Выявление антител, специфичных к энтеротоксинам стафилококков, в сыворотке крови и молозиве коров

Автор: Лоскутова И.В., Щанникова М.П., Фурсова К.К., Шепеляковская А.О., Артемьева О.А., Никанова Д.А., Зиновьева Н.А., Бровко Ф.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринарная вирусология, иммунология

Статья в выпуске: 6 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Мастит - распространенное инфекционное заболевание молочного скота, наносящее существенный экономический ущерб животноводству и влияющее на качество молочной продукции. Основной возбудитель мастита крупного рогатого скота (КРС) - золотистый стафилококк ( Staphylococcus aureus ). Заражение молочной железы S. aureus остается серьезной проблемой для всех стран мира. Болезнетворные свойства S. aureus и устойчивость в организме хозяина определяются набором токсинов. Микроорганизм продуцирует патогенные факторы, которые оказывают значительно влияние на течение заболевания. В настоящее время не существует эффективного способа борьбы с маститом, поэтому исследования иммунного статуса коров по отношению к энтеротоксинам стафилококка актуальны. Цель нашей работы заключалась в выявлении и определении титров антител, специфичных к наиболее распространенным энтеротоксинам стафилококков A, B, C, D, E, G, H, I и TSST, в сыворотке крови и молозиве коров ( Bos taurus taurus ). Объектом исследований были животные голштинизированной черно-пестрой породы второй лактации ( n = 47, 2016 год), которые находились на беспривязном содержании в хозяйстве Калужской области и 2 раза в год подвергались иммунизации вакциной Mastivak («Laboratorios Ovejero S.A.», Испания). Кровь отбирали из хвостовой вены (с последующим центрифугированием для осаждения форменных элементов), молозиво и молоко - непосредственно после доения из всех долей вымени в стерильные флаконы с соблюдением правил асептики. Наличие и титр Ig к энтеротоксинам A, B, C, D, E, G, H, I и TSST стафилококков оценивали методом непрямого иммуноферментного анализа. В 53,19 % образцов сывороток детектировались антитела класса G (IgG), специфичные к SEH. Антитела к TSST обнаружены в 4,26 % образцов, при этом их титр был самым низким по сравнению с антителами к другим энтеротоксинам. Антитела к SEB, SED, SEE, SEG, SEI и TSST вывили соответственно у 10,64; 23,47; 31,91; 29,78; 34,04 и 4,26 % животных. Анализ секретов молочной железы показал наличия в молозиве IgA к SEH, SEG и SEI. IgA к SEA, SEB, SEC, SED, SEE, TSST обнаружены не были. В молоке антитела к энтеротоксинам не выявляли. Таким образом, в сыворотке крови и молозиве клинически здоровых коров голштинизированной черно-пестрой породы установлено наличие антител к стафилококковым энтеротоксинам SEA, SEB, SEC, SED, SEE, SEG, SEH, SEI и TSST, то есть животные могли иметь контакт со стафилококками, продуцирующими такие типы токсинов.

Еще

Мастит коров, кровь, молозиво, энтеротоксины, антитела против энтеротоксинов

Короткий адрес: https://sciup.org/142214108

IDR: 142214108   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.6.1273rus

Список литературы Выявление антител, специфичных к энтеротоксинам стафилококков, в сыворотке крови и молозиве коров

