Возрастные изменения секреторной функции поджелудочной железы и микрофлоры кишечника у цыплят родительских форм и гибридов мясных кур

Автор: Егоров И.А., Вертипрахов В.Г., Грозина А.А., Лаптев Г.Ю., Никонов И.Н., Новикова Н.И., Ильина Л.А., Йылдырым Е.А., Филиппова В.А., Дубровин А.В., Манукян В.А., Ленкова Т.Н.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Птицеводство: наука и технологии

Статья в выпуске: 4 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Пищеварение у птицы характеризуется высокой ферментативной активностью. Определенная роль в переваривании трудногидролизуемых компонентов корма отводится микрофлоре в слепых отростках и толстом отделе кишечника. Целью настоящей работы было изучение эмбриональных и постэмбриональных ферментативных и микробных процессов в кишечнике мясных кур исходных линий Б5 (корниш), Б9 (плимутрок) и их гибридов (Б59, кросс Смена 8) селекции СГЦ «Смена» (Россия). Результаты научно-хозяйственного опыта (виварий ВНИТИП) показали, что в эмбриональный период развития мясных кур гибриды характеризуется наличием амилолитической и липолитической активности в гомогенате ткани эмбриона (7-е сут) и ткани кишечника и поджелудочной железы (14-е сут). У цыплят в возрасте 1 сут отмечалась высокая активность панкреатических ферментов в ткани поджелудочной железы, причем в начале постэмбриогенеза показатели у гибридов и родительских линий существенно не различались. В проявлении внешнесекреторной функции поджелудочной железы установили наличие двух периодов: первый (1-14-е сут) был обусловлен интенсивным развитием ее массы и становлением пищеварительного аппарата, второй (15-35-е сут) характеризовался физиологической зрелостью и адекватным количеством панкреатических пищеварительных ферментов, вырабатываемых в соответствии с качеством корма. У амилазы и протеаз активность в плазме крови имела тенденцию уменьшаться с возрастом (в первом случае отмечали статистически значимое снижение к 35-м сут во всех группах, во втором - у гибридов и плимутроков), у липазы - проявляла обратную динамику (волнообразное увеличение активности во всех группах к 35-м сут, у гибридов и цыплят корниш - статистически значимое) (Р ≤ 0,05). Доля целлюлозолитических бактерий достигала высоких значений к 14-м сут, причем между родительскими линиями и гибридами в этом возрасте существенных различий не наблюдали (50,79±1,84 % у гибридов, 50,84±2,32 и 53,23±2,47 % - у отцовской и материнской линий), но к 35-суточному возрасту у гибридов она снижалась с 50,80±1,84 до 20,30±0,85 % (на 60,0 %). У цыплят родительских линий количество целлюлозолитических бактерий изменялось волнообразно, и в 35-суточном возрасте их доля составила у плимутроков 41,00±1,87 %, у породы корниш - 44,80±2,27 %. Полученные данные свидетельствуют о том, что между активностью протеолитических ферментов поджелудочной железы и представленностью целлюлозолитических бактерий существует отрицательная корреляция. Наиболее сильную отмечали у микроорганизмов группы клостридий (для цыплят корниш, плимутроков и гибридов r соответственно -0,64; -0,83 и -0,64). Доля лактобактерий, которые участвуют в ферментации корма, положительно коррелировала с активностью всех панкреатических ферментов у гибридов и плимутроков (для амилазы, липазы и протеаз r соответственно 0,71; 0,56; 0,83 и 0,60; 0,46; 0,45). Имелась положительная корреляция между активностью практически всех панкреатических ферментов и развитием условно-патоген-ной и патогенной микрофлоры - энтеробактерий (для амилазы, липазы и протеаз r у гибридов соответственно 0,65; 0,59 и 0,68; у цыплят корниш - 0,34; 0,68 и 0,64), стафилококков (у цыплят корниш r = 0,46 для протеаз, у плимутроков r = 0,70 для амилазы и r = 0,91 для протеаз), кампилобактерий (у гибридов r = 0,86 для протеаз) и фузобактерий (у гибридов для амилазы и протеаз r = 0,41 и r = 0,90, у цыплят корниш для липазы и протеаз r = 0,63 и r = 0,83, у плимутроков для амилазы и протеаз r = 0,99 и r = 0,92). Таким образом, интенсивное развитие особей обусловлено активностью пищеварительных ферментов, которая взаимосвязана с количественным и качественным составом микробиоты кишечника. Наиболее критичными периодами развития цыплят по анализируемым показателям следует считать эмбриогенез и начальный этап постэмбриогенеза.

