Выявление значимых для экспорта зерна возбудителей бактериозов и комплекса сопутствующих микроорганизмов в посевах зерновых культур (на примере Тимирязевской полевой опытной станции)
Автор: Словарева О.Ю., Мувинги М., Яремко А.Б., Игонин В.Н., Рубец В.С.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Микробиология растений
Статья в выпуске: 1 т.58, 2023 года.
Бесплатный доступ
Согласно данным официальной статистики, в России ежегодно производится около 130 млн т продукции зерновых колосовых культур. В Едином Перечне карантинных объектов Евразийского экономического союза находится возбудитель желтого слизистого бактериоза пшеницы Rathayibacter tritici . Указанный вид подлежит выявлению при импорте и, при наличии требований импортера, при экспорте пшеницы. В связи с необходимостью регулирования в карантинных фитосанитарных лабораториях для Rathayibacter tritici имеется диагностическая методика. Для других возбудителей бактериозов зерновых культур, таких как Rathayibacter rathayi , Pseudomonas fuscovaginae , Pseudomonas cichorii, Pseudomonas fluorescens , Pseudomonas syringae, Acidovorax avenae, Erwinia rhapontici , Xanthomonas translucens , Clavibacter tessellarius и других, диагностические методики отсутствуют, поэтому обнаружения в практике работы диагностических фитосанитарных лабораторий не зафиксированы. Перечисленные виды регулируются странами-импортерами, закупающими в России более половины всей предназначенной для экспорта зерновой продукции. Бактериозы представляют серьезную угрозу производству зерна, а причиняемый ими возможный ущерб урожаю оценивается в 10-40 %. Бактерии могут вызывать вспышки заболеваний или находиться в растениях в скрытой форме в зависимости от условий окружающей среды и почти никогда не вызывают симптомов на зерне. В связи с этим обнаружить возбудителей бактериозов можно только в лаборатории, используя метод посева на питательные среды, проведение которого зачастую занимает неделю и более. Достоверная идентификация каждого вида бактерий, колонии которых получены в результате посева, возможна только с использованием молекулярных методов. Требуется разработка ПЦР-тестов, позволяющих проводить идентификацию целевых бактерий напрямую в образцах, не применяя культуральный метод, что существенно упростит и ускорит процедуру подтверждения соответствия состояния партий российского зерна требованиям импортеров. Разработка молекулярных методов диагностики возбудителей бактериозов зерновых культур возможна только после изучения их видового состава в растениях и зерне, при этом в вегетирующих растениях разнообразие живых бактерий существенно выше, чем в зерне. Информация о видовом составе бактерий на зерновых культурах позволит с применением геномного анализа обнаружить видоспецифичные ПЦР-мишени и разработать диагностические ПЦР-тесты для быстрой идентификации особо опасных и значимых для экспорта зерна видов бактерий. Ранее масштабного изучения бактериального состава в зерновых культурах не проводили, в связи с чем список бактерий, которые могут находиться вместе в одном образце, отсутствует. Отсутствует и полный перечень всех бактерий, которые можно встретить в зерновых культурах. В то же время для биоинформатического предсказания видоспецифичной ПЦР-мишени необходимо знать все виды, которые можно встретить в анализируемом образце, от которых следует отличать целевой вид. Состав бактериальной микробиоты может различаться в зависимости от культуры и сорта, поэтому максимальное разнообразие различных культур и сортов позволит получить более полную информацию. Влажные и умеренно теплые условия летнего периода в Центральном регионе России идеально подходят для развития бактериозов, поэтому сбор образцов мы проводили на территории Тимирязевской полевой опытной станции (г. Москва), где