Жирнокислотный состав мышечной ткани овец: фенотипическая вариабельность, наследуемость, гены-кандидаты (обзор)

Жирнокислотный состав мышечной ткани овец: фенотипическая вариабельность, наследуемость, гены-кандидаты (обзор)

Автор: Ковальчук С.Н.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 6 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Овцеводство вносит существенный вклад в мировое производство продуктов питания. Одно из актуальных направлений усовершенствования пород овец - улучшение биохимических показателей мяса, что обусловлено изменившимися требованиями к качеству продуктов питания, в частности к их диетическим свойствам. Жирнокислотный состав мяса - важный показатель его качества. Известно, что высокое содержание насыщенных жирных кислот в рационе человека повышает концентрацию холестерина в плазме крови и увеличивает риск развития сердечно-сосудистых заболеваний, диабета и ожирения (A.P. Simopoulos, 2001; F.B. Hu с соавт., 2001). Кроме того, жирнокислотный состав мяса влияет на его потребительские свойства, такие как вкус, аромат, сочность, нежность мяса и усвояемость жира. В связи с этим актуально выявление и использование в селекции генетических маркеров, связанных с жирнокислотным составом мяса овец. В настоящем обзоре проанализированы и обобщены результаты исследований фенотипической вариабельности и наследуемости показателей жирнокислотного состава мышечной ткани овец, в также данные о генах-кандидатах, выявленных с использованием полногеномного поиска ассоциаций (genome-wide association studies, GWAS), основанного на технологии ДНК-чипов (R. Bumgarner, 2013), и метода высокопроизводительного секвенирования РНК (RNA sequencing, RNA-seq), с помощью которого изучают генетические механизмы формирования фенотипов на основе сравнительного анализа профилей экспрессии генов (A. Oshlack c соавт., 2010; K.O. Mutz c соавт., 2013; R. Stark c соавт., 2019). Установлено, что количественные показатели жирнокислотного состава мяса овец разных пород и степень наследуемости этого признака широко варьируют, что указывает на возможность изменения профилей жирнокислотного состава баранины посредством использования генетических методов при селекции (E. Karamichou с соавт., 2006; H.D. Daetwyler c соавт., 2012; S.I. Mortimer c соавт., 2014; S. Bolormaa c соавт., 2016; G.A. Rovadoscki с соавт., 2017). Суммируя результаты GWAS и RNA-seq, можно выделить наиболее значимые гены-кандидаты, вовлеченные в метаболизм жиров и жирных кислот и ассоциированные с внутримышечным содержанием жирных кислот у овец: acot11 , baat , pnpla3 , lclat1 , isyna1 , elovl6 , agpat9 , me1 , acaca , dgat2, plcxd3 , fads2 , scd , cpt1a , pisd , lipg , b4galt6 , acsm1 , acsl1 , aacs и fasn , кодирующие ферменты метаболизма жиров и жирных кислот; гены белков-транспортеров жирных кислот и жиров FABP3, FABP4, FABP5, SLC27A6 , APOL6 и COPB2, а также гены mlxipl , ppard , wnt11 , foxo3 , tnfaip8 , npas2 , fndc5 , adipoq , adipor2 , trhde , cidec , ccdc88c , tysnd1 и sgk2 , которые кодируют транскрипционные факторы и эффекторные белки, регулирующие энергетический и жировой обмен (X. Miao с соавт., 2015; S. Bolormaa с соавт., 2016; L. Sun с соавт., 2016; G.A. Rovadoscki с соавт., 2017; R. Arora с соавт., 2019). Эти данные позволяют глубже понять генетические механизмы, лежащие в основе изменчивости количественных показателей жирнокислотного состава мышечной ткани овец, что послужит необходимой научной базой для разработки успешных селекционных программ в овцеводстве.