Еще

Мясные куры, бройлеры, плимутрок, корниш, онтогенез, внешнесекреторная функция поджелудочной железы, микрофлора желудочно-кишечного тракта цыплят, панкреатические ферменты в плазме крови

Короткий адрес: https://sciup.org/142214068

IDR: 142214068   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.4.757rus

Список литературы Возрастные изменения секреторной функции поджелудочной железы и микрофлоры кишечника у цыплят родительских форм и гибридов мясных кур

  • Torok V.A., Hughes R.J., Mikkelsen L.L., Perez-Maldonado R., Balding K., MacAlpine R., Percy N.J., Ophel-Keller K. Identification and characterization of potential performance-related gut microbiotas in broiler chickens across various feeding trials. Appl. Environ. Microbiol., 2011,77(17): 5868-5878 ( ) DOI: 10.1128/AEM.00165-11
  • Sun H., Tang J.W., Yao X.H., Wu Y.F., Wang X., Feng J. Effects of dietary inclusion of fermented cottonseed meal on growth, cecal microbial population, small intestinal morphology, and digestive enzyme activity of broilers. Trop. Anim. Health. Prod., 2013, 45: 987-993 ( ) DOI: 10.1007/s11250-012-0322-y
  • Stanley D., Denman S.E., Hughes R.J., Geier M.S., Crowley T.M., Chen H., Haring V.R., Moore R.J. Intestinal microbiota associated with differential feed conversion efficiency in chickens. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2012, 96: 1361-1369 ( ) DOI: 10.1007/s00253-011-3847-5
  • Scupham A.J. Campylobacter colonization of the Turkey intestine in the context of microbial community development. Appl. Environ. Microbiol., 2009, 75(11): 3564-3571 ( ) DOI: 10.1128/AEM.01409-08
  • Alemka A., Whelan S., Gough R., Clyne M., Gallagher M.E., Carrington S.D., Bourke B. Purified chicken intestinal mucin attenuates Campylobacter jejuni pathogenicity in vitro. J. Med. Microbiol., 2010, 59: 898-903 ( ) DOI: 10.1099/jmm.0.019315-0
  • Callaway T.R., Edrington T.S., Anderson R.C., Harvey R.B., Genovese K.J., Kennedy C.N., Venn D.W., Nisbet D.J. Probiotics, prebiotics and competitive exclusion for prophylaxis against bacterial disease. Anim. Health. Res. Rev., 2008, 9: 217-225 ( ) DOI: 10.1017/S1466252308001540
  • Kerr A.K., Farrar A.M., Waddell L.A., Wilkins W., Wilhelm B.J., Bucher O., Wills R.W., Bailey R.H., Varga C., McEwe S.A. A systematic review-meta-analysis and meta-regression on the effect of selected competitive exclusion products on Salmonella spp. prevalence and concentration in broiler chickens. Prev. Vet. Med., 2013, 111: 112-125 ( ) DOI: 10.1016/j.prevetmed.2013.04.005
  • Brisbin J.T., Gong J., Orouji S., Esufali J., Mallick A.I, Parvizi P., Shewen P.E., Sharif S. Oral treatment of chickens with lactobacilli influences elicitation of immune responses. Clin. Vaccine Immunol., 2011, 18: 1447-1455 ( ) DOI: 10.1128/CVI.05100-11
  • Шкурин А. Пребиотический эффект НПС-ферментов. Животноводство России, 2016, 12: 18-20.
  • Ленкова Т.Н., Егорова Т.А., Манукян В.А., Фисинин В.И., Егоров И.А., Лаптев Г.Ю., Никонов И.Н., Ильина Л.А., Йылдырым Е.А., Филипова В.А., Новикова Н.И. Сравнительная оценка влияния пробиотиков дрожжевой и бактериальной природы на продуктивность и микрофлору кишечника цыплят-бройлеров. Птица и птицепродукты, 2016, 6: 39-42.
