Взаимодействие растений с наночастицами благородных металлов

Автор: Дыкман Л.А., Щголев С.Ю.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры

Статья в выпуске: 1 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Золотые и серебряные наночастицы находят применение в разнообразной биомедицинской практике в качестве носителей лекарственных веществ, усилителей и (или) преобразователей оптического сигнала, иммуномаркеров и др. В обзоре систематизированы результаты публикаций последних лет (2007-2016 годы), демонстрирующие разнообразные итоги воздействия наночастиц золота и серебра на состояние, рост и продуктивность высших растений. Возможная фитотоксичность этих наночастиц активно изучается фактически не более 10 лет. Актуальность подобных исследований связана с установлением целого ряда факторов природного и техногенного характера, приводящих к взаимодействиям растений с наночастицами (B.P. Colman с соавт., 2013; N.G. Khlebtsov с соавт., 2011). О положительном или отрицательном влиянии наночастиц на клетки растений и растительный организм известно очень немного, и эти данные весьма противоречивы (P. Manchikanti с соавт., 2010; M. Carrière с соавт., 2012; C. Remédios с соавт., 2012; N. Zuverza-Mena с соавт., 2016), но не вызывает сомнений, что химическая природа, размер, форма, поверхностный заряд и вводимая доза относятся к основным факторам, обусловливающим процессы внутриклеточного проникновения наночастиц. Объектами наблюдений были как модельные (арабидопсис), так и культурные (соя, рапс, бобы, рис, редька, томаты, тыква) растения. Показано, что наночастицы серебра токсичнее наночастиц золота, что обусловлено более активной диффузией ионов серебра с их поверхности. Известно, что ионы серебра эффективно ингибируют биосинтез этилена, регулирующего в растении процессы при стрессе, старении (созревании) и др., в то время как ионы золота не влияют на биосинтез и сигналинг этого фитогормона. В целом токсичность ионов металлов заметно превосходит таковую у наночастиц. Механизм фитотоксического действия наночастиц зачастую связывают с накоплением в тканях растения активных форм кислорода. Перспективным подходом при продолжении исследований представляется использование суспензионных культур клеток (E. Planchet с соавт., 2015). Таким образом, проблема фитотоксичности наночастиц далека от убедительного решения. Срок, в течение которого эти исследования проводятся, по-видимому, еще мал для того, чтобы все аспекты проблемы были выяснены так, как того требуют принципы биобезопасности. Противоречивые (зачастую противоположные) данные о влиянии наночастиц золота и серебра на растения объясняются, на наш взгляд, различиями в условиях экспериментов (неодинаковые размеры и заряды наночастиц, вводимые дозы, длительность наблюдения и др.). Однако полученные результаты с очевидностью выявляют необходимость скоординированной программы исследований для установления корреляций между параметрами частиц, дизайном эксперимента и наблюдаемыми биологическими эффектами.

Еще

Золотые наночастицы, серебряные наночастицы, токсичность, биологические эффекты, растения

Короткий адрес: https://sciup.org/142213757

IDR: 142213757   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.13rus

Список литературы Взаимодействие растений с наночастицами благородных металлов

  • Shchyogolev S.Y. On nanotechnologies in biological research and on the role of biological knowledge in their development. In: Gold nanoparticles: properties, characterization and fabrication/P.E. Chow (ed.). Nova Sci. Publ., NY, 2010: 277-285.
