Влияние волоконного ВКР-лазера на эритроциты крыс
Автор: Полуднякова Людмила Викторовна, Генинг Татьяна Петровна, Белозерова Лилия Алмазовна
Журнал: Ульяновский медико-биологический журнал @medbio-ulsu
Рубрика: Фундаментальная биология и медицина
Статья в выпуске: 1, 2012 года.
Бесплатный доступ
Исследовалось влияние волоконного ВКР-лазера на эритроциты крыс. Установлено, что лазерное излучение с используемыми дозами усиливает процессы липопероксидации мембран эритроцитов и стимулирует активность клеточных ферментов антиоксидантной защиты.
Эритроциты, высокоинтенсивное лазерное излучение, перекисное окисление липидов, антиоксиданты
Короткий адрес: https://sciup.org/14112793
IDR: 14112793
Текст научной статьи Влияние волоконного ВКР-лазера на эритроциты крыс
Введение. К настоящему времени лазерное излучение прочно вошло в медицинскую практику. Прежде всего это высокоинтенсивное лазерное излучение, используемое в хирургии для нанесения поверхностных и глубоких разрезов, испарения поверхностных дефектов кожи, коагуляции и карбонизации тканей, их стерилизации. Достаточно высока терапевтическая эффективность низкоинтенсивного лазерного излучения (НИЛИ), наблюдаемая при лечении самого широкого круга заболеваний. В сочетании с фотосенсибилизатором НИЛИ применяется для избирательного разрушения опухолей (фотодинамическая терапия [3]). Однако метод фотодинамической диагностики и терапии в силу ряда вполне объективных причин остается уделом единичных специализированных учреждений. В основе причин ограничения широкого использования этого метода лежат: 1) необходимость введения экзогенных фотосенсибилизаторов; 2) высокая их фототоксичность; 3) длительность периода накопления фотосенсибилизатора опухолью (24–48 часов) и длительность снижения его концентрации в здоровой ткани; 4) относительная тропность к некоторым доброкачественным опухолям; 5) возможность аллергических реакций и высокая стоимость фотосенсибилизаторов [9] ∗ .
∗ Работа поддержана ФЦП «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России 2009–2013 гг.»
В течение ряда лет защищается идея, согласно которой инфракрасный свет (λ=1264±4 нм) может напрямую возбуждать молекулы кислорода в биологических системах и тем самым вызывать регулирование метаболизма или даже гибель клеток («свето-кислородный эффект») [4; 5]. Исследования в этом направлении основываются на гипотезе профессора Р.В. Амбарцумяна о механизме генерации синглетного кислорода при возбуждении линий поглощения молекулярного кислорода [1].
Для подтверждения гипотезы была проведена серия экспериментов на суспензиях эритроцитов, микробах, клеточных культурах опухолей и солидных опухолях животных [4; 5; 6; 7]. Авторы отмечают, что наиболее высокая биологическая активность лазерного воздействия, особенно на опухоли, наблюдается на длине волны 1268 нм. Для получения устойчивого цитотоксического эффекта требуется увеличение плотности импульсной мощности [7]. Полученные данные являются обоснованием для совершенно нового метода лечения онкологических заболеваний – прямой фотохимической деструкции опухолей без использования экзогенных сенсибилизаторов.
Для создания мощных источников возбуждения синглетного кислорода наиболее простым представляется ВКР-преобразова-ние излучения иттербиевого волоконного лазера [8]. Эффект вынужденного комбинаци- онного рассеяния (ВКР) – нелинейный эффект, который становится сильным в протяженных волоконных световодах за счёт концентрации интенсивного излучения на большой длине [2].
Научным центром волоконной оптики РАН совместно с Ульяновским государственным университетом разработан уникальный непрерывный иттербиевый волоконный ВКР-лазер с рабочей мощностью до 5,5 Вт и длиной волны 1,26–1,27 мкм. Его характеристики должны помочь реализовать идею прямой фотодинамической терапии [8].
Для эффективного и безопасного лечения необходимы четкие представления о механизме действия этого физического фактора на биологическую систему. Эффекты лазерного излучения часто изучаются на стандартном модельном объекте – эритроцитах. О состоянии их мембран можно судить по системе «перекисное окисление липидов (ПОЛ) – антиоксиданты (АО)». Литературных данных, посвященных воздействию ВКР-лазеров на эритроциты, мы не обнаружили.
Цель исследования. Оценка уровня ПОЛ и активности ферментов антиоксидантной системы защиты в эритроцитах при высокоинтенсивном непрерывном лазерном воздействии.
