Выявление токсичности ряда микромицетов - патогенов хлопковой совки
Автор: Хамираев У.К., Камилов Ш.Г.
Журнал: Бюллетень науки и практики @bulletennauki
Рубрика: Сельскохозяйственные науки
Статья в выпуске: 11 т.8, 2022 года.
Бесплатный доступ
Обсуждается вопрос наличия микромицетов, вызывающих заболевания гусениц одного из опаснейших вредителей хлопчатника - хлопковой совки Helicoverpa armigera (Hübner, 1808). В 2020-2021 гг. были выявлены и выделены в чистую культуру 20 видов микромицетов. Данными культурами искусственно заражались 50 гусениц восковой моли. В результате было отмечено лишь 2-4% умерших гусениц. Данные штаммы грибов являются возбудителями болезней и обладают энтомопатогенными свойствами, но не имеют практического интереса.
Хлопковая совка, хлопчатник, токсичность
Короткий адрес: https://sciup.org/14126129
IDR: 14126129 | DOI: 10.33619/2414-2948/84/29
Текст научной статьи Выявление токсичности ряда микромицетов - патогенов хлопковой совки
Бюллетень науки и практики / Bulletin of Science and Practice
Микромицеты — чрезвычайно обширная и разнообразная группа организмов, которая играет важную роль в природных биоценозах, оказывают существенное влияние на происходящие в природе процессы. Основная группа грибов относятся к сапротрофным организмам осуществляющих процессы деструкции органического материала, другая группа грибов вызывает заболевания растений и животных [1].
Хлопководство традиционно является одной из ведущих отраслей сельского хозяйства Узбекистана. Известно, что потери урожая от вредителей, могут составлять до 30%, так З. К. Адылов (1991) приводит данные, что в течение вегетационного периода хлопчатнику наносят вред более 217 видов насекомых и клещей [2].
В условиях Узбекистана одним из основных вредителей хлопчатника и овощных культур является хлопковая совка. Биология совки в настоящее время изучена хорошо, однако возбудители болезней совки ранее не изучались.
В настоящее время в защите растений значительная роль принадлежит биологическому методу борьбы, который является мощным фактором в повышении урожайности и качества продукции, уменьшении объемов применения пестицидов и предотвращении загрязнения окружающей среды ядохимикатами. Сущность биологического метода состоит в целенаправленном использовании сложившихся в природе антагонистических взаимоотношений между вредителями сельскохозяйственных посевов, их паразитами и хищниками, а также энтомопатогенами — возбудителями бактериальных, грибных и вирусных болезней вредителей [12, 13].
Энтомопатогенные грибы являются самостоятельной экологической группой микромицетов, жизнедеятельность которых связана с насекомыми и которые влияют на регулирование численности насекомых в природных агро- и биоценозах. Энтомопатогенные грибы привлекают внимание специалистов в силу их возможного использования в качестве средства подавления популяции вредителя. Они влияют на природные биоценозы и популяции вредителей, способны снижать их численность, в связи с чем перспективны в биологической борьбе с вредителями. В практике сельского хозяйства применяется около 40 препаратов, основанных на использовании энтомопатогенных свойств микроорганизмов [3]. На возможность применения энтомопатогенных грибов обращали внимание многие исследователи [4, 5, 7].
Целью данной работы являлось выявление состава местных энтомопатогенных грибов, поражающих коробчатого червя (хлопковой совки), выявление их патогенности и их токсическое действие на вредителя.
Материал и методы работы
Материалом для исследования служили погибшие и живые личинки вредителя разных возрастов и взрослые особи с признаками поражения. Сбор насекомых осуществлялся на хлопчатнике и томатах в весенний и летний сезоны маршрутными обследованиями по Ташкентской области.
Исходя из биологии развития вредителя – окукливание гусениц в поверхностных слоях почвы, пробы почвы брали из верхних слоев (до 10 см) методом раскопок. Почву просеивали и выбирали попадающих насекомых [7].