Еще

Овцы, жирные кислоты, генетические маркеры, gwas, rna-seq, snp

Короткий адрес: https://sciup.org/142231900

IDR: 142231900   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.6.1049rus

Список литературы Жирнокислотный состав мышечной ткани овец: фенотипическая вариабельность, наследуемость, гены-кандидаты (обзор)

  • Ежегодник по племенной работе в овцеводстве и козоводстве в хозяйствах Российской Федерации (2020 год) /Под ред. Т.А. Мороз. М., 2021.
  • Ерохин А.И., Карасев Е.А., Юлдашбаев Ю.А. Тенденции развития овцеводства в Российской Федерации. Зоотехния, 2014, 12: 12-13.
  • Ерохин А.И., Карасев Е.А., Ерохин С.А., Сычева И.Н. Состояние и тенденции в производстве мяса домашних животных в мире и России. Овцы, козы, шерстяное дело, 2021, 2: 20-22 (doi: 10.26897/2074-0840-2021-2-20-22).
  • Williams P. Nutritional composition of red meat. Nutrition & Dietetics, 2007, 64(s4): S113-S119 (doi: 10.1111/j.1747-0080.2007.00197.x).
  • Ikem A., Shanks B., Caldwell J., Garth J., Ahuja S. Estimating the daily intake of essential and nonessential elements from lamb m. longissimus thoracis et lumborum consumed by the population in Missouri (United States). Journal of Food Composition and Analysis, 2015, 40: 126-135 (doi: 10.1016/j.jfca.2014.12.022).
  • Yehuda S., Rabinovitz S., Carasso R.L., Mostofsky D.I. The role of polyunsaturated fatty acids in restoring the aging neuronal membrane. Neurobiology of Aging, 2002, 23(5): 843-853 (doi: 10.1016/s0197-4580(02)00074-x).
  • Bazinet R.P., Layé S. Polyunsaturated fatty acids and their metabolites in brain function and disease. Nature Reviews Neuroscience, 2014, 15: 771-785 (doi: 10.1038/nrn3820).
  • Позняковский В.М. Гигиенические основы питания, качество и безопасность пищевых продуктов. Новосибирск, 2005.
  • Simopoulos A.P. n-3 fatty acids and human health: defining strategies for public policy. Lipids, 2001, 36(S1): S83-S89 (doi: 10.1007/s11745-001-0687-7).
  • Hu F.B., Manson J.E., Willett W.C. Types of dietary fat and risk of coronary heart disease: a critical review. Journal of the American College of Nutrition, 2001, 20(1): 5-19 (doi: 10.1080/07315724.2001.10719008).
  • Barba M., Czosnek H., Hadidi A. Historical perspective, development and applications of next-generation sequencing in plant virology. Viruses, 2014, 6(1): 106-136 (doi: 10.3390/v6010106).
  • Heather J.M., Chain B. The sequence of sequencers: the history of sequencing DNA. Genomics, 2016, 107(1): 1-8 (doi: 10.1016/j.ygeno.2015.11.003).
  • Jiang Y., Xie M., Chen W., Talbot R., Maddox J.F., Faraut T., Wu C., Muzny D.M., Li Y., Zhang W., Stanton J.A., Brauning R., Barris W.C., Hourlier T., Aken B.L., Searle S.M.J., Ad-elson D.L., Bian C., Cam G.R., Chen Y., Cheng S., DeSilva U., Dixen K., Dong Y., Fan G., Franklin I.R., Fu S., Guan R., Highland M.A., Holder M.E., Huang G., Ingham A.B., Jhangiani S.N., Kalra D., Kovar C.L., Lee S.L., Liu W., Liu X., Lu C., Lv T., Mathew T., McWilliam S., Menzies M., Pan S., Robelin D., Servin B., Townley D., Wang W., Wei B., White S.N., Yang X., Ye C., Yue Y., Zeng P., Zhou Q., Hansen J.B., Kristensen K., Gibbs R.A., Flicek P., Warkup C.C., Jones H.E., Oddy V.H., Nicholas F.W., McEwan J.C., Kijas J., Wang J., Worley K.C., Archibald A.L., Cockett N., Xu X., Wang W., Dalrymple B.P. The sheep genome illuminates biology of the rumen and lipid metabolism. Science, 2014, 344(6188): 1168-1173 (doi: 10.1126/science.1252806).