  • Schwab F., Zhai G., Kern M., Turner A., Schnoor J.L., Wiesner M.R. Barriers, pathways and processes for uptake, translocation and accumulation of nanomaterials in plants -Critical review. Nanotoxicology, 2016, 10: 257-278 ( ) DOI: 10.3109/17435390.2015.1048326
  • Sengupta J., Ghosh S., Datta P., Gomes A. Physiologically important metal nanoparticles and their toxicity. J. Nanosci. Nanotechnol., 2014, 14: 990-1006 ( ) DOI: 10.1166/jnn.2014.9078
  • Dreaden E.C., Alkilany A.M., Huang X., Murphy C.J., El-Sayed M.A. The golden age: gold nanoparticles for biomedicine. Chem. Soc. Rev., 2012, 41: 2740-2779 ( ) DOI: 10.1039/c1cs15237h
  • Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Gold nanoparticles in biomedical applications: recent advances and perspectives. Chem. Soc. Rev., 2012, 41: 2256-2282 ( ) DOI: 10.1039/C1CS15166E
  • Hendren C.O., Mesnard X., Dröge J., Wiesner M.R. Estimating production data for five engineered nanomaterials as a basis for exposure assessment. Environ. Sci. Technol., 2011, 45: 2562-2569 ( ) DOI: 10.1021/es103300g
  • Piccinno F., Gottschalk F., Seeger S., Nowack B. Industrial production quantities and uses of ten engineered nanomaterials in Europe and the world. J. Nanopart. Res., 2012, 14: 1109 ( ) DOI: 10.1007/s11051-012-1109-9
  • Geisler-Lee J., Brooks M., Gerfen J.R., Wang Q., Fotis C., Sparer A., Ma X., Berg R.H., Geisler M. Reproductive toxicity and life history study of silver nanoparticle effect, uptake and transport in Arabidopsis thaliana. Nanomaterials, 2014, 4: 301-318 ( ) DOI: 10.3390/nano4020301
  • Colman B.P., Arnaout C.L., Anciaux S., Gunsch C.K., Hochella M.F., Jr., Kim B., Lowry G.V., McGill B.M., Reinsch B.C., Richardson C.J., Unrine J.M., Wright J.P., Yin L., Bernhardt M.S. Low concentrations of silver nanoparticles in biosolids cause adverse ecosystem responses under realistic field scenario. PLoS ONE, 2013, 8: e57189 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0057189
  • Alkilany A., Murphy C. Toxicity and cellular uptake of gold nanoparticles: what we have learned so far? J. Nanopart. Res., 2010, 12: 2313-2333 ( ) DOI: 10.1007/s11051-010-9911-8
  • Khlebtsov N.G., Dykman L.A. Biodistribution and toxicity of engineered gold nanoparticles: A review of in vitro and in vivo studies. Chem. Soc. Rev., 2011, 40: 1647-1671 ( ) DOI: 10.1039/c0cs00018c
  • Lewinski N., Colvin V., Drezek R. Cytotoxicity of nanoparticles. Small, 2008, 4: 26-49 ( ) DOI: 10.1002/smll.200700595
  • Ivask A., Kurvet I., Kasemets K., Blinova I., Aruoja V., Suppi S., Vija H., Käkinen A., Titma T., Heinlaan M., Visnapuu M., Koller D., Kisand V., Kahru A. Size-dependent toxicity of silver nanoparticles to bacteria, yeast, algae, crustaceans and mammalian cells in vitro. PLoS ONE, 2014, 9: e102108 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0102108
  • Azhdarzadeh M., Saei A.A., Sharifi S., Hajipour M.J., Alkilany A.M., Sharifzadeh M., Ramazani F., Laurent S., Mashaghi A., Mahmoudi M. Nanotoxicology: advances and pitfalls in research methodology. Nanomedicine (Lond.), 2015, 10: 2931-2952 ( ) DOI: 10.2217/nnm.15.130
  • Carneiro M.F.H., Barbosa F., Jr. Gold nanoparticles: A critical review of therapeutic applications and toxicological aspects. J. Tox. Environ. Health B, 2016, 19: 129-148 ( ) DOI: 10.1080/10937404.2016.1168762
  • Manchikanti P., Bandopadhyay T.K. Nanomaterials and effects on biological systems: development of effective regulatory norms. Nanoethics, 2010, 4: 77-83 ( ) DOI: 10.1007/s11569-010-0084-9
  • Carrière M., Larue C. Toxicology: plants and nanoparticles. In: Encyclopedia of nanotechnology/B. Bhushan (ed.). Springer, NY, 2012: 2763-2767.