  • Svihus B., Choct M., Classen H.L. Function and nutritional roles of the avian caeca: a review. World´s Poultry Science Journal, 2013, 69: 249-263 ( ) DOI: 10.1017/S004393391300028
  • Qaisrani S.N., Van Krimpen M.M., Kwakkel R.P., Verstegen M.W.A., Hendriks W.H. Dietary factors affecting hindgut protein fermentation in broilers: a review. World´s Poultry Science Journal, 2015, 71: 139-159 ( ) DOI: 10.1017/S0043933915000124
  • Zdunczyk Z., Jankowski J., Kaczmarek S., Juskiewicz J. Determinants and effects of postileal fermentation in broilers and turkeys. Part 1: Gut microbiota composition and its modulation by feed additives. World´s Poultry Science Journal, 2015, 71: 37-47 ( ) DOI: 10.1017/S0043933915000045
  • Методика проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы. Молекулярно-генетические методы определения микрофлоры кишечника/Под ред. В.И. Фисинина. Сергиев Посад, 2013.
  • Батоев Ц.Ж. Фотометрическое определение активности протеолитических ферментов в поджелудочной железе, соке по уменьшению концентрации казеина. Сб. науч. тр. Бурятского СХИ (Улан-Удэ), 1971, 25: 122-126.
  • Mikhailova A.G., Khairullin R.F., Demidyuk I.V., Kostrov S.V., Grinberg N.V., Burova T.V., Grinberg V.Y., Rumsh L.D. Cloning, sequencing, expression, and characterization of thermostability of oligopeptidase B from Serratia proteamaculans, a novel psychrophilic protease. Protein Expression and Purification, 2014, 93: 63-76.
  • Кырылив Б.Я., Гунчак А.В. Активность гидролитических ферментов органов пищеварительного тракта кур в онтогенезе. Вестник Сумского национального аграрного университета, 2016, 5: 170-174.
  • Стрельцов В.А., Ткачева Н.С. Постинкубационное развитие поджелудочной железы у яичных кур. Вестник Брянской ГСХА, 2012, 5: 25-29.
  • Сомова О.В. Морфометрические показатели экзокринного отдела поджелудочной железы кур в разные возрастные периоды. Ученые записки УО ВГАВМ, 2012, 48(1): 142-145.
  • Егоров И.А., Вертипрахов В.Г., Ленкова Т.Н., Манукян В.А., Грозина А.А., Егорова Т.А. Возрастные изменения панкреатических ферментов в организме цыплят-бройлеров. Птицеводство, 2017, 2: 23-29.
  • Вертипрахов В.Г., Грозина А.А., Долгорукова А.М. Активность ферментов поджелудочной железы у цыплят-бройлеров на разных этапах пищеварения. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(4): 509-515 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.4.509rus
  • Buzała M., Janicki B., Czarnecki R. Consequences of different growth rates in broiler breeder and layer hens on embryogenesis, metabolism and metabolic rate: а review. Poultry Sci., 2015, 94(4): 728-733 ( ) DOI: 10.3382/ps/pev015
  • Hermans D., Pasmans F., Messens W., Martel A., Van Immerseel F., Rasschaert G., Heyndrickx M., Van Deun K., Haesebrouck F. Poultry as a host for the zoonotic pathogen Campylobacter jejuni. Vector Borne Zoonotic Dis., 2012, 12: 89-98 ( ) DOI: 10.1089/vbz.2011.0676
  • Seys S.A., Sampedro F., Hedberg C.W. Assessment of meat and poultry product recalls due to Salmonella contamination: product recovery and illness prevention. J. Food Prot., 2017, 12: 1288-1292 ( ) DOI: 10.4315/0362-028X.JFP-16-424
Еще
Статья научная