  • Li X., Yang J., Shen M., Xie X.L., Liu G.J., Xu Y.X., Lv F.H., Yang H., Yang Y.L., Liu C.B., Zhou P., Wan P.C., Zhang Y.S., Gao L., Yang J.Q., Pi W.H., Ren Y.L., Shen Z.Q., Wang F., Deng J., Xu S.S., Salehian-Dehkordi H., Hehua E., Esmailizadeh A., Dehghani-Qanatqe-stani M., Štěpánek O., Weimann C., Erhardt G., Amane A., Mwacharo J.M., Han J.L., Hanotte O., Lenstra J.A., Kantanen J., Coltman D.W., Kijas J.W., Bruford M.W., Periasamy K., Wang X.H., Li M.H. Whole-genome resequencing of wild and domestic sheep identifies genes associated with morphological and agronomic traits. Nature Communications, 2020, 11(1): 2815 (doi: 10.1038/s41467-020-16485-1).
  • Bumgarner R. Overview of DNA microarrays: types, applications, and their future. Current Pro-tocols in Molecular Biology, 2013, 101: 22.1.1-22.1.11 (doi: 10.1002/0471142727.mb2201s101).
  • Dekkers J.C. Application of genomics tools to animal breeding. Current Genomics, 2012, 13(3): 207-212 (doi: 10.2174/138920212800543057).
  • Koopaee H.K., Koshkoiyeh A.E. SNPs genotyping technologies and their applications in farm animals breeding programs. Brazilian Archives of Biology and Technology, 2014, 57(1): 87-95 (doi: 10.1590/S1516-89132014000100013).
  • Kijas J.W., Lenstra J.A., Hayes B., Boitard S., Porto Neto L.R., San Cristobal M., Servin B., McCulloch R., Whan V., Gietzen K., Paiva S., Barendse W., Ciani E., Raadsma H., McEwan J., Dalrymple B., other members of the International Sheep Genomics Consortium. Genome-wide analysis of the world’s sheep breeds reveals high levels of historic mixture and strong recent se-lection. PLoS Biology, 2012, 10(2): e1001258 (doi: 10.1371/journal.pbio.1001258).
  • Mardis E.R. The impact of next-generation sequencing technology on genetics. Trends in Genetics, 2008, 24(3): 133-141 (doi: 10.1016/j.tig.2007.12.007).
  • Mutz K.O., Heilkenbrinker A., Lönne M., Walter J.G., Stahl F. Transcriptome analysis using next-generation sequencing. Current Opinion in Biotechnology, 2013, 24(1): 22-30 (doi: 10.1016/j.copbio.2012.09.004).
  • Oshlack A., Robinson M.D., Young M.D. From RNA-seq reads to differential expression results. Genome Biology, 2010, 11(12): 220 (doi: 10.1186/gb-2010-11-12-220).
  • Stark R., Grzelak M., Hadfield J. RNA sequencing: the teenage years. Nature Reviews Genetics, 2019, 20(11): 631-656 (doi: 10.1038/s41576-019-0150-2).
  • VanRaden P.M. Efficient methods to compute genomic predictions. Journal of Dairy Science, 2008, 91(11): 4414-4423 (doi: 10.3168/jds.2007-0980).
  • Goddard M.E., Hayes B.J. Genomic selection. Journal of Animal Breeding and Genetics, 2007, 124(6): 323-330 (doi: 10.1111/j.1439-0388.2007.00702.x).
  • Алексеева А., Магомадов Т., Юлдашбаев Ю. Убойные и мясные показатели баранчиков эдильбаевской породы и эдильбай ½ гиссарских помесей. Главный зоотехник, 2018, 7: 32-37.
