Влияние микробиоты кишечника и ее метаболитов на центральные и периферические циркадные часы
Автор: Писарев И.В., Варницына В.В.
Журнал: Тюменский медицинский журнал @tmjournal
Статья в выпуске: 1 т.23, 2021 года.
Бесплатный доступ
В статье описаны факторы, влияющие на микробиоту кишечника, изменения которой, в свою очередь, приводят к изменению в центральных и периферических циркадных часах хозяина. Рассматривается роль рациона питания и влияние цикла сон-бодрствование на микробиоту кишечника, взаимосвязь питания и микробиоты на экспрессию генов, а также обсуждается влияние микробных метаболитов, в частности, короткоцепочечных жирных кислот на экспрессию генов биологических часов.
Микробиота кишечника, короткоцепочечные жирные кислоты, цикл сон-бодрствование, циркадные часы, ритмы микробиоты, рацион питания, гены
Короткий адрес: https://sciup.org/140303369
IDR: 140303369 | DOI: 10.36361/2307-4698-2020-23-1-16-21
Текст научной статьи Влияние микробиоты кишечника и ее метаболитов на центральные и периферические циркадные часы
Введение. Сон – это физиологическое состояние, выполняющее важную гомеостатическую функцию. Несмотря на то, что сон клинически проявляется как бездействие, физиологически он представляет собой период интенсивной активности, воздействующей на восстановление тканей, консолидацию памяти и соматический рост (Губин и Вайнерт, 1991; Davis et al., 2004). Недостаток сна снижает трудоспособность человека, приводит к развитию ряда патологических процессов в организме (Карпова, 2017).
Регуляция цикла сон/бодрствование осуществляется определёнными структурами мозга, а также гормонами, которые продуцируются гипоталамусом. У млекопитающих есть эндогенная система синхронизации в супрахиазматических ядрах (SCN) гипоталамической области мозга. Основные гены циркадных часов в циркадной системе млекопитающих включают: BMAL1, CLOCK, PER1, PER2, PER3, CRY1 и CRY2. У млекопитающих гены Period (Per 1 и Per 2) важны для воспроизведения циркадных часов в ответ на свет и темноту, а ген Bmal1 является их антагонистом (Cagampang & Bruce, 2012; Губин, 2013).
Микробы имеют свои собственные биологические ритмы (Тимохина и Губин, 2011; Николенко и др., 2011). В том числе и кишечные микробы имеют свои собственные циркадианные циклы, одним из проявлений которых является колебание ключевых метаболических медиаторов, которые встраиваются в циркадный ритм хозяина и поддерживают метаболический гомеостаз (Thaiss et al., 2014; Leone et al., 2015).
Влияние рациона питания на качественный и количественный состав микробиоты кишечника.
Очевидно, что пища может влиять на качественный и количественный состав микробиоты кишечника (Zhu et al., 2020; Voigt et al., 2014; Trompette et al., 2014; Leone et al., 2015; Swiatecka D et al., 2011; Keim et al., 2014; Hildebrandt M. A., 2009). И это действительно так, диета на основе жирной пищи увеличивает количество желчеустойчивых бактерий и снижает количество таксонов, метаболизирующих полисахариды (Zhu et al., 2020). Повышенное потребление клетчатки и углеводов увеличивает количество Bifidobacterium spp, Bacteroidetes, Akkermansia municiphila, Clostridium spp и Prevotella spp. (Keim et al., 2014; Zhu et al., 2020; Trompette et al., 2014) В свою очередь, это приводит к усилению целостности барьера, чувствительности к инсулину, уменьшению воспаления и улучшению метаболизма липидов (Matenchuk et al., 2020). Как правило, в диетах с высоким содержанием жиров насыщенные жиры увеличивают количество Firmicutes, Proteobacteria и Bilophila spp (Hildebrandt M. A. et al., 2009; Zhu et al., 2020) и приводят к усилению эндотоксемии (Poroyko et al, 2016).
Влияние сдвига цикла сон-бодрствование на микробиоту кишечника.
В случае нарушения циркадного ритма питания, как при генетическом дефиците часов (Liang et al., 2015), смены часовых поясов или сменной работы (Wu et al., 2018; Wang et al., 2014; Thaiss et al., 2014; Zarrinpar et al., 2014), происходит нарушение колебания микробиоты. Было выяснено, что хроническое смещение циркадных ритмов у мышей и нарушение биоритмов, вызванное сдвигом во времени, у людей приводит к изменению ритма приема пищи и неспособность поддерживать ритмичность и состав микробиоты, что переходит в дисбактериоз и трансмиссивные метаболические последствия, включающие ожирение и непереносимость глюкозы (Thaiss et al., 2014).