Собранный материал подвергался камеральной обработке - после поверхностного фламбирования их раскладывали в стерильные чашки Петри во влажную камеру. Выделение грибов с субстрата и в чистую культуру проводили общепринятыми в микологии методами [3–8].
Идентификацию проводили по ряду определителей [5, 6, 8, 9, 13].
В работе использовались агар, среда Чапека, сусло-агар [3]. Для выявления токсичности применяли экстракты и культуральные жидкости грибов, приготовленные по методу Н. А. Спесивцевой (1964) [10].
Токсическое действие выявленных микромицетов устанавливалась путем погружения личинок восковой моли, которая вырабатывается в биолабораториях для получения энтомофага бракона — паразита хлопковой совки в экстракты и культуральные жидкости грибов на 30 с и проводили наблюдение за развитием насекомого.
Результаты исследования
В результате проведенного исследования было выявлено 20 штаммов грибов, относящихся к 12 родам гифальных грибов, подотдела Deuteromycotina. Анализ систематического состава микромицетов показал преобладание видов светлоокрашенных гифомицетов, по сравнению с темноокрашенными и туберкуляриевыми. Наибольшее количество отмечено у родов Aspergillus P. Micheli, 1729 — 5 видов, Penicillium Link, 1809 — 3, Fusarium Link, 1809 и Alternaria Nees ex Wallroth, 1816 — 2, остальные роды включали по 1 виду (Таблица 1).
Таблица 1 РАСПРЕДЕЛЕНИЕ МИКРОМИЦЕТОВ, ВЫДЕЛЕННЫХ
С ГУСЕНИЦ ХЛОПКОВОЙ СОВКИ ПО СИСТЕМАТИЧЕСКИМ ТАКСОНАМ
Семейство |
Род |
Вид |
|
1 |
Moniliaceae |
Aspergillus |
A. flavus |
2 |
A. niger |
||
3 |
A. terreus |
||
4 |
A. ochraceus |
||
5 |
A. fumigatus |
||
6 |
Cephalosporium |
C. acremonium |
|
7 |
Geotrichum |
G. candidum |
|
8 |
Penicillium |
P. chrysogenum |
|
9 |
P. frequentans |
||
10 |
P. spinulosum |
||
11 |
Scopulariopsis |
S. brevicaulis |
|
12 |
Spicaria |
S. heliothis |
|
13 |
Trichothecium |
T. roseum |
|
14 |
Dematiaceae |
Alternaria |
A. alternata |
15 |
A. tenuissima |
||
16 |
Cladosporium |
С. herbarum |
|
17 |
Stachybotrys |
S. lobulatus |
|
18 |
Stemphylium |
S. botryosum |
|
19 |
Tuberculariaceae |
Fusarium |
F. avenaceum |
20 |
F. lateritium |
||
Итого: |
3 |
12 |
20 |
Одной из задач нашего исследования было определение патогенности выявленных штаммов грибов. Степень патогенности выявленных микромицетов устанавливалась путем искусственного заражения гусениц старших возрастов восковой моли, которая вырабатывается в биолабораториях для получения энтомофага бракона — паразита хлопковой совки. Сухой споровый порошок наносился на поверхность гусениц, которые в течение 20 дней содержались для выявления возможности поражения. Гусеницы в контроле не обрабатывались. Опыт проводился на 50 гусеницах. Высчитывался средний процент поражения. Результаты опыта представлены в Таблице 2.
Из представленных данных следует, что процент поражения гусениц восковой моли в опыте при искусственном заражении колеблется в пределах от 2% до 25%. В случае поражения, на 10–12 день отдельные особи становились малоподвижными, вялыми, слабо реагирующими на раздражение, на поверхности гусениц наблюдались различные пятна. Необходимо отметить, что картина гибели гусениц в течение 20 дней отмечалась лишь в случае с Aspergillus fumigatus (4%), A. flavus , Trichothecium roseum , Spicaria heliothis и Fusarium lateritium вызвали гибель 2%.