  • Masarovičová E., Kráľová K. Metal nanoparticles and plants. Ecol. Chem. Eng. S, 2013, 20: 9-22 ( ) DOI: 10.2478/eces-2013-0001
  • Remédios C., Rosário F., Bastos V. Environmental nanoparticles interactions with plants: morphological, physiological, and genotoxic aspects. J. Botany, 2012, 2012: Article ID 751686 ( ) DOI: 10.1155/2012/751686
  • Nanotechnology and plant sciences. Nanoparticles and their impact on plants/M.H. Siddiqui, M.H. Al-Whaibi, F. Mohammad (eds.). Springer, NY, 2015 ( ) DOI: 10.1007/978-3-319-14502-0
  • Hough R.M., Noble R.R.P., Hitchen G.J., Hart R., Reddy S.M., Saunders M., Clode P., Vaughan D., Lowe J., Gray D.J., Anand R.R., Butt C.R.M., Verrall M. Naturally occurring gold nanoparticles and nanoplates. Geology, 2008, 36: 571-574 ( ) DOI: 10.1130/G24749A.1
  • Iravani S. Green synthesis of metal nanoparticles using plants. Green Chem., 2011, 13: 2638-2650 ( ) DOI: 10.1039/C1GC15386B
  • Shukla D., Krishnamurthy S., Sahi S.V. Microarray analysis of Arabidopsis under gold exposure to identify putative genes involved in the synthesis of gold nanoparticles (AuNPs). Genom. Data, 2015, 3: 100-102 ( ) DOI: 10.1016/j.gdata.2014.12.001
  • Eggenberger K., Frey N., Zienicke B., Siebenbrock J., Schunck T., Fischer R., Bräse S., Birtalan E., Nann T., Nick P. Use of nanoparticles to study and manipulate plant cells. Adv. Eng. Mat., 2010, 12: B406-B412.
  • Bhatt I., Tripathi B.N. Interaction of engineered nanoparticles with various components of the environment and possible strategies for their risk assessment. Chemosphere, 2011, 82: 308-317 ( ) DOI: 10.1016/j.chemosphere.2010.10.011
  • Thul S.T., Sarangi B.K., Pandey R.A. Nanotechnology in agroecosystem: implications on plant productivity and its soil environment. Expert Opin. Environ. Biol., 2013, 2: 1 ( ) DOI: 10.4172/2325-9655.1000101
  • Thwala M., Klaine S.J., Musee N. Interactions of metal-based engineered nanoparticles with aquatic higher plants: A review of the state of current knowledge. Environ. Toxicol. Chem., 2016, 35: 1677-1694 ( ) DOI: 10.1002/etc.3364
  • Quigg A., Chin W.-C., Chen C.-S., Zhang S., Jiang Y., Miao A.-J., Schwehr K.A., Xu C., Santschi P.H. Direct and indirect toxic effects of engineered nanoparticles on algae: role of natural organic matter. ACS Sustainable Chem. Eng., 2013, 1: 686-702 ( ) DOI: 10.1021/sc400103x
  • Moreno-Garrido I., Pérez S., Blasco J. Toxicity of silver and gold nanoparticles on marine microalgae. Mar. Environ. Res., 2015, 111: 60-73 ( ) DOI: 10.1016/j.marenvres.2015.05.008
  • Богатырев В.А., Голубев А.А., Селиванов Н.Ю., Прилепский А.Ю., Букина О.Г., Пылаев Т.Е., Бибикова О.А., Дыкман Л.А., Хлебцов Н.Г. Лабораторная тест-система оценки токсичности наноматериалов для микроводоросли Dunaliella salina. Российские нанотехнологии, 2015, 10: 92-99.