Во время смены часовых поясов у путешествующих людей тип микробов Firmicutes стал более многочисленным, в то время как количество бактерий Bacteroidetes сократилось в микробиоте кишечника. Восстановление от дисбиотических эффектов смены часовых поясов произошло в течение двух недель. Однако, у стерильных мышей, которым была проведена трансплантация кишечных микробов из образцов, полученных во время смены часовых поясов у людей, наблюдался значительный прирост веса и более высокий уровень глюкозы в крови после перорального приема глюкозы по сравнению с мышами без микробов, которым была проведена трансплантация кишечных микробов до смены часовых поясов. Наблюдаемые метаболические последствия не были устранены регулярным режимом сна и бодрствования у стерильных мышей (Thaiss et al., 2014). Интересно, что повышенное количество Firmicutes связано с более высокой склонностью к ожирению и метаболическим заболеваниям в исследованиях на людях (Ley et al., 2006). Дисбактериоз и метаболические последствия нарушения циркадных часов могут быть связаны с повышенной проницаемостью кишечного эпителиального барьера (Poroyko et al., 2016).
Взаимосвязь питания и микробиоты кишечника на экспрессию генов.
Некоторые авторы предполагают, что гены часов присутствуют в желудочно-кишечном тракте и являются частью функциональных молекулярных часов, которые координируют ритмические физиологические функции. В ходе исследований было выяснено, что гены часов ритмично экспрессировались по всему желудочно-кишечному тракту. Питание по времени приводило к сдвигу экспрессии гена часов на уровне РНК и белка, но не сдвигало экспрессию гена часов в центральных часах (Hoogerwerf et al., 2007).
В другом исследовании было продемонстрировано, что стерильные мыши, получавшие диету с низким или высоким содержанием жиров, показывали изменение экспрессии генов центральных и печеночных циркадных часов и не прибавляли в весе по сравнению с аналогичными мышами, выращенными традиционным способом. Микробные метаболиты, в частности короткоцепочечные жирные кислоты, выделяемые бактериями при употреблении диеты с высоким и низким содержанием жиров, приводят к изменению экспрессии генов циркадных часов в гепатоцитах. Таким образом, предполагается, что микробные метаболиты, поступающие в организм хозяина, обладают способностью регулировать или изменять центральные и печеночные циркадные ритмы и метаболическую функцию хозяина, особенно при соблюдении диеты (Leone et al., 2015; Marcinkevicius et al., 2015).
Ритмы микробиома кишечника.
До 60% от общего микробного состава, а именно Clostridiales, Lactobacillales и Bacteroidales, колеблются ритмично в 24-часовом цикле. В исследовании на мышах было выяснено о существовании функциональной активности микробиоты, специфичной для времени суток. Например, в темновую фазу (активную для мышей) наблюдалось повышение энергетического метаболизма, репарации ДНК и рост клеток. Световая фаза (неактивная для мышей, сон) характеризовалась большим количеством «поддерживающих» путей, вовлеченных в детоксикацию, подвижность и восприятие окружающей среды (Thaiss et al., 2014).
Устранение ритмов микробиоты при лечении антибиотиками и у стерильных мышей приводит к потере колебаний хроматина, а также к временной реорганизации метаболических путей как в кишечнике, так и в печени (Leone et al., 2015; Thaiss et al., 2016).
Микробиота кишечника – это тот фактор, который определяет экспрессию генов периферических часов (Tahara et al., 2018; Mukherji et al., 2013; Tahara et al., 2018; Leone et al., 2015). Однако, основные часы и связанные с ними гены колеблются независимо от микробных воздействий (Hoogerwerf et al., 2007). Некоторые авторы (Thaiss et al., 2014) в своём исследовании предположили, что молекулярные часы, а также уравновешенные промоторные и энхансер-ные области большой части генома подвергаются са-моподдерживающейся ритмичности, в то время как последующая индукция ритмичности в некоторых частях транскриптома зависит от правильной интерпретации сигналов окружающей среды, таких как восприятие колеблющихся уровней изобилия метаболитов.
