Введение в культуру и микроклональное размножение жимолости съедобной in vitro

Автор: Хоружева Т.И., Боровая С.А., Богинская Н.Г.

Журнал: Овощи России @vegetables

Рубрика: Селекция, семеноводство и биотехнология растений

Статья в выпуске: 1 (75), 2024 года.

Бесплатный доступ

Жимолость съедобная - популярная плодово-ягодная культура. Её лечебные и профилактические свойства обусловлены наличием в плодах высокого содержания биологически активных веществ. В отличие от традиционных способов размножения жимолости, размножение in vitro позволяет получить большое количество качественного посадочного материала в короткие сроки. Исследования проводили на базе лаборатории селекционно-генетических исследований полевых культур ФНЦ агробиотехнологий Дальнего Востока им. А.К. Чайки. Объект исследования - сорт жимолости Подарок амурчанам селекции Дальневосточного государственного аграрного университета. Стерилизация материала проводилась согласно методическим указаниям ВИР с модификациями. В качестве стерилизующих агентов использовали препараты в следующей последовательности: раствор ПАВ 5%, фунгицид Фундазол, КЭ (1 г/л), свежеприготовленный бытовой отбеливатель АСЕ, разбавленный дистиллированной водой в соотношении 1:9 (0,50% содержание NaOcl в рабочем растворе), 70% этанол. Первичные экспланты пассировали на питательную среду с минеральной основой по Мурасиге-Скуга, содержащую 20 г/л сахарозы и 6 г/л агара (далее - МС), дополненную 6-бензиламино-пурином (БАП) в концентрации 0,5 мг/л. рН среды доводили до 5,7-5,8 с помощью 1 н КОН. Субкультивирование эксплантов в виде микрочеренков с 1-2 междоузлиями осуществляли на питательную среду МС, дополненную БАП 0,5 мг/л. Морфометрические показатели определяли на 35-е сутки культивирования растений. Исследование показало, что стерилизации эксплантов с использованием фундазола 1 г/л и АСЕ, разбавленным дистиллированной водой в соотношении 1:9, позволяет получить достаточное количество жизнеспособных микроклонов (50%). Удаление листовых пластинок при проведении микрочеренкования жимолости приводит к резкому снижению приживаемости и, в большинстве случаев, - к гибели микроклонов (процент гибели 98,7%). Культивирование микрочеренков на МС, дополненной БАП в концентрации 0,5 мг/л, способствует нормальному росту и развитию регенерантов жимолости (среднее значение коэффициента размножения 4,65).

Еще

Жимолость, микроклональное размножение, in vitro, морфометрические показатели, fusarium sp

Короткий адрес: https://sciup.org/140304480

IDR: 140304480   |   DOI: 10.18619/2072-9146-2024-1-55-60

Список литературы Введение в культуру и микроклональное размножение жимолости съедобной in vitro