  • Глагоев А.Ч. Методы повышения продуктивности и эффективности использования породных ресурсов в овцеводстве. Докт. дис. Мичуринск—Наукоград, 2019.
  • Глагоев А.Ч., Негреева А.Н., Щугорева Т.Э. Влияние генотипа на состав и свойства жира у баранчиков. Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности АПК — продукты здорового питания, 2021, 1: 137-144.
  • Ерохин А.И., Карасев Е.А., Юлдашбаев Ю.А., Магомадов Т.А., Медведев М.В. Продуктивность овец куйбышевской породы и ее помесей с баранами породы ромни-марш и северокавказскаятекстель. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии, 2012, 2: 126-135.
  • Муратова В.В. Мясная продуктивность и оценка качества мяса молодняка овец эдильбаевской породы разных весовых категорий. Канд. дис. Саратов, 2020.
  • Кипкеев М.Х., Селькин И.И. Качество мяса ягнят карачаевской породы в разном возрасте. Сельскохозяйственный журнал, 2004, 1-1: 23-28.
  • Мугаев М.А., Хататаев С.А., Григорян Л.Н. Показатели качества мяса у молодняка романовских овец в зависимости от сезона рождения. Сельскохозяйственная биология, 2011, 6: 110-115.
  • Liu K., Ge S., Luo H., Yue D., Yan L. Effects of dietary vitamin E on muscle vitamin E and fatty acid content in Aohan fine-wool sheep. Journal of Animal Science and Biotechnology, 2013, 4(1): 21 (doi: 10.1186/2049-1891-4-21).
  • Knapik J., Ropka-Molik K., Pieszka M. Genetic and nutritional factors determining the production and quality of sheep meat — a review. Annals of Animal Science, 2017, 17(1): 23-40 (doi: 10.1515/aoas-2016-0036).
  • Chai J., Diao Q., Zhao J., Wang H., Deng K., Qi M., Nie M., Zhang N. Effects of rearing system on meat quality, fatty acid and amino acid profiles of Hu lambs. Animal Science Journal, 2018, 89(8): 1178-1186 (doi: 10.1111/asj.13013).
  • Karamichou E., Richardson R.I., Nute G.R., Gibson K.P., Bishop S.C. Genetic analyses and quantitative trait loci detection, using a partial genome scan, for intramuscular fatty acid composition in Scottish Blackface sheep. Journal of Animal Science, 2006, 84(12): 3228-3238 (doi: 10.2527/jas.2006-204).
  • Daetwyler H.D., Swan A.A., van der Werf J.H., Hayes B.J. Accuracy of pedigree and genomic predictions of carcass and novel meat quality traits in multi-breed sheep data assessed by cross-validation. Genetics Selection Evolution, 2012, 44: 33 (doi: 10.1186/1297-9686-44-33).
  • Mortimer S.I., van der Werf J.H.J., Jacob R.H., Hopkins D.L., Pannier L., Pearce K.L., Gardner G.E., Warner R.D., Geesink G.H., Hocking Edwards J.E., Ponnampalam E.N., Ball A.J., Gilmour A.R., Pethick D.W. Genetic parameters for meat quality traits of Australian lamb meat. Meat Science, 2014, 96(2): 1016-1024 (doi: 10.1016/j.meatsci.2013.09.007).
  • Bolormaa S., Hayes B.J., van der Werf J.H., Pethick D., Goddard M.E., Daetwyler H.D. Detailed phenotyping identifies genes with pleiotropic effects on body composition. BMC Genomics, 2016, 17: 224 (doi: 10.1186/s12864-016-2538-0).