Материалы и методы. Исследования проводились на эритроцитах белых крыс. Рабочая взвесь эритроцитов ресуспендирова-лась в 0,85 % NaCl в соотношении 1:1 и помещалась в пластиковую кювету. Облучение велось волоконным ВКР-лазером (λ=1265 нм) непрерывно с максимальной выходной мощностью 5,5 Вт. При этом дозы, получаемые суспензией эритроцитов составили: 7,8; 10,8; 39; 54; 78; 108; 156 и 216 Дж/см2. Интенсивность ПОЛ оценивалась спектрофотометрически с учетом разведения (1:100). В эритроцитах определяли концентрацию малонового диальдегида (МДА) по Л.И. Андреевой (1988); активность каталазы, глутатион-S-трансферазы (ГТ) по А.И. Карпищенко (1999) и супероксиддисмутазы (СОД) по Nishikimi (1972). В надосадочной жидкости гемоглобинцианидным методом определялся уровень гемоглобина. Статистическая значимость полученных результатов оценивалась с помощью критерия Стьюдента (в Stata 6.0). Различия между группами считали достоверными при р<0,05.
Результаты и обсуждение. Результаты представлены в табл. 1. Важным показателем функционального состояния мембран клеток является интенсивность процессов липопе-роксидации в них. Нами было изучено влияние высокоинтенсивного непрерывного облучения на процессы липопероксидации мембран эритроцитов по уровню МДА. Проведенные исследования показали, что значения МДА при лазерном облучении в дозах 7,8, 39 и 78 Дж/см2 остаются на уровне контрольных значений. При других используемых нами параметрах облучения наблюдается выраженное усиление липопероксидации эритроцитарных мембран, о чем свидетельствует достоверно значимое повышение МДА по сравнению с контролем.
Высокоинтенсивное лазерное излучение активизировало ферментативное звено антиоксидантной защиты. Наиболее выраженным и достоверным оказалось повышение уровня активности СОД, катализирующей дисмута-цию супероксида в кислород и пероксид водорода. При этом динамика дозозависимого изменения активности фермента носила волнообразный характер. Активность глутатион-S-трансферазы эритроцитов также возрастает при всех используемых дозах высокоинтенсивного ВКР-лазерного облучения. При этом уровень данного фермента постепенно нарастает и достигает максимума при дозе воздействия 39 Дж/см2, а затем постепенно снижается, достигая контрольного уровня при дозе 216 Дж/см2. В результате исследования было установлено, что облучение ВКР-лазером при дозе 7,8 Дж/см2 не активизировало каталазу. Более высокие дозы высокоинтенсивного лазерного облучения вызывают повышение активности данного антиоксидантного фермента.
Возможно, в инициации наблюдаемого свободно-радикального окисления участвует синглетный кислород, образовавшийся в результате прямой фотогенерации:
- 'O2 ('Д,,г = 0) ^ 3O2 (’s8> = 0) +
Таблица 1
Состояние системы «ПОЛ – АО» в эритроцитах при воздействии ВКР-лазером
Доза излучения (Дж/см2) |
МДА (мкмоль/л) |
Каталаза (ммоль/мин·л) |
ГТ (ммоль/ мин·л) |
СОД (усл. ед/л) |
Гемоглобин (г/л) |
Контроль |
152,15±11,41 |
9,25±0,73 |
0,033±0,007 |
0,421±0,048 |
1,57±0,13 |
7,8 |
150,35±8,93 |
9,06±0,71 |
0,041±0,004 |
1,733±0,330* |
3,35±0,53* |
10,8 |
192,38±8,98* |
11,57±0,52* |
0,046±0,007* |
1,357±0,405* |
4,15±0,47* |
39 |
156,35±12,25 |
11,36±1,18 |
0,057±0,005* |
1,858±0,494* |
3,55±0,32* |
54 |
184,16±5,76* |
12,32±0,57* |
0,050±0,006* |
1,653±0,387* |
4,20±0,54* |
78 |
148,91±12,92 |
10,91±0,91 |
0,048±0,005 |
2,032±0,537* |
3,76±0,75* |
108 |
221,57±9,63* |
10,99±0,63 |
0,047±0,004* |
1,207±0,289* |
4,30±0,46* |
156 |
208,91±11,71* |
15,10±0,97* |
0,050±0,002 |
2,033±0,460* |
2,92±0,38* |
216 |
215,81±15,19* |
10,89±0,60 |
0,034±0,010 |
1,410±0,336* |
3,31±0,51* |
Примечание. * – различия с контрольной группой статистически значимы (р<0,05).
При развитии фотоотклика клетки происходит смена трех последовательных стадий, которые при достаточно большой дозе воздействия проявляются последовательно одна за другой. Реакция клетки на воздействие облучения начинается стереотипным возбуждением и проявляется в синхронном увеличении мембранной лабильности. Продолжающееся облучение приводит к нарастанию в клетке окисления, что вынуждает клетку перейти к активной самозащите (ферментативная борьба с окислением молекулярных структур). При возрастании фотодинамической нагрузки наступает третья фаза фотоотклика клетки – повреждение системы ионного транспорта и осмотическое набухание клетки. В результате уменьшается концентрация всех молекул и тормозятся биохимические процессы. Продолжающееся воздействие приводит к критическому набуханию клетки и наступает ее разрыв [4].