  • Golubev A.A., Prilepskii A.Y., Dykman L.A., Khlebtsov N.G., Bogatyrev V.A. Colorimetric evaluation of the viability of the microalga Dunaliella salina as a test tool for nanomaterial toxicity. Tox. Sci., 2016, 151: 115-125 ( ) DOI: 10.1093/toxsci/kfw023
  • Navarro E., Baun A., Behra R., Hartmann N.B., Filser J., Miao A.-J., Quigg A., Santschi P.H., Sigg L. Environmental behavior and ecotoxicity of engineered nanoparticles to algae, plants, and fungi. Ecotoxicology, 2008, 17: 372-386 ( ) DOI: 10.1007/s10646-008-0214-0
  • Li H., Ye X., Guo X., Geng Z., Wang G. Effects of surface ligands on the uptake and transport of gold nanoparticles in rice and tomato. J. Hazard. Mater., 2016, 314: 188-196 ( ) DOI: 10.1016/j.jhazmat.2016.04.043
  • Moscatelli A., Ciampolini F., Rodighiero S., Onelli E., Cresti M., Santo N., Idilli A. Distinct endocytic pathways identified in tobacco pollen tubes using charged nanogold. J. Cell Sci., 2007, 120: 3804-3819 ( ) DOI: 10.1242/jcs.012138
  • Onelli E., Prescianotto-Baschong C., Caccianiga M., Moscatelli A. Clathrin-dependent and independent endocytic pathways in tobacco protoplasts revealed by labelling with charged nanogold. J. Exp. Bot., 2008, 59: 3051-3068 ( ) DOI: 10.1093/jxb/ern154
  • Su Y.H., Tu S.-L., Tseng S.-W., Chang Y.-C., Chang S.-H., Zhang W.-M. Influence of surface plasmon resonance on the emission intermittency of photoluminescence from gold nano-sea-urchins. Nanoscale, 2010, 2: 2639-2646 ( ) DOI: 10.1039/c0nr00330a
  • González-Melendi P., Fernández-Pacheco R., Coronado M.J., Corredor E., Testillano P.S., Risueño M.C., Marquina C., Ibarra M.R., Rubiales D., Pérez-de-Luque A. Nanoparticles as smart treatment-delivery systems in plants: assessment of different techniques of microscopy for their visualization in plant tissues. Ann. Bot., 2008, 101: 187-195 ( ) DOI: 10.1093/aob/mcm283
  • Torney F., Trewyn B.G., Lin V.S.-Y., Wang K. Mesoporous silica nanoparticles deliver DNA and chemicals into plants. Nat. Nanotechnol., 2007, 2: 295-300 ( ) DOI: 10.1038/nnano.2007.108
  • Wang W.-N., Tarafdar J.C., Biswas P. Nanoparticle synthesis and delivery by an aerosol route for watermelon plant foliar uptake. J. Nanopart. Res., 2013, 15: 1417 ( ) DOI: 10.1007/s11051-013-1417-8
  • Khodakovskaya M., Dervishi E., Mahmood M., Xu Y., Li Z., Watanabe F., Biris A.S. Carbon nanotubes are able to penetrate plant seed coat and dramatically affect seed germination and plant growth. ACS Nano, 2009, 3: 3221-3227 ( ) DOI: 10.1021/nn900887m
  • Koelmel J., Leland T., Wang H., Amarasiriwardena D., Xing B. Investigation of gold nanoparticles uptake and their tissue level distribution in rice plants by laser ablation-inductively coupled-mass spectrometry. Environ. Pollut., 2013, 174: 222-228 ( ) DOI: 10.1016/j.envpol.2012.11.026
  • Judy J.D., Unrine J.M., Rao W., Wirick S., Bertsch A.M. Bioavailability of gold nanomaterials to plants: importance of particle size and surface coating. Environ. Sci. Technol., 2012, 46: 8467-8474 ( ) DOI: 10.1021/es3019397
  • Feichtmeier N.S., Walther P., Leopold K. Uptake, effects, and regeneration of barley plants exposed to gold nanoparticles. Environ. Sci. Pollut. Res. Int., 2015, 22: 8549-8558 ( ) DOI: 10.1007/s11356-014-4015-0
  • Hwang B.G., Ahn S., Lee S.J. Use of gold nanoparticles to detect water uptake in vascular plants. PLoS ONE, 2014, 9: e114902 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0114902