  • Rovadoscki G.A., Pertile S.F.N., Alvarenga A.B., Cesar A.S.M., Pértille F., Petrini J., Franzo V., Soares W.V.B., Morota G., Spangler M.L., Pinto L.F.B., Carvalho G.G.P., Lanna D.P.D., Coutinho L.L., Mourão G.B. Estimates of genomic heritability and genome-wide association study for fatty acids profile in Santa Inês sheep. BMC Genomics, 2018, 19(1): 375 (doi: 10.1186/s12864-018-4777-8).
  • van der Werf J.H.J., Kinghorn B.P., Banks R.G. Design and role of an information nucleus in sheep breeding programs. Animal Production Science, 2010, 50(12): 998-1003 (doi: 10.1071/AN10151).
  • White J.D, Allingham P.G., Gorman C.M., Emery D.L., Hynd P., Owens J., Bell A., Siddell J., Harper G., Hayes B.J., Daetwyler H.D., Usmar J., Goddard M.E., Henshall J.M., Dominik S., Brewer H., van der Werf J.H.J., Nicholas F.W., Warner R., Hofmyer C., Longhurst T., Fisher T., Swan P., Forage R., Oddy V.H. Design and phenotyping procedures for recording wool, skin, parasite resistance, growth, carcass yield and quality traits of the SheepGENOMICS mapping flock. Animal Production Science, 2012, 52(3): 157-171 (doi: 10.1071/AN11085).
  • Hu Z.L., Park C.A., Reecy J.M. Developmental progress and current status of the Animal QTLdb. Nucleic Acids Research, 2016, 44(D1): D827-D833 (doi: 10.1093/nar/gkv1233).
  • Hu Z.L., Park C.A., Reecy J.M. Building a livestock genetic and genomic information knowledge-base through integrative developments of Animal QTLdb and CorrDB. Nucleic Acids Research, 2019, 47(D1): D701-D710 (doi: 10.1093/nar/gky1084).
  • Sumara G., Sumara O., Kim J.K., Karsenty G. Gut-derived serotonin is a multifunctional deter-minant to fasting adaptation. Cell Metabolism, 2012, 16(5): 588-600 (doi: 10.1016/j.cmet.2012.09.014).
  • Laporta J., Hernandez L.L. Serotonin receptor expression is dynamic in the liver during the transition period in Holstein dairy cows. Domestic Animal Endocrinology, 2015, 51: 65-73 (doi: 10.1016/j.domaniend.2014.11.005).
  • Aliesky H.A., Pichurin P.N., Chen C.R., Williams R.W., Rapoport B., McLachlan S.M. Probing the genetic basis for thyrotropin receptor antibodies and hyperthyroidism in immunized CXB recombinant inbred mice. Endocrinology, 2006, 147(6): 2789-2800 (doi: 10.1210/en.2006-0160).
  • Cavanagh C.R., Jonas E., Hobbs M., Thomson P.C., Tammen I., Raadsma H.W. Mapping quan-titative trait loci (QTL) in sheep. III. QTL for carcass composition traits derived from CT scans and aligned with a meta-assembly for sheep and cattle carcass QTL. Genetics Selection Evolution, 2010, 42(1): 36 (doi: 10.1186/1297-9686-42-36).
  • Hwang D. Fatty acids and immune responses-a new perspective in searching for clues to mech-anism. Annual Review of Nutrition, 2000, 20: 431-456 (doi: 10.1146/annurev.nutr.20.1.431).
  • Muoio D.M., MacLean P.S., Lang D.B., Li S, Houmard J.A., Way J.M., Winegar D.A., Cor-ton J.C., Dohm G.L., Kraus W.E. Fatty acid homeostasis and induction of lipid regulatory genes in skeletal muscles of peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) alpha knock-out mice. Evidence for compensatory regulation by PPAR delta. Journal of Biological Chemistry, 2002, 277(29): 26089-26097 (doi: 10.1074/jbc.M203997200).
  • Yen C.-L.E., Stone S.J., Koliwad S., Harris C., Farese R.V. Jr. Thematic review series: glycer-olipids. DGAT enzymes and triacylglycerol biosynthesis. Journal of Lipid Research, 2008, 49(11): 2283-2301 (doi: 10.1194/jlr.R800018-JLR200).