Погибшие гусеницы становились твердыми, хрупкими, иногда наблюдалось образование спороношения на поверхности насекомого. Кроме прямого влияния на насекомых одной из задач нашего исследования было определение патогенности выявленных штаммов грибов и токсическое действие выявленной микобиоты.
В отечественной и зарубежной литературе накоплено достаточно данных о токсических свойствах отдельных видов микромицетов [1, 10].
ПОРАЖЕНИЕ ГУСЕНИЦ ВОСКОВОЙ МОЛИ
ВЫЯВЛЕННЫМИ ШТАММАМИ МИКРОМИЦЕТОВ
Таблица 2
Вид микромицетов |
Количество выявленных штаммов |
Количество личинок |
Поражение гусениц, % |
|
Поражение |
Гибель |
|||
Aspergillus flavus |
1 |
50 |
21 |
2 |
Aspergillus niger |
1 |
50 |
18 |
- |
Aspergillus terreus |
1 |
50 |
- |
- |
Aspergillus ochraceus |
1 |
50 |
3 |
- |
Aspergillus fumigatus |
1 |
50 |
25 |
4 |
Cephalosporium acremonium |
1 |
50 |
16 |
- |
Geotrichum candidum |
1 |
50 |
- |
- |
Penicillium chrysogenum |
1 |
50 |
6 |
- |
Penicillium frequentans |
1 |
50 |
4 |
- |
Penicillium spinulosum |
1 |
50 |
1 |
- |
Scopulariopsis brevicaulis |
1 |
50 |
16 |
- |
Spicaria heliothis |
1 |
50 |
16 |
2 |
Trichothecium roseum |
1 |
50 |
18 |
2 |
Alternaria alternata |
1 |
50 |
5 |
- |
Alternaria tenuissima |
1 |
50 |
3 |
- |
Cladosporium herbarum |
1 |
50 |
5 |
- |
Stachybotrys lobulatus |
1 |
50 |
- |
- |
Stemphylium botryosum |
1 |
50 |
2 |
- |
Fusarium avenaceum |
1 |
50 |
13 |
- |
Fusarium lateritium |
1 |
50 |
12 |
2 |
В связи с вышесказанным нами было проведено изучение ряда выявленных грибов на способность продуцировать токсические метаболиты, отрицательно воздействующие на насекомых. В опыте были задействованы Aspergillus flavus, A. fumigatus, Trichothecium roseum, и Fusarium lateritium которые в предыдущих опытах вызывали гибель личинок. При определении токсичности использовали экстракты и культуральные жидкости грибов. При получении экстрактов культуры выращивали в течение 10 дней. Для получения культуральных жидкостей и для выявления сроков накопления компонента, обусловливающего большую токсичность, грибы выращивались в течение 10 и 30 дней. В результате эксперимента установлено, что фильтраты культуральных жидкостей обладают большей токсичностью чем экстракты грибов. При этом больший процент гибели личинок вызывали 30-дневные фильтраты культуральных жидкостей, по сравнению с 10-дневными (Таблица 2).
Так 10-дневные культуральные жидкости обладали более чем в 2 раза низкой активностью по сравнению с 30-дневными культурами, так Aspergillus flavus вызывал гибель 16.2%, A. fumigatus — 15,2%, Fusarium lateritium — 10,9%, Trichothecium roseum — 8,0% личинок ранних возрастов восковой моли, тогда как данные по поражению восковой моли 30дневными культуральными жидкостями составляют 43,1; 42,4; 37,6; 36,4% соответственно.
Для личинок старших возрастов данный показатель был ниже, но наблюдалось та же закономерность (Таблица 3).
Экстракты, как уже отмечалось, обладали меньшей токсичностью, чем фильтраты, так A. flavus вызывал гибель 16.1%, A. fumigatus — 14,2, F. lateritium — 15,0%, T. roseum — 9,8% личинок ранних возрастов восковой моли, а для личинок старших возрастов процент поражения несколько ниже (Таблица 4).