ежегодно ведутся работы по гибридизации, селекции и сортоиспытанию нескольких сотен сортов зерновых культур. Работа посвящена выявлению и идентификации бактерий в образцах зерновых культур Тимирязевской полевой опытной станции (г. Москва). Объектами исследования были бактериальные изоляты, выделенные из образцов зерновых культур в 2020 году. Идентификацию бактерий проводили посредством секвенирования ампликонов, полученных в результате ПЦР с парами праймеров PSF/PSR, SyD1/SyD2 и 8UA/519B и сравнения полученных последовательностей с помощью сервиса BLAST с последовательностями, размещенными в GenBank (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov). В результате собраны 55 образцов зерновых культур, выделен и идентифицирован 171 бактериальный изолят, в том числе до вида идентифицированы 34 изолята. Бактериальное разнообразие представлено 14 видами. Среди них - фитопатогены Pantoea ananatis , Clavibacter michiganensis , Rhodococcus fascians , Pseudomonas trivialis , Pseudomonas viridiflava и Pseudomonas syringae . Наибольшая частота встречаемости - 70,9 % отмечена у видов, относящихся к роду Pseudomonas . Также высокой частотой встречаемости характеризуются представители родов Frigoribacterium (36,4 %), Clavibacter (16,4 %), Arthrobacter (12,7 %) и Rhodococcus (10,9 %). Результаты проведенного исследования могут быть использованы при разработке быстрых и достоверных способов диагностики особо опасных и значимых для экспорта зерна видов бактерий.
Диагностика фитопатогенов, бактериозы зерновых культур, пцр, секвенирование
Короткий адрес: https://sciup.org/142238098
IDR: 142238098 | DOI: 10.15389/agrobiology.2023.1.184rus
Список литературы Выявление значимых для экспорта зерна возбудителей бактериозов и комплекса сопутствующих микроорганизмов в посевах зерновых культур (на примере Тимирязевской полевой опытной станции)
- Singh J., Chhabra B., Raza A., Yang S.H., Sandhu K.S. Important wheat diseases in the US and their management in the 21st century. Frontiers in Plant Science, 2023, 13: 1010191 (doi: 10.3389/fpls.2022.1010191).
- Krawczyk K., Wielkopolan B., Obrępalska-Stęplowska A. Pantoea ananatis, a new bacterial path-ogen affecting wheat plants (Triticum L.) in Poland. Pathogens, 2020, 9(12): 1079 (doi: 10.3390/pathogens9121079).
- Sapkota S., Mergoum M., Liu Z. The translucens group of Xanthomonas translucens: complicated and important pathogens causing bacterial leaf streak on cereals. Molecular Plant Pathology, 2020, 21(3): 291-302 (doi: 10.1111/mpp.12909).
- Tambong J. Bacterial pathogens of wheat: symptoms, distribution, identification, and taxonomy. In: Wheat. IntechOpen, 2022 (doi: 10.5772/intechopen.102855).
- Butsenko L., Pasichnyk L., Kolomiiets Y., Kalinichenko A., Suszanowicz D., Sporek M., Pat-yka V. Characteristic of Pseudomonas syringae pv. atrofaciens isolated from weeds of wheat field. Applied Sciences, 2021, 11(1): 286 (doi: 10.3390/app11010286).
- Sundin G.W., Castiblanco L.F., Yuan X., Zeng Q., Yang C.H. Bacterial disease management: challenges, experience, innovation and future prospects: challenges in bacterial molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology, 2016, 17(9): 1506-1518 (doi: 10.1111/mpp.12436).
- Wichmann F., Vorhölter F., Hersemann L., Widmer F., Blom J., Niehaus K., Reinhard S., Conradin C., Kölliker R. The noncanonical type III secretion system of Xanthomonas translucens pv. graminis is essential for forage grass infection. Molecular Plant Pathology, 2013, 14(6): 576-588 (doi: 10.1111/mpp.12030).
- Xie G.L., Zhang G.Q., Liu H., Lou M.M., Tian W.X., Li B., Zhou X.P., Zhu B., Jin G.L. Genome sequence of the rice-pathogenic bacterium Acidovorax avenae subsp. avenae RS-1. Jour-nal of Bacteriology, 2011, 193(18): 5013-5014. (doi: 10.1128/JB.05594-11).