  • Zhu Z.-J., Wang H., Yan B., Zheng H., Jiang Y., Miranda O.R., Rotello V.M., Xing B., Vachet R.W. Effect of surface charge on the uptake and distribution of gold nanoparticles in four plant species. Environ. Sci. Technol., 2012, 46: 12391-12398 ( ) DOI: 10.1021/es301977w
  • Zhai G., Walters K.S., Peate D.W., Alvarez P.J., Schnoor J.L. Transport of gold nanoparticles through plasmodesmata and precipitation of gold ions in woody poplar. Environ. Sci. Technol. Lett., 2014, 1: 146-151 ( ) DOI: 10.1021/ez400202b
  • Boenigk J., Beisser D., Zimmermann S., Bock C., Jakobi J., Grabner D., Großmann L., Rahmann S., Barcikowski S., Sures B. Effects of silver nitrate and silver nanoparticles on a planktonic community: general trends after short-term exposure. PLoS ONE, 2014, 9: e95340 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0095340
  • Judy J.D., Unrine J.M., Bertsch A.M. Evidence for biomagnification of gold nanoparticles within a terrestrial food chain. Environ. Sci. Technol., 2011, 45: 776-781 ( ) DOI: 10.1021/es103031a
  • Ferry J.L., Craig P., Hexel C., Sisco P., Frey R., Pennington P.L., Fulton M.H., Scott G., Decho A.W., Kashiwada S., Murphy C.J., Shaw T.J. Transfer of gold nanoparticles from the water column to the estuarine food web. Nat. Nanotechnol., 2009, 4: 441-444 ( ) DOI: 10.1038/nnano.2009.157
  • Ma X., Geiser-Lee J., Deng Y., Kolmakov A. Interactions between engineered nanoparticles (ENPs) and plants: Phytotoxicity, uptake and accumulation. Sci. Total Environ., 2010, 408: 3053-3061 ( ) DOI: 10.1016/j.scitotenv.2010.03.031
  • Dietz K.J., Herth S. Plant nanotoxicology. Trends Plant Sci., 2011, 16: 582-589 ( ) DOI: 10.1016/j.tplants.2011.08.003
  • Rico C.M., Majumdar S., Duarte-Gardea M., Peralta-Videa J.R., Gardea-Torresdey J.L. Interaction of nanoparticles with edible plants and their possible implications in the food chain. J. Agric. Food Chem., 2011, 59: 3485-3498 ( ) DOI: 10.1021/jf104517j
  • Wilson-Corral V., Anderson C.W., Rodriguez-Lopez M. Gold phytomining. A review of the relevance of this technology to mineral extraction in the 21st century. J. Environ. Manage., 2012, 111: 249-257 ( ) DOI: 10.1016/j.jenvman.2012.07.037
  • Aslani F., Bagheri S., Muhd Julkapli N., Juraimi A.S., Hashemi F.S., Baghdadi A. Effects of engineered nanomaterials on plants growth: An overview. Sci. World J., 2014, 2014: Article ID 641759 ( ) DOI: 10.1155/2014/641759
  • Arruda S.C., Silva A.L., Galazzi R.M., Azevedo R.A., Arruda M.A. Nanoparticles applied to plant science: A review. Talanta, 2015, 131: 693-705 ( ) DOI: 10.1016/j.talanta.2014.08.050
  • Chichiriccò G., Poma A. Penetration and toxicity of Nanomaterials in higher plants. Nanomaterials, 2015, 5: 851-873 ( ) DOI: 10.3390/nano5020851
  • Arora S., Sharma P., Kumar S., Nayan R., Khanna P.K., Zaidi M.G.H. Gold-nanoparticle induced enhancement in growth and seed yield of Brassica juncea. Plant Growth Regul., 2012, 66: 303-310 ( ) DOI: 10.1007/s10725-011-9649-z
  • Gunjan B., Zaidi M.G.H., Sandeep A. Impact of gold nanoparticles on physiological and biochemical characteristics of Brassica juncea. J. Plant Biochem. Physiol., 2014, 2: 133 ( ) DOI: 10.4172/2329-9029.1000133
  • Sharma P., Bhatt D., Zaidi M.G.H., Saradhi P.P., Khanna P.K., Arora S. Silver nanoparticle-mediated enhancement in growth and antioxidant status of Brassica juncea. Appl. Biochem. Biotechnol., 2012, 167: 2225-2233 ( ) DOI: 10.1007/s12010-012-9759-8
