Влияние спиртовой вытяжки лабазника вязолистного на состояние системы крови после введения цитостатика
Автор: Аксиненко С.Г., Горбачева А.В., Пашинский В.Г.
Журнал: Сибирский онкологический журнал @siboncoj
Рубрика: Краткие сообщения
Статья в выпуске: 4 (12), 2004 года.
Бесплатный доступ
Короткий адрес: https://sciup.org/14054170
IDR: 14054170
Текст краткого сообщения Влияние спиртовой вытяжки лабазника вязолистного на состояние системы крови после введения цитостатика
Особенностью химиотерапии опухолей является малый терапевтический интервал, в этом отношении цитостатики, даже в рекомендованных для клинического применения дозировках, небезопасны для организма [1, 3]. Отсутствие строгой избирательности у антибластомных препаратов приводит к развитию целого комплекса осложнений, выраженность и клинические проявления которых зависят от биологической активности используемых цитостатиков [2]. Одним из наиболее серьезных осложнений химиотерапии является гипоплазия кроветворения. Степень и продолжительность депрессии гемопоэза варьируют при применении различных противоопухолевых препаратов [4].
Арсенал гемостимулирующих средств, имеющихся в распоряжении современной фармакологии, по ряду параметров не соответствует требованиям, предъявляемым к препаратам для использования в медицине [8]. Наиболее перспективными с точки зрения терапевтического действия, низкой токсичности и способности усиливать антибластомный эффект противоопухолевых средств являются, по-видимому, гемостимуляторы растительного происхождения.
Целью исследования нашей работы было изучить влияние спиртовой вытяжки из надземной части лабазника вязолистного Filipendula ulmaria (L.) Maxim, на восстановление процессов гемопоэза в условиях миелодепрессии, вызванной введением цитостатиков.
Материал и методы Эксперименты проводили на мышах-самцах линии СВА массой 18—20 г. Животные первой категории (конвенциальные линейные мыши) получены из коллекционного фонда НИЛ экспериментального биомоделирования СИБИРСКИЙ ОНКОЛОГИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ. 2004. №4
НИИ фармакологии ТНЦ СО РАМН (сертификат имеется). Животных содержали на обычном пищевом рационе в условиях вивария. Умерщвление мышей производили, соблюдая правила поведения работ с использованием экспериментальных животных, путем дислокации шейных позвонков [9].
Надземная часть лабазника вязолистного была собрана в окрестностях г. Томска в июле 2000 г. Настойку надземной части лабазника вязолистного готовили в соответствии с требованиями ГФ XI (1990) при следующем соотношении компонентов: надземная часть лабазника вязолистного — 10%, 40° спирт этиловый — 90%. Опытной группе настойку надземной части лабазника вязолистного в дозе 5 мл/кг вводили ежедневно внутрижелудочно через зонд за 5 дней до инъекции циклофосфана и затем продолжали вводить до окончания эксперимента. Контрольная группа животных в эквивалентном режиме получала дистиллированную воду. Б каждой группе было по б животных. Циклофос-фан вводили однократно внутрибрюшинно в 1/2 максимально переносимой дозы (МПД) -125 мг/кг. Определение величины МПД для цитостатика проводили методом пробит-анализа по Литчфилду и Вилкоксону [10]. На 2, 4—8, 11-е сут после инъекции цикло-фосфана в костном мозге бедренных костей выявляли общее количество миелокариоцитов и число ретикулоцитов в периферической крови. Определение показателей периферической крови и костного мозга осуществляли стандартными гематологическими методами [5—7]. Полученные результаты обрабатывали статистически, значимость различий между группами определяли, используя параметрический (критерий Стьюдента) и непараметрический (критерий Вилкоксона — Манна — Уитни) методы [10].
