Взаимодействие базидиомицетов с переменно-валентными элементами в составе аспартатов биогенных металлов(II)

Автор: Цивилева О.М., Шатерников А.Н., Фадеев В.В., Любунь Е.В., Амелин В.Г., Воронин С.П., Гуменюк А.П., Никитина В.Е.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Микология

Статья в выпуске: 3 т.55, 2020 года.

Бесплатный доступ

Важное направление развития научных основ искусственного культивирования грибов - оптимизация минерального питания и доставки металлов(II). Органическая форма микроэлементов обладает значительными преимуществами перед неорганическими прекурсорами. Конъюгация металлов(II) (в частности Cu, Mn, Fe, Zn, Co) с эссенциальными аминокислотами представляется решением проблемы биодоступности благодаря химическим процессам комплексообразования. В представленном исследовании мы впервые обнаружили и охарактеризовали действие аспартатов переменновалентных металлов(II) на ростовые процессы, биохимический отклик погруженных культур, антибактериальную активность грибных препаратов и плодоношение базидиомицетов родов Ganoderma , Grifola , Laetiporus , Lentinula и Pleurotus . Цель нашей работы состояла в выявлении и сравнении особенностей действия аспартатов переменновалентных металлов(II) на физиолого-биохимические показатели базидиомицетов. В работе использовали культуры трутовика лакированного ( Ganoderma lucidum 1315), грифолы зонтичной ( Grifola umbellata 1622), трутовика серно-желтого ( Laetiporus sulphureus 120707), пилолистника съедобного (шиитаке) ( Lentinula edodes F-249), вешенки устричной ( Pleurotus ostreatus 69, BK1702 и HK352). Аспартаты Cu(II), Mn(II), Fe(II), Zn(II), Co(II) в концентрации 1½10-4 моль/л входили в состав питательных сред на основе глюкозы или пшеничного отвара при выращивании мицелия методом погруженного культивирования. Еще одним вариантом добавки к питательной среде была аспарагиновая кислота (Asp) в концентрации 2½10-4 моль/л. Рост грибов при глубинном культивировании характеризовали по накоплению сухой биомассы. Мицелий фильтровали через предварительно взвешенные на аналитических весах фильтры, высушивали до постоянной массы и вновь взвешивали. Сравнивали прирост биомассы (по сравнению с 3-часовыми образцами культуры) в контрольном (без добавок аспартатов - хелатов аспарагиновой кислоты) и опытных вариантах. Субстратом для выращивания плодовых тел вешенки устричной служила лузга подсолнечника. Антибактериальную активность продуктов из погруженных грибных культур, выращенных в присутствии хелатов, определяли в отношении фитопатогенных бактерий Micrococcus luteus B-109, Pectobacterium carotovorum subsp. сarotovorum (штаммы 603 и MI), Pectobacterium atrosepticum 1043, Pseudomonas fluorescens EL-2.1, Xanthomonas campestris B-610, используя метод диффузии в агар. Эффект добавок на состав пула вторичных метаболитов грибных культур оценивали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии/времяпролетной масс-спектрометрии высокого разрешения. Количественную оценку содержания металла в биологических пробах грибного происхождения проводили методом атомно-абсорбционной спектроскопии. Характеристики развития плодовых тел вешенки устричной оценивали в лаборатории, а затем в условиях грибоводческого хозяйства. Установлено, что аминокислотные хелаты биогенных металлов(II) служат факторами интенсификации выращивания посевного мицелия и плодообразования макробазидиомицетов в лабораторных условиях. Показано существенное ростостимулирующее действие хелатов меди, марганца, цинка и в меньшей степени железа на мицелий базидиомицетов в условиях погруженного культивирования, в особенности в отношении трутовика лакированного, грифолы зонтичной, трутовика серно-желтого. Отмечалось весьма слабое стимулирование или даже ингибирование роста P. ostreatus 69 в вариантах с добавками Cu(Asp)2, Mn(Asp)2, Zn(Asp)2. Аспарагиновая кислота демонстрировала ингибирующий эффект вне зависимости от таксономических характеристик базидиомицетов. При культивировании вешенки устричной в присутствии аспартатов биогенных металлов выявлены межштаммовые различия в отношении быстро- и медленнорастущих культур к экзогенному воздействию хелатов металлов. В вариантах опыта Cu(Asp)2 и Zn(Asp)2 преимуществом обладал штамм P. ostreatus BK1702. Хелат марганца оказывал наиболее выраженное положительное действие на быстрорастущий штамм P. ostreatus HK352. По данным физико-химических исследований, аспартаты металлов(II), особенно Mn(Asp)2, Cu(Asp)2, влияют на биосинтез 5-гидроксиметилфурфурола, дигидропирона (структурный аналог койевой кислоты), пара-гидроксифенилуксусной кислоты, антиоксидантные свойства которых важны для грибной культуры. Положительное действие сочетаний хелатных соединений Mn(II), Cu(II), Fe(II), Zn(II) на жизнедеятельность P. ostreatus может быть эффективно использовано как для развития научных основ минерального питания высших грибов, так и в практическом грибоводстве. Аспартаты биогенных металлов могут служить действующим началом биопрепаратов для промышленного культивирования грибов. Характеристики развития мицелия и плодовых тел вешенки устричной с использованием в эксперименте аспартатов позволили рекомендовать к практическому применению хелат марганца(II).