  • Drackley J.K. Lipid metabolism. In: Farm animal metabolism and nutrition /J.P.F. D’Mello (ed.). CABI, New York, 2000.
  • Ross S.E., Hemati N., Longo K.A., Bennett C.N., Lucas P.C., Erickson R.L., MacDougald O.A. Inhibition of adipogenesis by Wnt signaling. Science, 2000, 289(5481): 950-953 (doi: 10.1126/sci-ence.289.5481.950).
  • Takada I., Kouzmenko A.P., Kato S. Wnt and PPARgamma signaling in osteoblastogenesis and adipogenesis. Nature Reviews Rheumatology, 2009, 5(8): 442-447 (doi: 10.1038/nrrheum.2009.137).
  • Galic S., Oakhill J.S., Steinberg G.R. Adipose tissue as an endocrine organ. Molecular and Cel-lular Endocrinology, 2010, 316(2): 129-139 (doi: 10.1016/j.mce.2009.08.018).
  • Cristancho A.G., Lazar M.A. Forming functional fat: a growing understanding of adipocyte dif-ferentiation. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 2011, 12: 722-734 (doi: 10.1038/nrm3198).
  • Waters M., Serafini T., Rothman J. 'Coatomer': a cytosolic protein complex containing subunits of non-clathrin-coated Golgi transport vesicles. Nature, 1991, 349: 248-251 (doi: 10.1038/349248a0).
  • Kuhajda F.P., Jenner K., Wood F.D., Hennigar R.A., Jacobs L.B., Dick J.D., Pasternack G.R. Fatty acid synthesis: a potential selective target for antineoplastic therapy. Proceedings of the Na-tional Academy of Sciences, 1994, 91(14): 6379-6383 (doi: 10.1073/pnas.91.14.6379).
  • Niture S., Gyamfi M.A., Lin M., Chimeh U., Dong X., Zheng W., Moore J., Kumar D. TNFAIP8 regulates autophagy, cell steatosis, and promotes hepatocellular carcinoma cell prolif-eration. Cell Death and Disease, 2020, 11(3): 178 (doi: 10.1038/s41419-020-2369-4).
  • Huang J.M., Xian H., Bacaner M. Long-chain fatty acids activate calcium channels in ventricular myocytes. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1992, 89(14): 6452-6456 (doi: 10.1073/pnas.89.14.6452).
  • Xiao Y.F., Gomez A.M., Morgan J.P., Lederer W.J., Leaf A. Suppression of voltage-gated L-type Ca2+ currents by polyunsaturated fatty acids in adult and neonatal rat ventricular myocytes. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1997, 94(8): 4182-4187 (doi: 10.1073/pnas.94.8.4182).
  • Murphy E.F., Jewell C., Hooiveld G.J., Muller M., Cashman K.D. Conjugated linoleic acid enhances transepithelial calcium transport in human intestinal-like Caco-2 cells: an insight into molecular changes. Prostaglandins, Leukotrienes & Essential Fatty Acids, 2006, 74(5): 295-301 (doi: 10.1016/j.plefa.2006.03.003).
  • Leonard A.E., Pereira S.L., Sprecher H., Huang Y.S. Elongation of long-chain fatty acids. Pro-gress in Lipid Research, 2004, 43(1): 36-54 (doi: 10.1016/s0163-7827(03)00040-7).
  • Shindou H., Shimizu T. Acyl-CoA:lysophospholipid acyltransferases. Journal of Biological Chem-istry, 2009, 284(1): 1-5 (doi: 10.1074/jbc.R800046200).
  • Kooner J.S., Chambers J.C., Aguilar-Salinas C.A., Hinds D.A., Hyde C.L., Warnes G.R., Gómez Pérez F.J., Frazer K.A., Elliott P., Scott J., Milos P.M., Cox D.R., Thompson J.F. Genome-wide scan identifies variation in MLXIPL associated with plasma triglycerides. Nature Genetics, 2008, 40: 149-151 (doi: 10.1038/ng.2007.61).