Колебания микробиоты кишечника могут нарушаться под действием некоторых факторов, например, таких как диета с высоким содержанием жиров (Leone et al., 2015; Zhu et al., 2020; Voigt et al., 2014;
Hildebrandt et al., 2009), ограничение пищи, состав пищи (Zhu et al., 2020; Keim et al., 2014; Swiatecka et al., 2011), дефицит генов молекулярных часов (Liang et al., 2015) и фазовые сдвиги в цикле свет-темнота (Voigt et al., 2014). Поскольку бактериальные таксоны, такие как Bacteroides, Rumminococcus, Bifidobacteria и Roseburia, используют углеводы, неудивительно, что они реагируют на цикл питания / голодания (Poroyko et al., 2016).
Короткоцепочечные жирные кислоты влияют на экспрессию часовых генов и характер сна.
Один из наиболее важных сигналов, которые люди получают ежедневно – это микробные метаболиты, абсорбированные желудочно-кишечным трактом, некоторые из которых связаны со снижением риска аллергических и метаболических заболеваний (Trompette et al., 2014). Кишечные микробные метаболиты, такие как бутират и ацетат короткоцепочечных жирных кислот, могут влиять на экспрессию часовых генов (Leone et al., 2015; Gao et al., 2020; Tahara et al., 2018). Концентрация этих метаболитов зависит от активности хозяина и времени приёма пищи, поэтому меняется в течение дня, при этом самые высокие концентрации в образцах фекалий приходятся на активный период и снижаются в неактивный период (Tahara et al., 2018). Часовые гены экспрессируются в нескольких отделах кишечника. Установлено, что наибольшее количестве мРНК часовых генов находится в клетках тощей кишки и толстой кишки по сравнению с другими отделами кишечника. Тощая и слепая кишки посредством эпителия поглощают SCFA, образующиеся в результате микробной ферментации (Froy & Chapnik, 2007; Hoogerwerf et al., 2007).
В исследовании Leone et al., 2015 обнаружили, что у стерильных от микробов мышей дефицит микробных метаболитов приводит к нарушению экспрессии генов центральных и печеночных циркадных часов. Исследование включало опыты in vitro и in vivo. Было показано, что экспрессия часового гена Bmal1 повышается после обработки бутиратом и ацетатом, а часовой ген Per2 также увеличивался под действием бутирата, но снижался в ответ на обработку ацетатом в клетках печени in vitro. У стерильных мышей под действием бутирата происходило значительное увеличение соотношения мРНК Per2/Bmal1 в клетках печени, а также незначительное увеличение в медиобазальных клетках гипоталамуса in vivo.
Имеются данные, что гены Bmal1 и Per2 регулируют циркадные процессы на молекулярном уровне. Соотношение Per2/Bmal1 является маркером метаболических регуляторных сетей в печени. Далее в исследовании было показано, что интрапортальная инъекция бутирата приводит к увеличению на 70% времени non-REM фазы сна у мышей; однако системные подкожные и внутрибрюшинные инъекции бутирата не влияли на сон (Leone et al., 2015). Эти результаты свидетельствуют о том, что вызывающие сон эффекты бутирата опосредуются печеночными сенсорными механизмами.
По результатам исследований Lin et al., 2015 видно, что SCFA регулируют экспрессию генов и транскрипцию хроматина путем ингибирования гистоновых деацетилаз (HDAC). Активность HDAC ингибируется внутриклеточным бутиратом, пропионатом и ацетатом. Инъекция бутирата натрия вызвала гиперацетилирование гистонов в гиппокампе и лобной коре, однако, введение бутирата натрия внутрибрюшинно сопровождалось хроническим ингибированием HDAC, что улучшало обучение и память у мышей дикого типа и мышей с атрофией мозга (Fischer et al., 2007).
Влияние кишечной микробиоты и её метаболитов на циркадные ритмы в эпителиальных клетках кишечника.
В эпителии кишечника происходит циркадная ритмичная экспрессия часовых генов, в частности, таких как RORα (Sato et al, 2004) и Rev-Erbα (Cho et al, 2012), которые контролируют многочисленные гены, участвующие в гомеостазе функций эпителиальных клеток кишечника. Например, RORα и RevErbα включены в процесс регуляции Toll-подобных рецепторов (TLR). TLR-опосредованная передача сигналов микробиоты следует ритмическому паттерну и приводит к контролю гомеостаза эпителия кишки (Froy & Chapnik, 2007; Mukherji et al., 2013; Lin et al., 2015).