Еще

Базидиомицеты, физиолого-биохимические характеристики, биометаллы, аминокислотные хелаты, аспартаты

Короткий адрес: https://sciup.org/142226340

IDR: 142226340   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2020.3.606rus

Список литературы Взаимодействие базидиомицетов с переменно-валентными элементами в составе аспартатов биогенных металлов(II)

  • Ogidi C.O., Oyetayo V.O., Akinyele B.J., De Carvalho C.A., Kasuya M.C.M. Food value and safety status of raw (unfermented) and fermented higher basidiomycetes, Lenzites quercina (L.) P. Karsten. Preventive Nutrition and Food Science, 2018, 23(3): 228-234 ( ). DOI: 10.3746/pnf.2018.23.3.228
  • Rathore H., Prasad S., Kapri M., Tiwari A., Sharma S. Medicinal importance of mushroom mycelium: mechanisms and applications. Journal of Functional Foods, 2019, 56: 182-193 ( ). DOI: 10.1016/j.jff.2019.03.016
  • Guo L.-Q., Lin J.-Y., Lin J.-F. Non-volatile components of several novel species of edible fungi in China. Food Chemistry, 2007, 100(2): 643-649 ( ). DOI: 10.1016/j.foodchem.2005.09.087
  • Akyüz M., Kirbağ S. Effect of various agro-residues on nutritive value of Pleurotus eryngii (DC. ex Fr.) Quel. var. ferulae Lanzi. Journal of Agricultural Sciences, 2010, 16: 83-88.
  • Figlas D., Oddera M., Curvetto N. Bioaccumulation and bioavailability of copper and zinc on mineral-enriched mycelium of Grifola frondosa. Journal of Medicinal Food, 2010, 13(2): 469-475 ( ). DOI: 10.1089/jmf.2008.0284
  • Matute R.G., Serra A., Figlas D., Curvetto N. Copper and zinc bioaccumulation and bioavailability of Ganoderma lucidum. Journal of Medicinal Food, 2011, 14(10): 1273-1279 ( ).
  • DOI: 10.1089/jmf.2010.0206
  • Poursaeid N., Azadbakht A., Balali G.R. Improvement of zinc bioaccumulation and biomass yield in the mycelia and fruiting bodies of Pleurotus florida cultured on liquid media. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2015, 175(7): 3387-3396 ( ).
  • DOI: 10.1007/s12010-015-1510-9
  • Liu J., Bao W., Jiang M., Zhang Y., Zhang X., Liu L. Chromium, selenium, and zinc multimineral enriched yeast supplementation ameliorates diabetes symptom in streptozocin-induced mice. Biological Trace Element Research, 2012, 146(2): 236-245 ( ).
  • DOI: 10.1007/s12011-011-9248-x
  • Zafar M.H., Fatima M. Efficiency comparison of organic and inorganic minerals in poultry nutrition: a review. PSM Veterinary Research, 2018, 3(2): 53-59.
  • Gharibzahedi S.M.T., Jafari S.M. The importance of minerals in human nutrition: bioavailability, food fortification, processing effects and nanoencapsulation. Trends in Food Science & Technology, 2017, 62: 119-132 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.tifs.2017.02.017
  • Egorova K.S., Ananikov V.P. Toxicity of metal compounds: knowledge and myths. Organometallics, 2017, 36(21): 4071-4090 ( ).