О повреждении мембран эритроцитов при лазерном воздействии свидетельствует достоверное повышение уровня гемоглобина в надосадочной жидкости. Следует отметить небольшой спад уровня гемоглобина в надосадке при дозе облучения 156 и 216 Дж/см2 по сравнению с более низкими дозами воздействия, что может быть связано с термиче- ской денатурацией гемоглобина при данных режимах воздействия [9].
Заключение. Воздействие высокоинтенсивного непрерывного лазерного излучения с используемыми параметрами усиливает процессы липопероксидации мембран эритроцитов и стимулирует активность ферментов антиоксидантной защиты.
-
6. Иванов, А.В. Физические основы лазерных методов в онкологии : дис. … д-ра физ.-мат. наук / А.В. Иванов. – М., 2003. – 359 c.
-
7. Корси, Л.В. Лазерный способ фотохимической деструкции опухолей без экзогенных сенсибилизаторов / Л.В. Корси, В.Г. Соколов // Лазерно-оптические системы и технологии : сб. ст. – М., 2009. – С. 101–106.
-
8. Курков, А.С. Волоконный ВКР-лазер для прямой фотодинамической терапии / А.С. Курков. – Режим доступа : phch.mrsu.ru/2009-2/pdf/2Kurkov.pdf.
-
9. Прокопьев, В.Е. Биофизические механизмы воздействия низкоинтенсивного лазерного излучения на биологические ткани и оптические методы диагностики их состояния : дис. … д-ра физ.-мат. наук / В.Е. Прокопьев. – Томск, 2004. – 282 с.
-
10. Ямайкина, И.В. Денатурация гемоглобина – первая стадия термогемолиза эритроцитов / И.В. Ямайкина, Е.А. Черницкий // Биофизика. – 1989. – Т. 34, №4. – С. 656–659.
THE EFFECT OF FIBER RAMAN-LASER ON ERYTHROCYTES OF RATS
L.V. Poludnyakova1, T.P. Gening1, L.A. Belozerova2
1Ulyanovsk State University, 2Ulyanovsk State Pedagogical University
Список литературы Влияние волоконного ВКР-лазера на эритроциты крыс
- Амбарцумян, Р.В. Лазерная фотохимическая деструкция злокачественных опухолей без экзогенных сенсибилизаторов/Р.В. Амбарцумян, В.И. Кишко, В.Г. Соколов//V Международный форум «Высокие технологии ХХI века». -М., 2004. -С. 339.
- Бабин, С.А. Волоконные лазеры: достижения и перспективы/С.А. Бабин//Наука Сибири. Еженедельная газета сибирского отделения РАН. -№50 (2785). 23 декабря 2010 г.
- Владимиров, Ю.А. Лазерная терапия: настоящее и будущее/Ю.А. Владимиров//Соросовский образовательный журн. -1999. -№12. -С. 2-8.
- Захаров, С.Д. Светокислородный эффект в клетках и перспективы его применения в терапии опухолей/С.Д. Захаров, А.В. Иванов//Квантовая электроника. -1999. -№9. -С. 192-214.
- Захаров, С.Д. Структурные перестройки в водной фазе клеточных суспензий и белковых растворов при светокислородном эффекте/C.Д. За-харов и др.//Квантовая электроника. -2003. -Т. 33, №3. -С. 149-162.
- Иванов, А.В. Физические основы лазерных методов в онкологии: дис. … д-ра физ.-мат. наук/А.В. Иванов. -М., 2003. -359 c.
- Корси, Л.В. Лазерный способ фотохимической деструкции опухолей без экзогенных сенсибилизаторов/Л.В. Корси, В.Г. Соколов//Лазерно-оптические системы и технологии: сб. ст. -М., 2009. -С. 101-106.
- Курков, А.С. Волоконный ВКР-лазер для прямой фотодинамической терапии/А.С. Курков. -Режим доступа: phch.mrsu.ru/2009-2/pdf/2Kurkov.pdf.
- Прокопьев, В.Е. Биофизические механизмы воздействия низкоинтенсивного лазерного из-лучения на биологические ткани и оптические методы диагностики их состояния: дис. … д-ра физ.-мат. наук/В.Е. Прокопьев. -Томск, 2004. -282 с.
- Ямайкина, И.В. Денатурация гемоглоби-на -первая стадия термогемолиза эритроцитов/И.В. Ямайкина, Е.А. Черницкий//Биофизика. -1989. -Т. 34, №4. -С. 656-659.