  • Füllekrug J., Ehehalt R., Poppelreuther M. Outlook: membrane junctions enable the metabolic trapping of fatty acids by intracellular acyl-CoA synthetases. Frontiers in Physiology, 2012, 3: 401 (doi: 10.3389/fphys.2012.00401).
  • Arora R., Kumar N.S., Sudarshan S., Fairoze M.N., Kaur M., Sharma A., Girdhar Y.M.S.R., Devatkal S.K., Ahlawat S., Vijh R.K., Manjunatha S.S. Transcriptome profiling of longissimus thoracis muscles identifies highly connected differentially expressed genes in meat type sheep of India. PLoS ONE, 2019, 14(6): e0217461 (doi: 10.1371/journal.pone.0217461).
  • Fischer H., Gustafsson T., Sundberg C.J., Norrbom J., Ekman M., Johansson O., Jansson E. Fatty acid binding protein 4 in human skeletal muscle. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2006, 346(1): 125-130 (doi: 10.1016/j.bbrc.2006.05.083).
  • Stern J.H., Rutkowski J.M., Scherer P.E. Adiponectin, leptin, and fatty acids in the maintenance of metabolic homeostasis through adipose tissue crosstalk. Cell Metabolism, 2016, 23(5): 770-784 (doi: 10.1016/j.cmet.2016.04.011).
  • Li B., Zerby H.N., Lee K. Heart fatty acid binding protein is upregulated during porcine adipocyte development. Journal of Animal Science, 2007, 85(7): 1651-1659 (doi: 10.2527/jas.2006-755).
  • Coe N.R., Simpson M.A., Bernlohr D.A. Targeted disruption of the adipocyte lipid-binding pro-tein (aP2 protein) gene impairs fat cell lipolysis and increases cellular fatty acid levels. Journal of Lipid Research, 1999, 40(5): 967-972 (doi: 10.1016/S0022-2275(20)32133-7).
  • Furuhashi M., Saitoh S., Shimamoto K., Miura T. Fatty acid-binding protein 4 (FABP4): path-ophysiological insights and potent clinical biomarker of metabolic and cardiovascular diseases. Clinical Medicine Insights: Cardiology, 2015, 8(Suppl. 3): 23-33 (doi: 10.4137/CMC.S17067).
  • Xu X., Chen W., Yu S., Fan S., Ma W. Candidate genes expression affect intramuscular fat content and fatty acid composition in Tan sheep. Genetics and Molecular Research, 2020, 19(4): GMR18550 (doi: 10.4238/gmr18550).
  • Wolf G. Adiponectin: a regulator of energy homeostasis. Nutrition Review, 2003, 61(8): 290-292 (doi: 10.1301/nr.2003.aug.290-292).
  • Kadowaki T., Yamauchi T. Adiponectin and adiponectin receptors. Endocrine Reviews, 2005, 26(3): 439-451 (doi: 10.1210/er.2005-0005).
  • An Q.M., Zhou H.T., Hu J., Luo Y.Z., Hickford J.G. Haplotypes and sequence variation in the ovine adiponectin gene (ADIPOQ). Genes, 2015, 6(4): 1230-1241 (doi: 10.3390/genes6041230).
  • An Q., Zhou H., Hu J., Luo Y., Hickford J.G.H. Haplotypes of the ovine adiponectin gene and their association with growth and carcass traits in New Zealand Romney lambs. Genes, 2017, 8(6): 160 (doi: 10.3390/genes8060160).
  • Okumoto K., Kametani Y., Fujiki Y. Two proteases, trypsin domain-containing 1 (Tysnd1) and peroxisomal Lon protease (PsLon), cooperatively regulate fatty acid β-oxidation in peroxisomal ma-trix. Journal of Biological Chemistry, 2011, 286(52): 44367-44379 (doi: 10.1074/jbc.M111.285197).