  • DOI: 10.1021/acs.organomet.7b00605
  • Tuhy Ł., Samoraj M., Michalak I., Chojnacka K. The application of biosorption for production of micronutrient fertilizers based on waste biomass. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2014, 174(4): 1376-1392 ( ).
  • DOI: 10.1007/s12010-014-1074-0
  • Witkowska Z., Rusek P., Witek-Krowiak A., Chojnacka K., Tuhy Ł., Samoraj M. Production of dietary feed supplements enriched in microelements in a pilot plant biosorption system. International Journal of Environmental Science and Technology, 2016, 13(4): 1089-1098 ( ).
  • DOI: 10.1007/s13762-016-0945-z
  • Gins М., Gins V., Mоtyleva S., Kulikov I., Mеdvedev S., Kononkov P., Pivovarov V. Mineral composition of amaranth (Amaranthus L.) seeds of vegetable and grain usage by ARHIVBSP selection. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences, 2018, 12(1): 330-336 (doi: 10.5219/863).
  • Beshkenadze I., Chagelishvili A., Begheluri G., Zhorzholiani N., Gogaladze M., Urotadze S., Klarjeishvili N. New generation premixes for rabbit nutrition. Annals of Agrarian Science, 2016, 14(4): 288-291 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.aasci.2016.06.001
  • De Marco M., Zoon M.V., Margetyal C., Picart C., Ionescu C. Dietary administration of glycine complexed trace minerals can improve performance and slaughter yield in broilers and reduces mineral excretion. Animal Feed Science and Technology, 2017, 232: 182-189 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2017.08.016
  • Canaj A.B., Kakaroni F.E., Collet A., Milios C.J. a-Amino acids: natural and artificial building blocks for discrete polymetallic clusters. Polyhedron, 2018, 151: 1-32 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.poly.2018.05.005
  • Yu X., Chau M.C., Tang W.K., Siu C.K., Yao Z.P. Self-assembled binuclear Cu(II)-histidine complex for absolute configuration and enantiomeric excess determination of naproxen by tandem mass spectrometry. Analytical Chemistry, 2018, 90(6): 4089-4097 ( ).
  • DOI: 10.1021/acs.analchem.7b05407
  • Sajadi S.A.A. Metal ion-binding properties of the L-aspartic acid and tartaric acid, a coparative investigation. How can be increased the dosage of mineral absorption in the body. Advances in Bioscience and Biotechnology, 2010, 1(4): 354-360 ( ).
  • DOI: 10.4236/abb.2010.14047
  • Boles G.C., Hightower R.L., Coates R.A., McNary C.P., Berden G., Oomens J., Armentrout P.B. Experimental and theoretical investigations of infrared multiple photon dissociation spectra of aspartic acid complexes with Zn2+ and Cd2+. The Journal of Physical Chemistry B, 2018, 122(14): 3836-3853 ( ).
  • DOI: 10.1021/acs.jpcb.8b00801
  • Murphy J.M., Gaertner A.A., Williams T., McMillen C.D., Powell B.A., Brumaghim J.L. Stability constant determination of sulfur and selenium amino acids with Cu(II) and Fe(II). Journal of Inorganic Biochemistry, 2019, 195: 20-30 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.jinorgbio.2019.03.001
  • Künzle M., Eckert T., Beck T. Metal-assisted assembly of protein containers loaded with inorganic nanoparticles. Inorganic Chemistry, 2018, 57(21): 13431-13436 ( ).
  • DOI: 10.1021/acs.inorgchem.8b01995
  • Hamley I.W. Protein assemblies: nature-inspired and designed nanostructures. Biomacromolecules, 2019, 20(5): 1829-1848 ( ).
  • DOI: 10.1021/acs.biomac.9b00228
  • Garg M., Sharma N., Sharma S., Kapoor P., Kumar A., Chunduri V., Arora P. Biofortified crops generated by breeding, agronomy, and transgenic approaches are improving lives of millions of people around the world. Frontiers in Nutrition, 2018, 5: 12 ( ).