В исследовании (Mukherji et al., 2013) на мышах, которым проводилась антибиотикотерапия, в эпителии кишечника происходило увеличение транскриптов RevErbα, PPARα, а транскрипты RORα и PPARβ уменьшались. Также транскрипты Bmal1 и Cry1 уменьшились, тогда как транскрипты Per1 и Per2 увеличились, а транскрипты Clock остались без изменений. То есть можно сказать, что отсутствие микробиоты препятствует передаче сигналов, опосредованной PRR (об-раз-распознающие рецепторы), и нарушает функцию часов, что проявляется в нарушении транскрипции всех генов, экспрессия которых зависит как от PRR, так и компонентов часов. Так, в отсутствии микробиоты происходит следующая цепочка событий: нарушение передачи сигнала от PRR – постоянная экспрессия PPARα в эпителии кишечника – постоянное увеличение экспрессии RevErbα и репрессия гена E4BP4 (регулирует фермент Cyp11a1) приводит к конститутивной экспрессии фермента Cyp11a1, который катализирует скоростьлимитирующую первую стадию стероидогенеза, превращения холестерина в прегненолон (Guryev et al., 2003).
Постоянная экспрессия PPARα в результате отсутствия микробиоты кишечника приводит к нарушению экспрессии часовых генов Bmal1 и Cry1 в эпителиальных клетках кишечника (Mukherji et al., 2013, Grimaldi et al., 2010).
Бутират увеличивает содержание PPARα в энтеро-цитах как на уровне мРНК, так и на уровне белка. Можно предположить, что содержание PPARα может быть связано с обилием PER2 (Wachtershauser et al, 2000). Примечательно, что высокие концентрации SCFA могут ингибировать свой собственный переносчик MCT1 в эпителии кишки по обратной связи, в результате транспорт короткоцепочечных жирных кислот снижается (Zhao et al., 2019).
Выводы.
Циркадные часы существуют во всех системах организма и проявляются во многих физиологических процессах организма. Для поддержания циркадных ритмов человеку необходим правильный здоровый сон, а также правильное и ритмичное питание. Естественно, что микробиота кишечника также имеет свои циркадные ритмы, которые преимущественно регулируются режимом питания и голодания, а также метаболическим путем влияния организма человека на микробиоту. Постоянная сменяемость часовых поясов в связи с перелетами или у сменных рабочих, а также нарушение циклического режима питания / голодания способны нарушить естественные колебания микробиоты кишечника. При этом наблюдается нарушение выработки метаболитов кишечной микробиотой, то есть происходит нарушение циклов обмена веществ. Качественные и количественные изменения в микробиоте проявляются в риске развития метаболических заболеваний, таких как ожирение, сердечно-сосудистые заболевания (гиперлипидемия, атеросклероз и гипертония), инсулинорезистент-ность, диабет 2 типа, подагра и гиперурикемия. Поэтому можно сделать вывод, что здоровье человека и микробиота кишечника имеют между собой прямую зависимость.
Один из механизмов работы циркадных часов в том, что в соответствии с суточными изменениями окружающей среды происходит регуляция физиологических процессов посредством координации колебаний транскриптома в центральных и периферических тканях. В каждой отдельной клетке ритмическая программа транскрипции выполняется сетью факторов транскрипции основных часов, включая Per, Cry, Bmal и Clock, которые изменяют динамику хроматина. В результате до 20% общего транскриптома ткани и до 50% всех транскриптов в организме состоят из колеблющихся элементов, которые определяют суточный характер клеточной и организменной активности.
Активность циркадных часов в значительной степени влияет на клеточный метаболизм, что позволяет учитывать временные изменения метаболических процессов организма в течение дня. Так, например, систему циркадных часов печени нужно учитывать при процессе биотрансформации ксенобиотиков, что представляет практический интерес в фармакологии.
Список литературы Влияние микробиоты кишечника и ее метаболитов на центральные и периферические циркадные часы
- Губин ГД, Вайнерт Д. Биоритмы и возраст. Успехи физиол. наук. 1991;22:96.
- Губин ДГ. Молекулярные механизмы циркадианных ритмов и принципы развития десинхроноз. Успехи физиологических наук. 2013;44 (4):65-87.
- Карпова ТВ. Влияние сна на организм человека. Наука, техника и образование. 2017. 4 (34):117-119.
- Николенко МВ, Тимохина ТХ, Варницына ВВ. Морфофункциональная активность Candida albicans в течение суток. Медицинская наука и образование Урала. 2011; 4:46-48.
