. Особенности временной организации биологических свойств госпитальных изолятов и музейных штаммов S. aureus, E. coli, P. aeruginosa. Медицинская наука и образование Урала. 2011; 2:98-100.
- Cagampang FR, Bruce KD. The role of the circadian clock system in nutrition and metabolism. British Journal of Nutrition. 2012; 108 (3):381-392. Doi:10.1017/S0007114512002139.
- Cho H, Zhao X, Hatori M, et al. Regulation of circadian behaviour and metabolism by REV-ERB-α and REV-ERB-β. Nature. 2012; 485:123-127. Doi:10.1038/nature11048.
- Davis KF, Parker KP, Montgomery GL. Sleep in infants and young children: part one: normal sleep. Journal of Pediatric Health Care. 2004; 18:65-71. Doi:10.1016/S0891-5245 (03) 00149-4.
- Fischer, A., Sananbenesi, F., Wang, X. et al. Recovery of learning and memory is associated with chromatin remodelling. Nature. 2007; 447:178-182. Doi:10.1038/nature05772.
- Froy O, Chapnik N. Circadian oscillation of innate immunity components in mouse small intestine. Molecular Immunology. 2007; 44 (8):1954-1960. Doi:10.1016/j.molimm.2006.09.026.
- Gao J, Xu Q, Wang M, et al. Ruminal epithelial cell proliferation and short-chain fatty acid transporters in vitro are associated with abundance of period circadian regulator 2 (PER2). Journal of Dairy Science. 2020; 103 (12). Doi:10.3168/jds.2020-18767.
- Grimaldi B, Bellet MM, Katada S, et al. PER2 controls lipid metabolism by direct regulation of PPARgamma. Cell Metabolism. 2010; 12 (5):509-520. Doi:10.1016/j.cmet.2010.10.005.
- Guryev O, Carvalho RA, Usanov S, et al. A pathway for the metabolism of vitamin D3: Unique hydroxylated metabolites formed during catalysis with cytochrome P450scc (CYP11A1). Proceedings of the National Academy of Sciences. 2003;100 (25):14754-14759. Doi:10.1073/pnas.2336107100.
- Henao-Mejia J, Strowig T, Flavell RA. Microbiota Keep the Intestinal Clock Ticking. Cell. 2013; 153 (4):741-743. Doi:10.1016/j.cell.2013.04.043.
- Hildebrandt MA, Hoffmann C, Sherrill–Mix SA, et al. High-Fat Diet Determines the Composition of the Murine Gut Microbiome Independently of Obesity. Gastroenterology. 2009; 137 (5):1716-1724.e2. doi:10.1053/j.gastro.2009.08.042.
- Hoogerwerf WA, Hellmich HL, Cornélissen G, et al. Clock gene expression in the murine gastrointestinal tract: endogenous rhythmicity and effects of a feeding regimen. Gastroenterology. 2007; 133 (4):1250-60. doi: 10.1053/j.gastro.2007.07.009.
- Keim NL, Martin RJ. Dietary Whole Grain–Microbiota Interactions: Insights into Mechanisms for Human Health. Advances in Nutrition. 2014; 5 (5):556-557. Doi:10.3945/an.114.006536.
- Leone V, Gibbons SM, Martinez K, et al. Effects of Diurnal Variation of Gut Microbes and High-Fat Feeding on Host Circadian Clock Function and Metabolism. Cell Host & Microbe. 2015; 17 (5):681-689. Doi:10.1016/j.chom.2015.03.006.
- Ley R, Turnbaugh P, Klein S, et al. Human gut microbes associated with obesity. Nature. 2006; 444:1022-1023. Doi:10.1038/4441022a.
- Liang X, Bushman FD, FitzGerald GA. Regulation of intestinal microbiota rhythmicity. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2015; 112 (33):10479-10484. Doi:10.1073/pnas.1501305112.
- Lin MY, de Zoete MR, van Putten JPM et al. Redirection of epithelial immune responses by short-chain fatty acids through inhibition of histone deacetylases. Front. Immunol. 2015; 6:554. doi: 10.3389/fimmu.2015.00554.
- Marcinkevicius EV, Shirasu-Hiza MM. Message in a Biota: Gut Microbes Signal to the Circadian Clock. Cell Host & Microbe. 2015; 17 (5):541-543. Doi:10.1016/j.chom.2015.04.013.