  • DOI: 10.3389/fnut.2018.00012
  • Biswal B.K., El Sadany M., Kumari D., Sagar P., Singhal N.K., Sharma S., Stobdan T., Shanmugam V. Twin function of zein-zinc coordination complex: wheat nutrient enrichment and nanoshield against pathogenic infection. ACS Sustainable Chemistry & Engineering, 2018, 6(5): 5877-5887 ( ).
  • DOI: 10.1021/acssuschemeng.7b04174
  • Ohata J., Martin S.C., Ball Z.T. Metal-mediated functionalization of natural peptides and proteins: panning for bioconjugation gold. Angewandte Chemie International Edition, 2019, 58(19): 6176-6199 ( ).
  • DOI: 10.1002/anie.201807536
  • Цивилева О.М., Перфильева А.И., Иванова А.А., Павлова А.Г. Биополимерные композиты грибного происхождения против бактериального фитопатогена. Биомика, 2018, 10(2): 210-213 ( ).
  • DOI: 10.31301/2221-6197.bmcs.2018-30
  • Воронин С.П., Голубов И.И., Гуменюк А.П., Синолицкий М.К. Биодоступная форма микроэлементных добавок в кормовые смеси для животных и птиц. Пат. 2411747 (РФ). Заявл. 25.12.2008. Опубл. 20.02.2011. Бюл. № 5.
  • Stamets P. Growing gourmet and medicinal mushrooms. Berkeley, 1993.
  • Amelin V.G., Korotkov A.I., Volkova N.M. High-resolution time-of-flight mass spectrometry combined with high-performance liquid chromatography for detection and determination of quinolones and sulfonamides in foods. Journal of Analytical Chemistry, 2015, 70(14): 1629-1634 ( ).
  • DOI: 10.1134/S1061934815140026
  • Амелин В.Г., Андоралов А.М., Волкова Н.М., Коротков А.И., Никешина Т.Б., Сидоров И.И., Тимофеев А.А. Идентификация и определение токсикантов с использованием стандартной добавки в пищевых продуктах, продовольственном сырье и кормах методом высокоэффективной жидкостной хроматографии/времяпролетной масс-спектрометрии высокого разрешения. Аналитика и контроль, 2015, 19(2): 189-207 ( ).
  • DOI: 10.15826/analitika.2015.19.2.010
  • Hansda A., Kumar V., Anshumali. A comparative review towards potential of microbial cells for heavy metal removal with emphasis on biosorption and bioaccumulation. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2016, 32(10): 170 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11274-016-2117-1
  • Javanbakht V., Alavi S.A., Zilouei H. Mechanisms of heavy metal removal using microorganisms as biosorbent. Water Science and Technology, 2014, 69(9): 1775-1787 ( ).
  • DOI: 10.2166/wst.2013.718
  • Rabinovich M., Figlas D., Delmastro S., Curvetto N. Copper-and zinc-enriched mycelium of Agaricus blazei Murrill: bioaccumulation and bioavailability. Journal of Medicinal Food, 2007, 10(1): 175-183 ( ).
  • DOI: 10.1089/jmf.2005.064
  • Kachlishvili E., Asatiani M.D., Kobakhidze A., Elisashvili V. Evaluation of lignin-modifying enzyme activity of Trametes spp. (Agaricomycetes) isolated from Georgian forests with an emphasis on T. multicolor biosynthetic potential. International Journal of Medicinal Mushrooms, 2018, 20(10): 971-987 ( ).
  • DOI: 10.1615/IntJMedMushrooms.2018028186
  • Lin T.Y., Tseng A.J., Chao C.H., Lu M.K. Microelements induce changes in characterization of sulfated polysaccharides from Antrodia cinnamomea. International Journal of Biological Macromolecules, 2018, 120(A): 952-958 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2018.08.112
  • Majesty D., Ijeoma E., Winner K., Prince O. Nutritional, anti-Nutritional and biochemical studies on the oyster mushroom, Pleurotus ostreatus. EC Nutrition, 2019, 14(1): 36-59.
  • Mutukwa I.B., Hall III C.A., Cihacek L., Lee C.W. Evaluation of drying method and pretreatment effects on the nutritional and antioxidant properties of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus). Journal of Food Processing and Preservation, 2019, 43(4): e13910 ( ).