  • Svarcova I., Heinrich J., Valentova K. Berry fruits as a source of biologically active compounds: The case of Lonicera caerulea. Biomed Pap Med Fac Univ Palacky Olomouc Czech Repub. 2007;151(2):163-74. https://doi.org/10.5507/bp.2007.031.
  • Miyashita T., Ohashi T., Shibata F., Araki H., Hoshino Y. Plant regeneration with maintenance of the endosperm ploidy level by endosperm culture in Lonicera caerulea var emphyllocalyx. Plant Cell Tiss Org. 2009;(98):291-301.
  • Семенова Н.А. Совершенствование технологии размножения in vitro, условий адаптации и доращивания жимолости съедобной: автореф. дис. … канд. с.-х. наук. М., 2016. 18 с.
  • Шипунова А.А. Микроклональное размножение малины и жимолости. Плодоводство и ягодоводство России. 2009;22(2):381-384. EDN KXWPDB.
  • Высоцкий В.А. Морфогенез и клональное микроразмножение растений. Культура клеток растений и биотехнология. М., 1986. С. 91-102.
  • Куклина А.Г., Семерикова Е.А. Возможности размножения перспективных сортов жимолости синей. Актуальные проблемы садоводства России и пути их решения. 2007. С.163-164.
  • Муратова С.А., Янковская М.Б., Шорников Д.Г. Особенности введения в культуру in vitro плодовых и ягодных растений. Плодоводство. Ин-т плодоводства Нац. акад. наук Беларуси. Самохваловичи. 2005;17(2):182-185.
  • Сорокин А.А. Размножение жимолости в культуре in vitro. Состояние и перспективы развития нетрадиционных садовых культур: материалы междунар. науч.-метод. конф. 12-14 авг. 2003 г., Мичуринск. Воронеж: Кварта, 2003. С. 119-124.
  • Макаров С.С., Кузнецова И.Б., Смирнов В.С. Влияние способов стерилизации и типов эксплантов жимолости синей на их жизнеспособность в условиях in vitro. Лесохозяйственная информация. 2018;(2):96-101. https://doi.org/10.24419/LHI.2304-3083.2018.2.10. EDN XQFWKT.
  • Китапбаева А.А., Шарипханова А.С., Игисинова Ж.Т., Карменова Б.К., Кабатаева Ж.К. Введение в культуру in vitro и микроклональное размножение двух видов жимолости. Science and world. 2017;9-2(49):16-18. EDN NXSLXX.
  • Krupa-Makiewicz M., Ochmian I. Propagation of Blue Honeysuckles (Lonicera caerulea L.) in In Vitro Culture. Journal of Basic & Applied Sciences. 2014;(10):164-169.
  • Dziedzic E. Propagation of blue honeysuckle (Lonicera caerulea var. kamtscatica Pojark.) in in vitro culture. J. Fruit and Ornamental Plant Res. 2008;(16):93-100.
  • Sedlák J., Paprštein F. In vitro propagation of blue honeysuckle. Hort. Sci. (PRAGUE). 2007;(34):129-131.
  • Mihaljeviс I., Tomas V., Vukovic D., Dugalic K. Propagation of three Blue Honeysuckle (L. caerulea) cultivars in in vitro culture. Pomologia croatica. 2019;(23):41-48.
  • Osburn L.D., Yang X., Li Y., Cheng Z-M. Micropropagation of Japanese Honeysuckle (Lonicera japonica) and Amur Honeysuckle (L. maackii) by Shoot Tip Culture. Journal of Environmental Horticulture. 2009;(27):195-199.
  • Fira A., Clapa D., Cristea V., Plopa C. In vitro propagation of Lonicerakamtschatica. Agriculture - Science and Practice. 2014;1-2(89-90):90-99
  • Orlova N.D., Molkanova O.I., Koroleva O.V. Improvement of clonal micropropagation technique of promising Lonicera caerulea L. cultivars. IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science. 2021;941(1):012030. https://doi.org/10.1088/1755-1315/941/1/012030.
  • Karhu S.T. Axillary shoot proliferation of blue honeysuckle. Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 1997;(48):195-201. https://doi.org/10.1023/A:1005842022064
  • Маркова М.Г., Сомова Е.Н. Оптимизация этапа введения в культуру ткани в клональном микроразмножении жимолости синей. Вестник Марийского государственного университета. Серия: Сельскохозяйственные науки. Экономические науки. 2016;2(3(7):30-35. EDN WNCRHN.
  • Муратова С.А., Янковская М.Б., Шорников Д.Г., Особенности введения в культуру in vitro плодовых и ягодных растений. Плодоводство: Ин-т плодоводства Нац. акад. наук Беларуси. Самохваловичи. 2005;17(2):182-185.
  • Zapolsky Ya.S., Medvedeva T.V., Natalchuk T.A., Bublyk M.O. Propagation of edible honeysuckle (Lonicera edulis turcz) in in vitro conditions. Agricultural science and practice. 2018;5(2):18-26.
  • Матушкина О.В., Пронина И.Н. Клональное микроразмножение плодовых и ягодных культур в системе производства высококачественного посадочного материала. Научные основы эффективного садоводства: Труды ВНИИС им. И.В. Мичурина. Воронеж: Кварта, 2006. С. 327-342.
  • Шорников Д.Г., Брюхина С.А., Муратова С.А. [и др.] Оптимизация условий культивирования in vitro ягодных и декоративных культур. Вестник Тамбовского университета. Серия: Естественные и технические науки. 2010;15(2):640-645. EDN MSOGXL.
  • Georges D., Chenieux J.C., Ochatt S.J. Plant regeneration from aged-callus of the woody ornamental species Lonicera japonica cv. Hall’s Prolific. Plant Cell Rep. 1993;(13):91-94.
  • Cambecеdes J., Duron M., Decourtye L. Adventitious bud regeneration from leaf explants of the shrubby ornamental honeysuckle, Lonicera nitida Wils cv. Maigrün: effects of thidiazuron and 2,3,5-triiodobenzoic acid. Plant Cell Rep. 1991;(10):471-474.
  • Ochatt S.J. Requirements for plant regeneration from protoplasts of the shrubby ornamental honeysuckle, Lonicera nitida cv. Maigrün. Plant Cell, Tissue Organ Cult. 1991;(25):161-167
  • Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Т.1. «Сорта растений» (официальное издание). М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2022. С. 646.
  • Дунаева С.Е., Пендинен Г.И., Антонова О.Ю., Швачко Н.А., Ухатова Ю.В., Шувалова Л.Е., Волкова Н.Н., Гавриленко Т.А. Сохранение вегетативно размножаемых культур в in vitro и крио коллекциях: метод. yказания. 2-е изд, расширенное и доп. Спб., 2017. С 71.
  • Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tussue cultures. Physiol. Plant. 1962;(15):473-497. https://doi.org/10.1098/rstb.2000.0713.
  • Мацишина Н.В., Фисенко П.В., Ермак М.В., Собко О.А., Волков Д.И., Балеевских А.Г. Пища как фактор плодовитости, продолжительности развития и изменения морфометрических показателей у Henosepilachna vigintioctomaculata (Motschulsky). Овощи России. 2021;(5):81-88. https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-5-81-88. EDN ZWRISM.
  • Авксентьева О.А., Петренко В.А. Биотехнология высших растений: культура in vitro: учеб.-метод. пособие. Харьков: ХНУ им. В.Н. Каразина, 2011. 60 с.
  • Hammer O., Harper D.A.T., Ryan P.D. PAST: Paleontological Statistics Software Package for Education and Data Analysis. Palaeontologia Electronica. 2001;4(1):1-9. https://palaeoelectronica.org/2001_1/past/past.pdf (accessed: 10.01.2024).
  • Макаров С.С., Калашникова Е.А. Влияние состава питательной среды на клональное микроразмножение жимолости съедобной. Плодоводство и ягодоводство России. 2017;(49):217-222. EDN YZJZPL
Еще
Статья научная