  • Sabo-Attwood T., Unrine J.M., Stone J.W., Murphy C.J., Ghoshroy S., Blom D., Bertsch P.M., Newman L.A. Uptake, distribution and toxicity of gold nanoparticles in tobacco (Nicotiana xanthi) seedlings. Nanotoxicology, 2012, 6: 353-360 ( ) DOI: 10.3109/17435390.2011.579631
  • Falco W.F., Botero E.R., Falcão E.A., Santiago E.F., Bagnato V.S., Caires A.R.L. In vivo observation of chlorophyll fluorescence quenching induced by gold nanoparticles. J. Photochem. Photobiol. A, 2011, 225: 65-71 ( ) DOI: 10.1016/j.jphotochem.2011.09.027
  • Glenn J.B., White S.A., Klaine S.J. Interactions of gold nanoparticles with freshwater aquatic macrophytes are size and species dependent. Environ. Toxicol. Chem., 2012, 31: 194-201 ( ) DOI: 10.1002/etc.728
  • Остроумов С.А., Поклонов В.А., Котелевцев С.В., Орлов С.Н. Токсич-ность наночастиц золота для растений в экспериментальной водной системе. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология, 2014, 3: 19-23.
  • Гусев А.А., Акимова О.А., Крутяков Ю.А., Климов А.И., Денисов А.Н., Кузнецов Д.В., Годымчук А.Ю., Ихалайнен Е.С. Влияние высокодисперсных частиц различной природы на ранние стадии онтогенеза растений рапса (Brassica napus). Науковедение, 2013, 5: 11ТВН513. Режим доступа: http://naukovedenie.ru/PDF/11tvn513.pdf. Дата обращения 30.01.2017.
  • Savithramma N., Ankanna S., Bhumi G. Effect of nanoparticles on seed germination and seedling growth of Boswellia ovalifoliolata -an endemic and endangered medicinal tree taxon. Nano Vision, 2012, 2: 61-68.
  • An J., Zhang M., Wang S., Tang J. Physical, chemical and microbiological changes in stored green asparagus spears as affected by coating of silver nanoparticles-PVP. LWT Food Sci. Technol., 2008, 41: 1100-1107 ( ) DOI: 10.1016/j.lwt.2007.06.019
  • Abd-Alla M.H., Nafady N.A., Khalaf D.M. Assessment of silver nanoparticles contamination on faba bean-Rhizobium leguminosarum bv. viciae-Glomus aggregatum symbiosis: Implications for induction of autophagy process in root nodule. Agric. Ecosyst. Environ., 2016, 218: 163-177 ( ) DOI: 10.1016/j.agee.2015.11.022
  • Song U., Jun H., Waldman B., Roh J., Kim Y., Yi J., Lee E.J. Functional analyses of nanoparticle toxicity: A comparative study of the effects of TiO2 and Ag on tomatoes (Lycopersicon esculentum). Ecotoxicol. Environ. Saf., 2013, 93: 60-67 ( ) DOI: 10.1016/j.ecoenv.2013.03.033
  • Zuverza-Mena N., Armendariz R., Peralta-Videa J.R., Gardea-Torresdey J.L. Effects of silver nanoparticles on radish sprouts: root growth reduction and modifications in the nutritional value. Front. Plant Sci., 2016, 7: 90 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2016.00090
  • Doolette C.L., McLaughlin M.J., Kirby J.K., Navarro D.A. Bioavailability of silver and silver sulfide nanoparticles to lettuce (Lactuca sativa): Effect of agricultural amendments on plant uptake. J. Hazard. Mater., 2015, 300: 788-795 ( ) DOI: 10.1016/j.jhazmat.2015.08.012
  • Barrena R., Casals E., Colуn J., Font X., Sánchez A., Puntes V. Evaluation of the ecotoxicity of model nanoparticles. Chemosphere, 2009, 75: 850-857 ( ) DOI: 10.1016/j.chemosphere.2009.01.078
  • Galazzi R.M., de Barros Santos E., Caurin T., de Souza Pessôa G., Mazali I.O., Arruda M.A.Z. The importance of evaluating the real metal concentration in nanoparticles post-synthesis for their applications: A case-study using silver nanoparticles. Talanta, 2016, 146: 795-800 ( ) DOI: 10.1016/j.talanta.2015.06.016
  • Mirzajani F., Askari H., Hamzelou S., Farzaneh M., Ghassempour A. Effect of silver nanoparticles on Oryza sativa L. and its rhizosphere bacteria. Ecotoxicol. Environ. Saf., 2013, 88: 48-54 ( ) DOI: 10.1016/j.ecoenv.2012.10.018