  • DOI: 10.1111/jfpp.13910
  • Nam W.L., Phang X.Y., Su M.H., Liew R.K., Ma N.L., Rosli M.H.N.B., Lam S.S. Production of bio-fertilizer from microwave vacuum pyrolysis of palm kernel shell for cultivation of Oyster mushroom (Pleurotus ostreatus). Science of The Total Environment, 2018, 624: 9-16 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.scitotenv.2017.12.108
  • Phan C.W., Wang J.K., Tan E.Y.Y., Tan Y.S., Sathiya Seelan J.S., Cheah S.C., Vikineswary S. Giant oyster mushroom, Pleurotus giganteus (Agaricomycetes): current status of the cultivation methods, chemical composition, biological, and health-promoting properties. Food Reviews International, 2019, 35(4): 324-341 ( ).
  • DOI: 10.1080/87559129.2018.1542710
  • Sangeetha K., Senthilkumar G., Panneerselvam A., Sathammaipriya N. Cultivation of oyster mushroom (Pleurotus sp.) using different substrates and evaluate their potentials of antibacterial and phytochemicals. International Journal of Research in Pharmaceutical Sciences, 2019, 10(2), 997-1001 ( ).
  • DOI: 10.26452/ijrps.v10i2.371
  • Vetvicka V., Gover O., Karpovsky M., Hayby H., Danay O., Ezov N., Hadar Y., Schwartz B. Immune-modulating activities of glucans extracted from Pleurotus ostreatus and Pleurotus eryngii. Journal of Functional Foods, 2019, 54: 81-91 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.jff.2018.12.034
  • Zhu B., Li Y., Hu T., Zhang Y. The hepatoprotective effect of polysaccharides from Pleurotus ostreatus on carbon tetrachloride-induced acute liver injury rats. International Journal of Biological Macromolecules, 2019, 131: 1-9 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2019.03.043
  • Pozdnyakova N., Dubrovskaya E., Chernyshova M., Makarov O., Golubev S., Balandina S., Turkovskaya O. The degradation of three-ringed polycyclic aromatic hydrocarbons by wood-inhabiting fungus Pleurotus ostreatus and soil-inhabiting fungus Agaricus bisporus. Fungal Biology, 2018, 122(5): 363-372 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.funbio.2018.02.007
  • Karthikeyan V., Ragunathan R., Johney J., Kabesh K. Production, optimization and purification of laccase produced by Pleurotus ostreatus MH591763. Research & Reviews: A Journal of Microbiology and Virology, 2019, 9(1): 56-64.
  • Noman E., Al-Gheethi A., Mohamed R.M.S.R., Talip B.A. Myco-remediation of xenobiotic organic compounds for a sustainable environment: a critical review. Topics in Current Chemistry, 2019, 377(3): 17 ( ).
  • DOI: 10.1007/s41061-019-0241-8
  • Bamigboye C.O., Oloke J.K., Burton M., Dames J.F., Lateef A. Optimization of the process for producing biomass and exopolysaccharide from the king tuber oyster mushroom, Pleurotus tuber-regium (Agaricomycetes), for biotechnological applications. International Journal of Medicinal Mushrooms, 2019, 21(4): 311-322 ( ).
  • DOI: 10.1615/IntJMedMushrooms.2019030357
  • Zhang W.R., Liu S.R., Kuang Y.B., Zheng S.Z. Development of a novel spawn (block spawn) of an edible mushroom, Pleurotus ostreatus, in liquid culture and its cultivation evaluation. Mycobiology, 2019, 47(1): 97-104 ( ).
  • DOI: 10.1080/12298093.2018.1552648
  • Stajić M., Vukojević J., Knežević A., Milovanović I. Influence of trace elements on ligninolytic enzyme activity of Pleurotus ostreatus and P. pulmonarius. BioResources, 2013, 8(2): 3027-3037 ( ).
  • DOI: 10.15376/biores.8.2.3027-3037
  • Baldrian P., Valášková V., Merhautová V., Gabriel J. Degradation of lignocellulose by Pleurotus ostreatus in the presence of copper, manganese, lead and zinc. Research in Microbiology, 2005, 156(5-6): 670-676 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.resmic.2005.03.007
  • Yan H., Chang H. Antioxidant and antitumor activities of selenium-and zinc-enriched oyster mushroom in mice. Biological Trace Element Research, 2012, 150(1-3): 236-241 ( ).