- Nandi M., Macdonald J., Liu P., Weselowski B., Yuan Z.C. Clavibacter michiganensis ssp. mich-iganensis: bacterial canker of tomato, molecular interactions and disease management. Molecular Plant Pathology, 2018, 19(8): 2036-2050 (doi: 10.1111/mpp.12678).
- Coutinho T.A., Wingfield M.J. Ralstonia solanacearum and R. pseudosolanacearum on Eucalyptus: opportunists or primary pathogens? Frontiers in Plant Science, 2017, 8: 761 (doi: 10.3389/fpls.2017.00761).
- McMullen M.P., Stack R.W., Miller J.D., Bromel M.C., Youngs V.L. Erwinia rhapontici, a bac-terium causing pink wheat kernels. In: Proceedings of the North Dakota Academy of Sciences. Grand Forks, ND, 1984, 38: 78.
- Wise K.A., Zhao Y.F., Bradley C.A. First report of pink seed of pea caused by Erwinia rhapontici in North Dakota. Plant Disease, 2008, 92(2): 315 (doi: 10.1094/PDIS-92-2-0315A).
- Asaad S., Sands D.C., Mohan S.K. Chapter 4: Detection of Pseudomonas syringae pv. syringae in wheat seeds. In: Detection of plant-pathogenic bacteria in seed and other planting material, Second Edition. AIP Publications, 2017: 21-26 (doi: 10.1094/9780890545416.004).
- Boykin L.M., Sseruwagi P., Alicai T., Ateka E., Mohammed I.U., Stanton J.L., Kayuki C., Mark D., Fute T., Erasto J., Bachwenkizi H., Muga B., Mumo N., Mwangi J., Abidrabo P., Okao-Okuja G., Omuut G., Akol J., Apio H.B., Osingada F., Kehoe M.A., Eccles D., Savill A., Lamb S., Kinene T., Rawle C.B., Muralidhar A., Mayall K., Tairo F., Ndunguru J. Tree lab: portable genomics for early detection of plant viruses and pests in Sub-Saharan Africa. Genes (Basel), 2019, 10(9): 632 (doi: 10.3390/genes10090632).
- Горшков В.Ю. Бактериозы растений: молекулярные основы формирования растительно-мик-робных патосистем. Казань, 2017.
- Nair S., Manimekalai R. Phytoplasma diseases of plants: molecular diagnostics and way forward. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2021, 37(6): 102 (doi: 10.1007/s11274-021-03061-y).
- Игнатьева И.М., Словарева О.Ю. Совершенствование ПЦР-теста для диагностики расти-тельного материала зернобобовых культур на наличие возбудителя бактериального ожога гороха. Тез. докл. 22-й Всероссийской конференции молодых ученых «Биотехнология в расте-ниеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии» (Москва, 07-09 ноября 2022 г.). М., 2022: 140.
- Ignatyeva I.M., Karimova E.V., Prikhodko S.I. Diagnostics of the bacterial blight pathogen of bean Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli in plant and seed material of grain legumes using molecular genetics methods. AIP Conference Proceedings, 2021, 2388: 030014 (doi: 10.1063/5.0068504).
- Islam M.R., Hossain M.R., Kim H.T., Jesse D.M.I., Abuyusuf M., Jong H.J., Park J.I., Nou I.S. Development of molecular markers for detection of Acidovorax citrulli strains causing bacterial fruit blotch disease in melon. International Journal of Molecular Sciences, 2019, 20(11): 2715 (doi: 10.3390/ijms20112715).
- Корнейкова М.В., Сошина А.С., Гавричкова О.В. Условно-патогенная микробиота пыли в городах разных климатических зон на примере Мурманска и Москвы. Микология и фи-топатология, 2021, 55(4): 256-270 (doi: 10.31857/S0026364821040085).