  • Ruegg P.L. Investigation of mastitis problems on farms. Vet. Clin. N. Am.: Food Anim. Pract., 2003, 1: 47-73 ( ) DOI: 10.1016/S0749-0720(02)00078-6
  • Ranjan R., Swarup D., Patra R.C., Nandi D. Bovine protothecal mastitis: a review. CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources, 2006, 1: 1-7 ( ) DOI: 10.13140/RG.2.1.2223.8569
  • Шурдуба Н.А., Сотникова В.М., Рыжова М.В., Осипова И.С., Токарев С.В. Видовой состав микрофлоры сырого молока в хозяйствах, неблагополучных по маститу коров. Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии, 2014, 1(11): 65-67.
  • Артемьева О.А., Переселкова Д.А., Виноградова И.В., Котковская Е.Н., Гладырь Е.А., Сивкин Н.В., Зиновьева Н.А. Скрининг стада молочных коров на наличие в молоке гемолитических микроорганизмов во взаимосвязи с содержанием соматических клеток. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(6): 810-816 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.810rus
  • De Visscher A., Piepers S., Haesebrouck F., Supré K., De Vliegher S. Coagulase-negative Staphylococcus species in bulk milk: Prevalence, distribution, and associated subgroup-and species-specific risk factors. J. Dairy Sci., 2017, 100(1): 629-642 ( ) DOI: 10.3168/jds.2016-11476
  • Carter E.W., Kerr D.E. Optimization of DNA-based vaccination in cows using green fluorescent protein and protein A as a prelude to immunization against staphylococcal mastitis. J. Dairy Sci., 2003, 4: 1177-1186 ( ) DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(03)73701-1
  • Almeida R.A., Mathews K.R., Cifrian E., Guidry A.J., Oliver S.P. Staphylococcus aureus invasion of bovine mammary epithelial cells. J. Dairy Sci. 1996, 6: 1021-1026 ( ) DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(96)76454-8
  • Sordillo L.M. Factors affecting mammary gland immunity and mastitis susceptibility. Livest. Prod. Sci., 2005, 98: 89-99 ( ) DOI: 10.1016/j.livprodsci.2005.10.017
  • Oviedo-Boyso J., Valdez-Alarcón J.J., Cajero-Juárez M., Ochoa-Zarzosa A., López-Meza J.E., Bravo-Patiño A., Baizabal-Aguirre V.M. Innate immune response of bovine mammary gland to pathogenic bacteria responsible for mastitis. Journal of Infection, 2007, 54(4): 399-409 ( ) DOI: 10.1016/j.jinf.2006.06.010
  • Rainard P., Riollet C. Innate immunity of the bovine mammary gland. Vet. Res., 2006, 37(3): 369-400 ( ) DOI: 10.1051/vetres:2006007
  • Spaulding A.R., Salgado-Pabón W., Kohler P.L., Horswill A.R., Leung D.Y., Schlievert P.M. Staphylococcal and streptococcal superantigen exotoxins. Clin. Microbiol. Rev., 2013, 26(3): 422-447 ( ) DOI: 10.1128/CMR.00104-12
  • Zecconi A., Cesaris L., Liandris E., Daprà V., Piccinini R. Role of several Staphylococcus aureus virulence factors on the inflammatory response in bovine mammary gland. Microb. Pathogenesis, 2006, 40(4): 177-183 ( ) DOI: 10.1016/j.micpath.2006.01.001
  • Deplanche M., Alekseeva L., Semenovskaya K., Fu C.L., Dessauge F., Finot L., Petzl W., Zerbe H., Le Loir Y., Rainard P., Smith D.G., Germon P., Otto M., Berkova N. Staphylococcus aureus phenol-soluble modulins impair interleukin expression in bovine mammary epithelial cells. Infect. Immun., 2016, 84(6): 1682-1692 ( ) DOI: 10.1128/IAI.01330-15
  • Schukken Y.H., Günther J., Fitzpatrick J., Fontaine M.C., Goetze L., Holst O., Leigh J., Petzl W., Schuberth H.J., Sipka A., Smith D.G., Quesnell R., Watts J., Yancey R., Zerbe H., Gurjar A., Zadoks R.N., Seyfert H.M. Members of the Pfizer mastitis research consortium. Host-response patterns of intramammary infections in dairy cows. Vet. Immunol. Immunopathol., 2011, 144(3-4): 270-289 ( ) DOI: 10.1016/j.vetimm.2011.08.022
  • Ebling T.L., Fox L.K., Bayles K.W., Bohach G.A., Byrne K.M., Davis W.C., Ferens W.A., Hillers J.K. Bovine mammary immune response to an experimental intramammary infection with a Staphylococcus aureus strain containing a gene for staphylococcal enterotoxin C1. J. Dairy Sci., 2001, 84(9): 2044-2050 ( ) DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(01)74648-6
  • Nawrotek P., Czernomysy-Furowicz D., Borkowski J., Fijałkowski K., Pobucewicz A. The effect of auto-vaccination therapy on the phenotypic variation of one clonal type of Staphylococcus aureus isolated from cows with mastitis. Vet. Microbiol., 2012, 155(2-4): 434-437 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2011.09.014
  • Pyörälä S. New strategies to prevent mastitis. Reproduction in domestic animals, 2002, 37(4): 211-216 ( ) DOI: 10.1046/j.1439-0531.2002.00378.x
  • Brandtzaeg P. Secretory IgA: designed for anti-microbial defense. Front. Immunol., 2013, 4: 222 ( ) DOI: 10.3389/fimmu.2013.00222
  • Rubina A.Yu., Filippova M.A., Feizkhanova G.U., Shepeliakovskaya A.O., Sidina E.I., Boziev Kh.M., Laman A.G., Brovko F.A., Vertiev Yu.V., Zaseda-telev A.S., Grishin E.V. Simultaneous detection of seven Staphylococcal enterotoxins: Development of hydrogel biochips for analytical and practical application. Anal. Chem., 2010, 82(21): 8881-8889 ( ) DOI: 10.1021/ac1016634
  • Liu Y., Chen W., Ali T., Alkasir R., Yin J., Liu G., Han B. Staphylococcal enterotoxin H induced apoptosis of bovine mammary epithelial cells in vitro. Toxins, 2014, 6: 3552-3567 ( ) DOI: 10.3390/toxins6123552
  • Macori G., Giacinti G., Bellio A., Gallina S., Bianchi D.M., Sagrafoli D., Marri N., Giangolini G., Amatiste S., Decastelli L. Molecular epidemiology of methicillin-resistant and methicillin-susceptible Staphylococcus aureus in the ovine dairy chain and in farm-related humans. Toxins, 2017, 9(5): 161 ( ) DOI: 10.3390/toxins9050161
  • Havaei S.A., Assadbeigi B., Esfahani B.N., Hoseini N.S., Rezaei N., Havaei S.R. Detection of mecA and enterotoxin genes in Staphylococcus aureus isolates associated with bovine mastitis and characterization of Staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) in MRSA strains. Iranian Journal of Microbiology, 2015, 7(3): 161-167.
  • Günaydın B., Aslanta Ö., Demir C. Detection of superantigenic toxin genes in Staphylococcus aureus strains from subclinical bovine mastitis. Tropical animal health and production, 2011, 43(8): 1633-1637 ( ) DOI: 10.1007/s11250-011-9882-5
  • Zschöck M., Kloppert B., Wolter W., Hamann H.P. Lämmler C. Pattern of enterotoxin genes seg, seh, sei and sej positive Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis. Vet. Microbiol., 2005, 108: 243-249 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2005.02.012
  • Wang X., Li G., Xia X., Yang B., Xi M., Meng J. Antimicrobial susceptibility and molecular typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in retail foods in Shaanxi, China. Foodborne Pathog. Dis., 2014, 11, 281-286 ( ) DOI: 10.1089/fpd.2013.1643
Еще
Статья научная