  • DOI: 10.1007/s12011-012-9454-1
  • Ma X.K., Zhang H., Fam H. Influence of rutin, FeSO4, Tween 80, aspartate and complex vitamins on synthesis of fungal exopolysaccharide. Carbohydrate Polymers, 2013, 92(2): 1188-1196 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.carbpol.2012.10.027
  • Glukhova L.B., Frank Y.A., Danilova E.V., Avakyan M.R., Banks D., Tuovinen O.H., Karnachuk O.V. Isolation, characterization, and metal response of novel, acid-tolerant Penicillium spp. from extremely metal-rich waters at a mining site in Transbaikal (Siberia, Russia). Microbial Ecology, 2018, 76(4): 911-924 ( ).
  • DOI: 10.1007/s00248-018-1186-0
  • Ramesh G., Podila G.K., Gay G., Marmeisse R., Reddy M.S. Different patterns of regulation for the copper and cadmium metallothioneins of the ectomycorrhizal fungus Hebeloma cylindrosporum. Applied and Environmental Microbiology, 2009, 75(8): 2266-2274 ( ).
  • DOI: 10.1128/AEM.02142-08
  • Панкратов А.Н., Цивилева О.М., Цымбал О.А., Юрасов Н.А. Каналы фрагментации молекулярных ионов ГХ-МС-регистрируемых компонентов сред глубинного культивирования базидиомицета шиитаке в присутствии диацетофенонилселенида. Изомеризация дигидрофуранов и их катион-радикалов. Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология, 2015, 15(3): 16-25 ( ).
  • DOI: 10.18500/1816-9775-2015-15-3-16-25
  • Tsivileva O.M., Pankratov A.N., Misin V.M., Zavyalov A.Yu., Volkov V.A., Tsymbal O.A., Yurasov N.A., Nikitina V.E. Antioxidant properties of the Artist's Conk medicinal mushroom, Ganoderma applanatum (Agaricomycetes), upon cultivation with para-substituted phenolic compounds and tea leaf extracts. International Journal of Medicinal Mushrooms, 2018, 20(6): 549-560 ( ).
  • DOI: 10.1615/IntJMedMushrooms.2018026329
  • Древко Б.И., Древко Р.И., Антипов В.А., Чернуха Б.А., Яковлев А.Н. Средство для лечения и профилактики инфекционных заболеваний и отравлений животных и птиц, повышающее их продуктивность и сохранность. Пат. 2171110 (РФ) МПК 7 A 61 K 33/04. Заявл. 26.05.1999. Опубл. 27.07.2001. Бюл. № 21.
  • Шарофова М.У., Сагдиева Ш.С., Абдуллаев С.Ф., Маслов В.А., Рахими Ф., Миршахи М. К вопросу о содержании переходных элементов в структурах растений. Доклады Академии наук Республики Таджикистан, 2018, 61(4): 350-359.
  • Khokhlova E.A., Kachala V.V., Ananikov V.P. Conversion of carbohydrates to 5-hydroxy-methylfurfural: the nature of the observed selectivity decrease and microwave radiation effect. Russian Chemical Bulletin, 2013, 62(3): 830-835 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11172-013-0112-3
  • Sharma V.K., Choi J., Sharma N., Choi M., Seo S.-Y. In vitro anti-tyrosinase activity of 5-(hydroxymethyl)-2-furfural isolated from Dictyophora indusiata. Phytotherapy Research, 2004, 18(10): 841-844 ( ).
  • DOI: 10.1002/ptr.1428
  • Kim Y.M., Yun J., Lee C.-K., Lee H., Min K.R., Kim Y. Oxyresveratrol and hydroxystilbene compounds inhibitory effect on tyrosinase and mechanism of action. Journal of Biological Chemistry, 2002, 277(18): 16340-16344 ( ).
  • DOI: 10.1074/jbc.M200678200
  • Razak D.L.A., Fadzil N.H.M., Jamaluddin A., Rashid N.Y.A., Sani N.A., Manan M.A. Effects of different extracting conditions on anti-tyrosinase and antioxidant activities of Schizophyllum commune fruit bodies. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 2019, 19: 101116 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.bcab.2019.101116
  • Çayan F., Tel G., Duru M.E., Öztürk M., Türkoğlu A., Harmandar M. Application of GC, GC-MSD, ICP-MS and spectrophotometric methods for the determination of chemical composition and in vitro bioactivities of Chroogomphus rutilus: the edible mushroom species. Food Analytical Methods, 2014, 7(2): 449-458 ( ).