  • Gubbins E.J., Batty L.C., Lead J.R. Phytotoxicity of silver nanoparticles to Lemna minor L. Environ. Pollut., 2011, 59: 1551-1559 ( ) DOI: 10.1016/j.envpol.2011.03.002
  • Lee W.M., Kwak J.I., An Y.J. Effect of silver nanoparticles in crop plants Phaseolus radiatus and Sorghum bicolor: Media effect on phytotoxicity. Chemosphere, 2012, 86: 491-499 ( ) DOI: 10.1016/j.chemosphere.2011.10.013
  • Jiang H.S., Qiu X.N., Li G.B., Li W., Yin L.Y. Silver nanoparticles induced accumulation of reactive oxygen species and alteration of antioxidant systems in the aquatic plant Spirodela polyrhiza. Environ. Toxicol. Chem., 2014, 33: 1398-1405 ( ) DOI: 10.1002/etc.2577
  • Musante C., White J.C. Toxicity of silver and copper to Cucurbita pepo: differential effects of nano and bulk-size particles. Environ. Toxicol., 2012, 27: 510-517 ( ) DOI: 10.1002/tox.20667
  • Taylor A. Gold uptake and tolerance in Arabidopsis. PhD Thesis. University of York, York (UK), 2011. Режим доступа: http://etheses.whiterose.ac.uk/2002/. Дата обращения 30.01.2017.
  • Kaveh R., Li Y.-S., Ranjbar S., Tehrani R., Brueck C.L., Van Aken B. Changes in Arabidopsis thaliana gene expression in response to silver nanoparticles and silver ions. Environ. Sci. Technol., 2013, 47: 10637-10644 ( ) DOI: 10.1021/es402209w
  • Koo Y., Lukianova-Hleb E.Y., Pan J., Thompson S.M., Lapotko D.O., Braam J. In planta response of Arabidopsis to photothermal impact mediated by gold nanoparticles. Small, 2016, 12: 623-630 ( ) DOI: 10.1002/smll.201502461
  • Bao D., Oh Z.G., Chen Z. Characterization of silver nanoparticles internalized by Arabidopsis plants using single particle ICP-MS analysis. Front. Plant Sci., 2016, 7: 32 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2016.00032
  • Kumar V., Guleria P., Kumar V., Yadav S.K. Gold nanoparticle exposure induces growth and yield enhancement in Arabidopsis thaliana. Sci. Total Environ., 2013, 461-462: 462-468 ( ) DOI: 10.1016/j.scitotenv.2013.05.018
  • Taylor A.F., Rylott E.L., Anderson C.W.N., Bruce N.C. Investigating the toxicity, uptake, nanoparticle formation and genetic response of plants to gold. PLoS ONE, 2014, 9: e93793 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0093793
  • Shukla D., Krishnamurthy S., Sahi S.V. Genome wide transcriptome analysis reveals ABA mediated response in Arabidopsis during gold (AuCl4-) treatment. Front. Plant Sci., 2014, 5: 652 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2014.00652
  • Notter D.A., Mitrano D.M., Nowack B. Are nanosized or dissolved metals more toxic in the environment? A meta-analysis. Environ. Toxicol. Chem., 2014, 33: 2733-2739 ( ) DOI: 10.1002/etc.2732
  • Geisler-Lee J., Wang Q., Yao Y., Zhang W., Geisler M., Li K., Huang Y., Chen Y., Kolmakov A., Ma X. Phytotoxicity, accumulation and transport of silver nanoparticles by Arabidopsis thaliana. Nanotoxicology, 2013, 7: 323-337 ( ) DOI: 10.3109/17435390.2012.658094
  • Wang J., Koo Y., Alexander A., Yang Y., Westerhof S., Zhang Q., Schnoor J.L., Colvin V.L., Braam J., Alvarez P.J.J. Phytostimulation of poplars and Arabidopsis exposed to silver nanoparticles and Ag+ at sublethal concentrations. Environ. Sci. Technol., 2013, 47: 5442-5449 ( ) DOI: 10.1021/es4004334
  • Syu Y.-Y., Hung J.-H., Chen J.-C., Chuang H.-W. Impacts of size and shape of silver nanoparticles on Arabidopsis plant growth and gene expression. Plant Physiol. Biochem., 2014, 83: 57-64.