- Slovareva O.Y. Detection and identification of pathogens of bacterial diseases of wheat and barley in the Russian Federation. Microbiology Independent Research Journal (MIR Journal), 2020, 7(1): 13-23 (doi: 10.18527/2500-2236-2020-7-1-13-23).
- Kazempour M.N, Kheyrgoo M., Pedramfar H., Rahimian H. Isolation and identification of bac-terial glum blotch and leaf blight on wheat (Triticum aestivum L.) in Iran. African Journal of Biotechnology, 2010, 9(20): 2860-2865.
- Белкин Д.Л., Бондаренко Г.Н., Яремко А.Б., Уварова Д.А. Метод секвенирования в видо-вой идентификации карантинных вредных организмов. Карантин растений. Наука и прак-тика, 2019, 28(2): 31-34.
- Honda-Takinami R., Hata J., Matsuoka K., Hoshi S., Koguchi T., Sato Y., Akaihata H., Kataoka M., Ogawa S., Nishiyama K., Suzutani T., Kojima Y. Association between the presence of bacteria in prostate tissue and histopathology in biopsies from men not complaining of lower urinary tract symptoms. Fukushima Journal of Medical Science, 2022, 68(3): 161-167 (doi: 10.5387/fms.2022-34).
- Минаева Л.П., Самохвалова Л.В., Завриев С.К., Стахеев А.А. Первое выявление гриба Fusarium coffeatum на территории Российской Федерации. Сельскохозяйственная биология, 2022, 57(1): 131-140 (doi: 10.15389/agrobiology.2022.1.131rus).
- Dorofeeva L.V., Evtushenko L.I., Krausova V.I., Karpov A.V., Subbotin S.A., Tiedje J.M. Rathayibacter caricis sp. nov. and Rathayibacter festucae sp. nov., isolated from the phyllosphere of Carex sp. and the leaf gall induced by the nematode Anguina graminis on Festuca rubra L., respectively. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2002, 52(6): 1917-1923 (doi: 10.1099/00207713-52-6-1917).
- Raghupathi P.K., Herschend J., Røder H.L., Sørensen S.J., Burmølle M. Draft genome assembly of two Pseudoclavibacter helvolus strains, G8 and W3, isolated from slaughterhouse environments. Genome Announcements, 2016, 4(2): e00077-16 (doi: 10.1128/genomeA.00077-16).
- Jendrossek D. Transfer of [Pseudomonas] lemoignei, a gram-negative rod with restricted catabolic capacity, to Paucimonas gen. nov. with one species, Paucimonas lemoignei comb. nov. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2001, 51(3): 905-908 (doi: 10.1099/00207713-51-3-905).
- Weller-Stuart T., De Maayer P., Coutinho T. Pantoea ananatis: genomic insights into a versatile pathogen. Molecular Plant Pathology, 2017, 18(9): 1191-1198 (doi: 10.1111/mpp.12517).
- Lu L., Chang M., Han X., Wang Q., Wang J., Yang H., Guan Q., Dai S. Beneficial effects of endophytic Pantoea ananatis with ability to promote rice growth under saline stress. Journal of Applied Microbiology, 2021, 131(4): 1919-1931 (doi: 10.1111/jam.15082).
- Miranda-Ríos J.A., Ramírez-Trujillo J.A., Nova-Franco B., Lozano-Aguirre Beltrán L.F., Itur-riaga G., Suárez-Rodríguez R. Draft genome sequence of Arthrobacter chlorophenolicus strain Mor30.16, isolated from the bean rhizosphere. Genome Announcements, 2015, 3(3): e00360-15 (doi: 10.1128/genomeA.00360-15).
- Liu F., Yang S., Xu F., Zhang Z., Lu Y., Zhang J., Wang G. Characteristics of biological control and mechanisms of Pseudomonas chlororaphis zm-1 against peanut stem rot. BMC Microbiology, 2022, 22(1): 9 (doi: 10.1186/s12866-021-02420-x).