- Тимохина ТХ, Губин ДГ. Особенности временной организации биологических свойств госпитальных изолятов и музейных штаммов S. aureus, E. coli, P. aeruginosa. Медицинская наука и образование Урала. 2011; 2:98-100.
- Cagampang FR, Bruce KD. The role of the circadian clock system in nutrition and metabolism. British Journal of Nutrition. 2012; 108 (3):381-392. Doi:10.1017/S0007114512002139.
- Cho H, Zhao X, Hatori M, et al. Regulation of circadian behaviour and metabolism by REV-ERB-α and REV-ERB-β. Nature. 2012; 485:123-127. Doi:10.1038/nature11048.
- Davis KF, Parker KP, Montgomery GL. Sleep in infants and young children: part one: normal sleep. Journal of Pediatric Health Care. 2004; 18:65-71. Doi:10.1016/S0891-5245 (03) 00149-4.
- Fischer, A., Sananbenesi, F., Wang, X. et al. Recovery of learning and memory is associated with chromatin remodelling. Nature. 2007; 447:178-182. Doi:10.1038/nature05772.
- Froy O, Chapnik N. Circadian oscillation of innate immunity components in mouse small intestine. Molecular Immunology. 2007; 44 (8):1954-1960. Doi:10.1016/j.molimm.2006.09.026.
- Gao J, Xu Q, Wang M, et al. Ruminal epithelial cell proliferation and short-chain fatty acid transporters in vitro are associated with abundance of period circadian regulator 2 (PER2). Journal of Dairy Science. 2020; 103 (12). Doi:10.3168/jds.2020-18767.
- Grimaldi B, Bellet MM, Katada S, et al. PER2 controls lipid metabolism by direct regulation of PPARgamma. Cell Metabolism. 2010; 12 (5):509-520. Doi:10.1016/j.cmet.2010.10.005.
- Guryev O, Carvalho RA, Usanov S, et al. A pathway for the metabolism of vitamin D3: Unique hydroxylated metabolites formed during catalysis with cytochrome P450scc (CYP11A1). Proceedings of the National Academy of Sciences. 2003;100 (25):14754-14759. Doi:10.1073/pnas.2336107100.
- Henao-Mejia J, Strowig T, Flavell RA. Microbiota Keep the Intestinal Clock Ticking. Cell. 2013; 153 (4):741-743. Doi:10.1016/j.cell.2013.04.043.
- Hildebrandt MA, Hoffmann C, Sherrill–Mix SA, et al. High-Fat Diet Determines the Composition of the Murine Gut Microbiome Independently of Obesity. Gastroenterology. 2009; 137 (5):1716-1724.e2. doi:10.1053/j.gastro.2009.08.042.
- Hoogerwerf WA, Hellmich HL, Cornélissen G, et al. Clock gene expression in the murine gastrointestinal tract: endogenous rhythmicity and effects of a feeding regimen. Gastroenterology. 2007; 133 (4):1250-60. doi: 10.1053/j.gastro.2007.07.009.
- Keim NL, Martin RJ. Dietary Whole Grain–Microbiota Interactions: Insights into Mechanisms for Human Health. Advances in Nutrition. 2014; 5 (5):556-557. Doi:10.3945/an.114.006536.
- Leone V, Gibbons SM, Martinez K, et al. Effects of Diurnal Variation of Gut Microbes and High-Fat Feeding on Host Circadian Clock Function and Metabolism. Cell Host & Microbe. 2015; 17 (5):681-689. Doi:10.1016/j.chom.2015.03.006.
- Ley R, Turnbaugh P, Klein S, et al. Human gut microbes associated with obesity. Nature. 2006; 444:1022-1023. Doi:10.1038/4441022a.
- Liang X, Bushman FD, FitzGerald GA. Regulation of intestinal microbiota rhythmicity. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2015; 112 (33):10479-10484. Doi:10.1073/pnas.1501305112.
- Lin MY, de Zoete MR, van Putten JPM et al. Redirection of epithelial immune responses by short-chain fatty acids through inhibition of histone deacetylases. Front. Immunol. 2015; 6:554. doi: 10.3389/fimmu.2015.00554.
- Marcinkevicius EV, Shirasu-Hiza MM. Message in a Biota: Gut Microbes Signal to the Circadian Clock. Cell Host & Microbe. 2015; 17 (5):541-543. Doi:10.1016/j.chom.2015.04.013.
- Matenchuk BA, Mandhane PJ, Kozyrsky AL. Sleep, circadian rhythm, and gut microbiota. Sleep Medicine Reviews. 2020; 53:101340. Doi:10.1016/j.smrv.2020.101340.