  • DOI: 10.1007/s12161-013-9644-2
  • Tel G., Deveci E., Küçükaydın S., Özler M.A., Duru M.E., Harmandar M. Evaluation of antioxidant activity of Armillaria tabescens, Leucopaxillus gentianeus and Suillus granulatus: the mushroom species from Anatolia. Eurasian Journal of Analytical Chemistry, 2013, 8(3): 136-147.
  • Chen J.-T., Su H.-J., Huang J.-W. Isolation and identification of secondary metabolites of Clitocybe nuda responsible for inhibition of zoospore germination of Phytophthora capsici. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2012, 60(30): 7341-7344 ( ).
  • DOI: 10.1021/jf301570y
  • Cheung L.M., Cheung P.C.K., Ooi V.E.C. Antioxidant activity and total phenolics of edible mushroom extracts. Food Chemistry, 2003, 81(2): 249-255 (
  • DOI: 10.1016/S0308-8146(02)00419-3)
  • Karpukhina G.V., Emanuel N.M. Classification of synergistic mixtures of antioxidants and synergism mechanisms. Doklady Akademii Nauk SSSR, 1984, 276(5): 1163-1167.
  • Burlakova E.B., Mazaletskaya L.I., Sheludchenko N.I., Shishkina L.N. Inhibitory effect of the mixtures of phenol antioxidants and phosphatidylcholine. Russian Chemical Bulletin, 1995, 44(6): 1014-1020 ( ).
  • DOI: 10.1007/BF00707045
  • Mazaletskaya L.I., Sheludchenko N.I., Shishkina L.N. Role of the nitrogen-containing moiety of phosphatidylcholines in the mechanism of inhibiting action of their mixtures with natural and synthetic antioxidants. Petroleum Chemistry, 2008, 48(2): 105-111 ( ).
  • DOI: 10.1134/S0965544108020059
  • Lanfranco L., Novero M., Bonfante P. The mycorrhizal fungus Gigaspora margarita possesses a CuZn superoxide dismutase that is up-regulated during symbiosis with legume hosts. Plant Physiology, 2005, 137(4): 1319-1330 ( ).
  • DOI: 10.1104/pp.104.050435
  • Sharma S.S., Dietz K.J. The significance of amino acids and amino acid-derived molecules in plant responses and adaptation to heavy metal stress. Journal of Experimental Botany, 2006, 57(4): 711-726 ( ).
  • DOI: 10.1093/jxb/erj073
  • Aguilar F. Manganese ascorbate, manganese aspartate, manganese bisglycinate and manganese pidolate as sources of manganese added for nutritional purposes to food supplements. European Food Safety Authority Journal, 2009, 7(6): 1114.
  • Mohamed E.T., Said A.I., El-Sayed S.A. Protective effect of zinc aspartate against acetaminophen induced hepato-renal toxicity in albino rats. Journal of Radiation Research and Applied Sciences, 2011, 4(2(B)): 709-723.
  • Le Prell C.G., Ojano-Dirain C., Rudnick E.W., Nelson M.A., DeRemer S.J., Prieskorn D.M., Miller J.M. Assessment of nutrient supplement to reduce gentamicin-induced ototoxicity. Journal of the Association for Research in Otolaryngology, 2014, 15(3): 375-393 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10162-014-0448-x
  • Afanas'ev I.B., Suslova T.B., Cheremisina Z.P., Abramova N.E., Korkina L.G. Study of antioxidant properties of metal aspartates. Analyst, 1995, 120(3): 859-862 ( ).
  • DOI: 10.1039/AN9952000859
  • Özkan K.U., Boran C., Kilinc M., Garipardic M., Kurutaş E.B. The effect of zinc aspartate pretreatment on ischemia-reperfusion injury and early changes of blood and tissue antioxidant enzyme activities after unilateral testicular torsion-detorsion. Journal of Pediatric Surgery, 2004, 39(1): 91-95 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.jpedsurg.2003.09.013
  • Турковская О.В., Дубровская Е.В., Гринев В.С., Баландина С.А., Позднякова Н.Н. Деструктивная активность и продукция внеклеточных пероксидаз у микромицетов с различной экологической стратегией. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(1): 65-75 ( ).
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2019.1.65rus
Еще
Статья научная