  • Kumar V., Parvatam G., Ravishankar G.A. AgNO3 -a potential regulator of ethylene activity and plant growth modulator. Electron. J. Biotechnol., 2009, 12(2): 1 ( ) DOI: 10.2225/vol12-issue2-fulltext-1
  • Binder B.M., Rodriguez F.I., Bleecker A.B., Patterson S.E. The effects of Group 11 transition metals, including gold, on ethylene binding to the ETR1 receptor and growth of Arabidopsis thaliana. FEBS Lett., 2007, 581: 5105-5109 ( ) DOI: 10.1016/j.febslet.2007.09.057
  • Sosan A., Svistunenko D., Straltsova D., Tsiurkina K., Smolich I., Lawson T., Subramaniam S., Golovko V., Anderson D., Sokolik A., Colbeck I., Demidchik V. Engineered silver nanoparticles are sensed at the plasma membrane and dramatically modify the physiology of Arabidopsis thaliana plants. Plant J., 2016, 85: 245-257 ( ) DOI: 10.1111/tpj.13105
  • Wen Y., Zhang L., Chen Z., Sheng X., Qiu J., Xu D. Co-exposure of silver nanoparticles and chiral herbicide imazethapyr to Arabidopsis thaliana: Enantioselective effects. Chemosphere, 2016, 145: 207-214 ( ) DOI: 10.1016/j.chemosphere.2015.11.035
  • Dykman L.A., Khlebtsov N.G. Uptake of engineered gold nanoparticles into mammalian cells. Chem. Rev., 2014, 114: 1258-1288 ( ) DOI: 10.1021/cr300441a
  • Rains D.W. Plant tissue and protoplast culture: applications to stress physiology and biochemistry. In: Plants under stress/H.G. Jones, T.J. Flowers, M.B. Jones (eds.). Cambridge University Press, Cambridge, 2008: 181-196.
  • Santos A.R., Miguel A.S., Tomaz L., Malhу R., Maycock C., Vaz Patto M.C., Fevereiro P., Oliva A. The impact of CdSe/ZnS Quantum Dots in cells of Medicago sativa in suspension culture. J. Nanobiotechnol., 2010, 8: 24 ( ) DOI: 10.1186/1477-3155-8-24
  • Planchet E., Limami A.M. Amino acid synthesis under abiotic stress. In: Amino acids in higher plants/J.P.F. D’Mello (ed.). CAB Int., Wallingford, 2015: 262-276.
  • Selivanov N.Y., Selivanova O.G., Sokolov O.I., Sokolova M.K., Sokolov A.O., Bogatyrev V.A., Dykman L.A. Effect of gold and silver nanoparticles on the growth of the Arabidopsis thaliana cell suspension culture. Nanotechnologies in Russia, 2017, 12: 116-124 ( ) DOI: 10.1134/S1995078017010104
  • Zuverza-Mena N., Martínez-Fernández D., Du W., Hernandez-Viezcas J.A., Bonilla-Bird N., López-Moreno M.L., Komárek M., Peralta-Videa J.R., Gardea-Torresdey J.L. Exposure of engineered nanomaterials to plants: Insights into the physiological and biochemical responses -A review. Plant Physiol. Biochem., 2017, 110: 236-264 ( ) DOI: 10.1016/j.plaphy.2016.05.037
Еще
Статья обзорная