Влияние спиртовой вытяжки лабазника вязолистного на состояние системы крови после введения цитостатика
Влияние настойки лабазника вязолистного на показатели костномозгового кроветворения |
||||||
Срок исследования, сут |
Общее число ми елокари оцитов |
Незрелые НГ |
Зрелые НГ |
Лимфодные клетки |
Эритроидные клетки |
|
Фон |
12,03 ± 0,87 |
0,68 ±0,13 |
5,16 ±020 |
5,14 ±029 |
0,88 ±022 |
|
0 |
Контрольная группа |
1,32 ±021 |
— |
0,31 ±0,11 |
1,00 ±0,21 |
— |
Опытная группа |
1,63 ±021 |
— |
0,43 ±0,12 |
1,21 ±021 |
— |
|
Контрольная группа |
4,01 ±0,19 |
2,66 ±0,16 |
0,38 ±0,08 |
0,63 ± 0,05 |
0,34 ± 0J07 |
|
Опытная группа |
4,98 ±025* |
2,66 ±0,15 |
0,88 ± 0,08* |
0,83 ±0,08* |
0,60 ± 0,03* |
|
- |
Контрольная группа |
7,32 ± 022 |
2,48 ±0,18 |
3,80 ± 0,49 |
0,99 ± 0,12 |
0,05 ±0^)1 |
Опытная группа |
9,12 ±022* |
3,37 ±0,19* |
4,23 ± 0,22 |
1,35 ±0,10* |
0,15 ±0,02* |
|
Контрольная группа |
10,11 ±0,53 |
1,57 ±0,17 |
7,56 ±029 |
0,93 ± 0,08 |
0,03 ±0,01 |
|
Опытная группа |
12,21 ± 0,61* |
2,87 ±022* |
7,76 ±0,40 |
1,46 ± 0,15* |
0,13 ±0,03* |
|
7 |
Контрольная группа |
9,39 ± 020 |
1,09 ±0,14 |
6,92 ±0,48 |
1,11 ±0,16 |
0,05 ±0,01 |
Опытная группа |
12,96 ± 1,21* |
1,65 ±0,19* |
9,96 ±1,02* |
*1,23 ±023 |
0,08 ± 0,03 |
|
8 |
Контрольная группа |
10,39 ±0,62 |
0,98 ±0,14 |
8,40 ± 0,46 |
0,86 ±0,14 |
0,10 ±0,01 |
Опытная группа |
13,65 ±0,35* |
1,18 ±0,15 |
11.04 ±0,51* |
1,21 ±0,11* |
0,16 ±0,03 |
|
ц |
Контрольная группа |
7,22 ±025 |
0,52 ±0,12 |
4,28 ± 025 |
1,85±0,11 |
0,32 ±0,05 |
Опытная группа |
10,81 ± 0,60* |
0,88 ±0,10* |
6,20 ± 0,60* |
2,34 ±0,10* |
1,03 ±0,18* |
Примечание.* - различия статистически значимы по сравнению с контролем (р<0,05).
Результаты и обсуждение
У мышей, получавших циклофосфан в 1/2 МПД, развивается выраженная гемодепрессия. Так, на 2-е сут после введения цитостатика наблюдается значительное уменьшение общего количества кариоцитов по сравнению с интактной группой. Гипоплазия костного мозга была обусловлена снижением числа зрелых нейтрофильных гранулоцитов и лимфоидных клеток в 19,3 и 5 раз соответственно по сравнению с фоновыми значениями, а также эритрокарици-тов и незрелых гранулоцитов, вплоть до полного исчезновения на препаратах костного мозга (таблица). Выраженное угнетение процессов костномозгового кроветворения приводит к развитию у мышей панцитопенического состояния, характеризующегося значительным снижением на 4-е сут эксперимента ретикулоцитов и всех форм лейкоцитов в периферической крови.
Введение настойки надземной части лабазника вязолистного вызывало стимуляцию регенерации костномозгового эритро- и грануло-цитопоэза. Так, общее количество миелокари-оцитов после назначения спиртового экстракта лекарственного растения на 4—8-е, 11-е сут эксперимента оказалось достоверно выше (в 1,2— 1,5 раза) по сравнению с животными контрольной группы. Увеличение на 26—45% коли- чества костномозговых нуклеаров на 5—7-е, 11-е сут наблюдения происходило за счет стимуляции процессов восстановления числа незрелых форм нейтрофильных гранулоцитов и лимфоидных клеток (4—6, 8,11-е сут исследования) (таблица). Значительное усиление в 1,3—1,4 раза, в костном мозге пролиферации и дифференцировки незрелых нейтрофильных гранулоцитов в зрелые наблюдалось на 7—11-е сут с достоверным увеличением их выхода в периферическую кровь на 5,7,11-е сут эксперимента по сравнению с аналогичными значениями в контроле. Кроме того, на 4—6-е, 11-е сут наблюдения в костном мозге у мышей, получавших спиртовую вытяжку изучаемого растения, в 1,8—3 раза увеличивалось число эритроидных клеток. При исследовании периферического звена эритро-на у животных после назначения настойки лабазника на 7—11-е сут эксперимента было зафиксировано значительное увеличение (в 1,2— 1,8 раза) числа ретикулоцитов по сравнению с мышами, получавшими воду.
Таким образом, применение спиртовой вытяжки лабазника вязолистного после введения цитостатика позволяет значительно ускорить процессы восстановления костномозгового кроветворения и увеличить количество зрелых эритроцитов и ретикулоцитов в периферической крови.
СИБИРСКИЙ ОНКОЛОГИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ. 2004. №4 (12)
С.Г АКСИНЕНКО, А.В. ГОРБАЧЕВА, В.Г. НАШИНСКИЙ