- Hwang I.S., Oh E.J., Song E., Park I.W., Lee Y., Sohn K.H., Choi D., Oh C.S. An apoplastic effector Pat-1Cm of the gram-positive bacterium Clavibacter michiganensis acts as both a patho-genicity factor and an immunity elicitor in plants. Frontiers in Plant Science, 2022, 13: 888290 (doi: 10.3389/fpls.2022.888290).
- Park J.M., Koo J., Kang S.W., Jo S.H., Park J.M. Detection of Rhodococcus fascians, the caus-ative agent of lily fasciation in South Korea. Pathogens, 2021, 10(2): 241 (doi: 10.3390/patho-gens10020241).
- Sawada H., Fujikawa T., Tsuji M., Satou M. Pseudomonas allii sp. nov., a pathogen causing soft rot of onion in Japan. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2021, 71(1). (doi: 10.1099/ijsem.0.004582).
- Lipps S.M., Samac D.A. Pseudomonas viridiflava: An internal outsider of the Pseudomonas syrin-gae species complex. Molecular Plant Pathology, 2022, 23(1): 3-15 (doi: 10.1111/mpp.13133).
- Xin X.F., Kvitko B., He S.Y. Pseudomonas syringae: what it takes to be a pathogen. Nature Reviews Microbiology, 2018, 16(5): 316-328. (10.1038/nrmicro.2018.17).
- Zhuo Y., Jin C.Z., Jin F.J., Li T., Kang D.H., Oh H.M., Lee H.G., Jin L. Lacisediminihabitans profunda gen. nov., sp. nov., a member of the family Microbacteriaceae isolated from freshwater sediment. Antonie Van Leeuwenhoek, 2020, 113(3): 365-375 (doi: 10.1007/s10482-019-01347-8).
- Crovadore J., Calmin G., Chablais R., Cochard B., Schulz T., Lefort F. Whole-genome sequence of Pseudomonas graminis strain UASWS1507, a potential biological control agent and biofertilizer isolated in Switzerland. Genome Announcement, 2016, 4(5): e01096-16 (doi: 10.1128/ge-nomeA.01096-16).
- Sun H., Kong L., Du H., Chai Z., Gao J., Cao Q. Benefits of Pseudomonas poae s61 on Astragalus mongholicus growth and bioactive compound accumulation under drought stress. Journal of Plant Interactions, 2019, 14(1): 205-212 (doi: 10.1080/17429145.2019.1611958).
- Shen S.Y., Fulthorpe R. Seasonal variation of bacterial endophytes in urban trees. Frontiers in Microbiology, 2015, 6: 427 (doi: 10.3389/fmicb.2015.00427).
- Li X., Tambong J., Yuan K.X., Chen W., Xu H., Lévesque C.A., De Boer S.H. Re-classification of Clavibacter michiganensis subspecies on the basis of whole-genome and multi-locus sequence analyses. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2018, 68(1): 234-240 (doi: 10.1099/ijsem.0.002492).
- Сенников В.А., Ларин Л.Г., Россинская Т.М., Белолюбцев А.И., Коровина Л.Н. Колеба-ния и изменение климата Петровско-Разумовского за 125-летний период наблюдений. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии, 2005, 1: 141-146.
- Белолюбцев А.И., Асауляк И.Ф. Агроклиматическое обеспечение продукционных процес-сов сельскохозяйственных культур в условиях центрального района Нечерноземной зоны. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии, 2013, 4: 66-84.
- Думова В.А., Першина Е.В., Мерзлякова Я.В., Круглов Ю.В., Андронов Е.Е. Основные тен-денции в формировании почвенного микробного сообщества в условиях стационарного по-левого опыта по данным высокопроизводительного секвенирования библиотек гена 16S-рРНК. Сельскохозяйственная биология, 2013, 5: 85-92 (10.15389/agrobiology.2013.5.85rus).