- Mukherji A, Kobiita A, Ye T, et al. Homeostasis in Intestinal Epithelium Is Orchestrated by the Circadian Clock and Microbiota Cues Transduced by TLRs. Cell. 2013; 153 (4):812-827. Doi:10.1016/j.cell.2013.04.020.
- Poroyko V, Carreras A, Khalyfa A, et al. Chronic Sleep Disruption Alters Gut Microbiota, Induces Systemic and Adipose Tissue Inflammation and Insulin Resistance in Mice. Sci Rep. 2016; 6,35405. Doi:10.1038/srep35405.
- Sato TK, Panda S, Miraglia LJ, et al. A Functional Genomics Strategy Reveals Rora as a Component of the Mammalian Circadian Clock. Neuron. 2004; 43 (4):527-537. Doi:10.1016/j.neuron.2004.07.018.
- Swiatecka D, Narbad A, Karyn RP, et al. The study on the impact of glycated pea proteins on human intestinal bacteria. International Journal of Food Microbiology. 2011; 145 (1):267-272. Doi:10.1016/j.ijfoodmicro.2011.01.002.
- Tahara, Y., Yamazaki, M., Sukigara, H. et al. Gut Microbiota- Derived Short Chain Fatty Acids Induce Circadian Clock Entrainment in Mouse Peripheral Tissue. Sci Rep. 2018; 1395 (8). Doi:10.1038/s41598-018-19836-7.
- Thaiss CA, Levy M, Korem T, et al. Microbiota Diurnal Rhythmicity Programs Host Transcriptome Oscillations. Cell. 2016; 167 (6): 1495-1510.e12. doi:10.1016/j.cell.2016.11.003.
- Thaiss CA, Zeevi D, Levy M, et al. Transkingdom control of microbiota diurnal oscillations promotes metabolic homeostasis. Cell. 2014; 159 (3):514-529. Doi:10.1016/j.cell.2014.09.048.
- Trompette A, Gollwitzer E, Yadava K, et al. Gut microbiota metabolism of dietary fiber influences allergic airway disease and hematopoiesis. Nat Med.2014; 20:159-166. doi:10.1038/nm.3444.
- Vegiopoulos A, Herzig S. Glucocorticoids, metabolism and metabolic diseases. Molecular and Cellular Endocrinology. 2007; 275 (1-2):43-61. Doi:10.1016/j.mce.2007.05.015.
- Vieira E, Marroquí L, Batista TM, et al. The Clock Gene Rev-erbα Regulates Pancreatic β-Cell Function: Modulation by Leptin and High-Fat Diet. Endocrinology. 2012; 153 (2):592-601. Doi:10.1210/en.2011-1595.
- Voigt RM, Forsyth CB, Green SJ, et al. Circadian Disorganization Alters Intestinal Microbiota. PLOS ONE. 2014; 9 (5): e97500. Doi:10.1371/journal.pone.0097500.
- Wachtershauser A, Loitsch SM, Stein J. PPAR-γ Is Selectively Upregulated in Caco-2 Cells by Butyrate. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2000; 272 (2):380-385. Doi:10.1006/bbrc.2000.2793.
- Wang Y, Carreras A, Lee S, et al. Chronic sleep fragmentation promotes obesity in young adult mice. Obesity. 2014; 22 (3):758-762. Doi:10.1002/oby.20616.
- Wu G, Tang W, He Y, et al. Light exposure influences the diurnal oscillation of gut microbiota in mice. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2018; 501 (1):16-23. Doi:10.1016/j.bbrc.2018.04.095.
- Zarrinpar A, Chaix A, Yooseph S, et al. Diet and Feeding Pattern Affect the Diurnal Dynamics of the Gut Microbiome. Cell Metabolism. 2014; 20 (6):1006-1017. Doi:10.1016/j.cmet.2014.11.008.
- Zhao C, Wang Y, Peng Z, et al. Subacute ruminal acidosis suppressed the expression of MCT1 in rumen of cows. J Cell Physiol. 2019; 234:11734-11745. Doi:10.1002/jcp.27829.
- Zhu L, Sawrey-Kubicek L, Beals E, et al. Human gut microbiome composition and tryptophan metabolites were changed differently by fast food and Mediterranean diet in 4 days: a pilot study. Nutrition Research. 2020; 77:62-72. Doi:10.1016/j.nutres.2020.03.005.