ДЕЙСТВИЕ ФИЛЬТРАТОВ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ЖИДКОСТЕЙ НА ЛИЧИНОК ВОСКОВОЙ МОЛИ
Таблица 3
Культуральные жидкости грибов |
Число личинок на листе |
Гибель личинок, в % |
|||
10-дневные культуральные жидкости |
30-дневные культуральные жидкости |
||||
Личинки I-II возрастов |
Личинки IIIIV возрастов |
Личинки I-II возрастов |
Личинки III IV возрастов |
||
A. flavus |
50 |
16,2 |
19,2 |
43,1 |
34,2 |
A. fumigatus |
50 |
15,2 |
19,9 |
42,4 |
34,5 |
F. lateritium |
50 |
10,9 |
19,0 |
39,6 |
31,2 |
T. roseum |
50 |
8,0 |
6,2 |
36,4 |
23,5 |
Таблица 4
ДЕЙСТВИЕ ЭКСТРАКТОВ ГРИБОВ НА ЛИЧИНОК ВОСКОВОЙ МОЛИ
Культуральные жидкости грибов |
Число личинок на листе |
Гибель личинок, в % |
|
10-дневные культуральные жидкости |
|||
Личинки I-II возрастов |
Личинки III-IV возрастов |
||
A. flavus |
50 |
18,1 |
14,5 |
A. fumigatus |
50 |
14,2 |
10,3 |
F. lateritium |
50 |
15,0 |
8,4 |
T. roseum |
50 |
9,8 |
6,3 |
На основании полученных данных, можно говорить о энтомопатогенных свойствах микромицетов A. flavus, A. fumigatus, F. lateritium , T. roseum и воздействии их культуральной жидкости и экстрактов на живых опытных личинок насекомых. Дальнейшая работа с данными культурами может предполагать возможность применения их в борьбе с вредными насекомыми.
Список литературы Выявление токсичности ряда микромицетов - патогенов хлопковой совки
- Аблаева Д. К. Энтомопатогенные микромицеты Ташкентской области: Дисс. … канд биол. наук. Ташкент, 1990. 160 с.
- Адылов З. К. Энтомофаги вредителей хлопчатника и пути их использования. Ташкент, 1991. 23 с.
- Дудка И. А., Вассер С. П., Элланская И. А. Методы экспериментальной микологии: Справочник. Киев: Наук. думка, 1982. 550 с.
- Евлахова А. А. Перспективы использования энтомопатогенных грибов в биологической борьбе с вредными насекомыми // Микология и фитопатология. 1971. Т. 5. №2. С. 105.
- Коваль Э. З. Энтомофильные грибы СССР: дисс. ... д-р биол. наук. Киев, 1983. 410 c.
- Литвинов М. А. Определитель микроскопических почвенных грибов: (порядок Moniliales, за исключением подсемейства Aspergilleae). Л.: Наука, 1967. 304 с.
- Полтев В. И., Гриценко И. Н., Егорова А. И. Микрофлора насекомых. Новосибирск: Наука, 1969. 271 с.
- Сагдуллаев М. Ш., Киргизбаева Х. М., Рамазанова С. С. Флора грибов Узбекистана: в 7 т. Ташкент: Фан, 1983. 131 с.
- Сагдуллаев М. Ш., Киргизбаева Х. М., Рамазанова С. С. Гифальные грибы (Dematiaceae). Ташкент: Фан, 1990. 131 с.
- Спесивцева Н. А. Микозы и микотоксикозы. М.: Колос, 1964. 520 с.
- Хамраев А. Ш., Хасанов Б. А., Сулаймонов Б. А., Кожевникова А. Г. Ўсимликларни биологик ҳимоя қилиш воситалари. Ташкент, 2012. 508 с.
- Хўжаев Ш. Т., Холмуродо Э. А. Энтомология, қишлоқ хўжалик экинларини ҳимоя қилиш ва агротоксикология асослари. Ташкент, 2008. 422 с.
- Яхонтов В. В. Ўрта осиё қишлоқ хўжалиги экинлари ва маҳсулотларини зараркунандалари ва уларга қарши кураш чоралари. Ташкент, 1962. 456 с.