- Matenchuk BA, Mandhane PJ, Kozyrsky AL. Sleep, circadian rhythm, and gut microbiota. Sleep Medicine Reviews. 2020; 53:101340. Doi:10.1016/j.smrv.2020.101340.
- Mukherji A, Kobiita A, Ye T, et al. Homeostasis in Intestinal Epithelium Is Orchestrated by the Circadian Clock and Microbiota Cues Transduced by TLRs. Cell. 2013; 153 (4):812-827. Doi:10.1016/j.cell.2013.04.020.
- Poroyko V, Carreras A, Khalyfa A, et al. Chronic Sleep Disruption Alters Gut Microbiota, Induces Systemic and Adipose Tissue Inflammation and Insulin Resistance in Mice. Sci Rep. 2016; 6,35405. Doi:10.1038/srep35405.
- Sato TK, Panda S, Miraglia LJ, et al. A Functional Genomics Strategy Reveals Rora as a Component of the Mammalian Circadian Clock. Neuron. 2004; 43 (4):527-537. Doi:10.1016/j.neuron.2004.07.018.
- Swiatecka D, Narbad A, Karyn RP, et al. The study on the impact of glycated pea proteins on human intestinal bacteria. International Journal of Food Microbiology. 2011; 145 (1):267-272. Doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2011.01.002.
- Tahara, Y., Yamazaki, M., Sukigara, H. et al. Gut Microbiota- Derived Short Chain Fatty Acids Induce Circadian Clock Entrainment in Mouse Peripheral Tissue. Sci Rep. 2018; 1395 (8). Doi:10.1038/s41598-018-19836-7.
- Thaiss CA, Levy M, Korem T, et al. Microbiota Diurnal Rhythmicity Programs Host Transcriptome Oscillations. Cell. 2016; 167 (6): 1495-1510.e12. doi:10.1016/j.cell.2016.11.003.
- Thaiss CA, Zeevi D, Levy M, et al. Transkingdom control of microbiota diurnal oscillations promotes metabolic homeostasis. Cell. 2014; 159 (3):514-529. Doi:10.1016/j.cell.2014.09.048.
- Trompette A, Gollwitzer E, Yadava K, et al. Gut microbiota metabolism of dietary fiber influences allergic airway disease and hematopoiesis. Nat Med.2014; 20:159-166. doi:10.1038/nm.3444.
- Vegiopoulos A, Herzig S. Glucocorticoids, metabolism and metabolic diseases. Molecular and Cellular Endocrinology. 2007; 275 (1-2):43-61. Doi:10.1016/j.mce.2007.05.015.
- Vieira E, Marroquí L, Batista TM, et al. The Clock Gene Rev-erbα Regulates Pancreatic β-Cell Function: Modulation by Leptin and High-Fat Diet. Endocrinology. 2012; 153 (2):592-601. Doi:10.1210/en.2011-1595.
- Voigt RM, Forsyth CB, Green SJ, et al. Circadian Disorganization Alters Intestinal Microbiota. PLOS ONE. 2014; 9 (5): e97500. Doi:10.1371/journal.pone.0097500.
- Wachtershauser A, Loitsch SM, Stein J. PPAR-γ Is Selectively Upregulated in Caco-2 Cells by Butyrate. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2000; 272 (2):380-385. Doi:10.1006/bbrc.2000.2793.
- Wang Y, Carreras A, Lee S, et al. Chronic sleep fragmentation promotes obesity in young adult mice. Obesity. 2014; 22 (3):758-762. Doi:10.1002/oby.20616.
- Wu G, Tang W, He Y, et al. Light exposure influences the diurnal oscillation of gut microbiota in mice. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2018; 501 (1):16-23. Doi:10.1016/j.bbrc.2018.04.095.
- Zarrinpar A, Chaix A, Yooseph S, et al. Diet and Feeding Pattern Affect the Diurnal Dynamics of the Gut Microbiome. Cell Metabolism. 2014; 20 (6):1006-1017. Doi:10.1016/j.cmet.2014.11.008.
- Zhao C, Wang Y, Peng Z, et al. Subacute ruminal acidosis suppressed the expression of MCT1 in rumen of cows. J Cell Physiol. 2019; 234:11734-11745. Doi:10.1002/jcp.27829.
- Zhu L, Sawrey-Kubicek L, Beals E, et al. Human gut microbiome composition and tryptophan metabolites were changed differently by fast food and Mediterranean diet in 4 days: a pilot study. Nutrition Research. 2020; 77:62-72. Doi:10.1016/j.nutres.2020.03.005.