  • Li B., Qiao L., An L., Wang W., Liu J., Ren Y., Pan Y., Jing J., Liu W. Transcriptome analysis of adipose tissues from two fat-tailed sheep breeds reveals key genes involved in fat deposition. BMC Genomics, 2018, 19(1): 338 (doi: 10.1186/s12864-018-4747-1).
  • Deniskova T.E., Kunz E., Medugorac I., Dotsev A.V., Brem G., Zinovieva N.A. A study of genetic mechanisms underlying the fat tail phenotype in sheep: methodological approaches and identified candidate genes (review). Agricultural Biology, 2019, 54(6): 1065-1079 (doi: 10.15389/agrobiology.2019.6.1065eng).
  • Sun L., Bai M., Xiang L., Zhang G., Ma W., Jiang H. Comparative transcriptome profiling of longissimus muscle tissues from Qianhua Mutton Merino and Small Tail Han sheep. Scientific Reports, 2016, 6: 33586 (doi: 10.1038/srep33586).
  • Zimmerman A.W., Veerkamp J.H. New insights into the structure and function of fatty acid-binding proteins. Cellular and Molecular Life Sciences, 2002, 59(7): 1096-1116 (doi: 10.1007/s00018-002-8490-y).
  • Senga S., Kobayashi N., Kawaguchi K., Ando A., Fujii H. Fatty acid-binding protein 5 (FABP5) promotes lipolysis of lipid droplets, de novo fatty acid (FA) synthesis and activation of nuclear factor-kappa B (NF-κB) signaling in cancer cells. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) — Molec-ular and Cell Biology of Lipids, 2018, 1863(9): 1057-1067 (doi: 10.1016/j.bbalip.2018.06.010).
  • Corominas J., Ramayo-Caldas Y., Puig-Oliveras A., Pérez-Montarelo D., Noguera J.L., Folch J.M., Ballester M. Polymorphism in the ELOVL6 gene is associated with a major QTL effect on fatty acid composition in pigs. PLoS ONE, 2013, 8(1): e53687 (doi: 10.1371/jour-nal.pone.0053687).
  • Miao X., Luo Q., Qin X. Genome-wide analysis reveals the differential regulations of mRNAs and miRNAs in Dorset and Small Tail Han sheep muscles. Gene, 2015, 562(2): 188-196 (doi: 10.1016/j.gene.2015.02.070).
  • Pucci S., Zonetti M., Fisco T., Polidoro C., Bocchinfuso G., Palleschi A., Novelli G., Spagnoli L.G., Mazzarelli P. Carnitine palmitoyl transferase-1A (CPT1A): a new tumor specific target in human breast cancer. Oncotarget, 2016, 7: 19982-19996 (doi: 10.18632/oncotarget.6964).
  • O’Byrne J., Hunt M.C., Rai D.K., Saeki M., Alexson S.E. The human bile acid-CoA:amino acid N-acyltransferase functions in the conjugation of fatty acids to glycine. Journal of Biological Chem-istry, 2003, 278(36): 34237-34244 (doi: 10.1074/jbc.M300987200).
  • Anderson C.M., Stahl A. SLC27 fatty acid transport proteins. Molecular Aspects of Medicine, 2013, 34(2-3): 516-528 (doi: 10.1016/j.mam.2012.07.010).
  • Kang D., Zhou G., Zhou S., Zeng J., Wang X., Jiang Y., Yang Y., Chen Y. Comparative tran-scriptome analysis reveals potentially novel roles of Homeobox genes in adipose deposition in fat-tailed sheep. Scientific Reports, 2017, 7(1): 14491 (doi: 10.1038/s41598-017-14967-9).
  • Palmer B.R., Roberts N., Hickford J.G., Bickerstaffe R. Rapid communication: PCR-RFLP for MspI and NcoI in the ovine calpastatin gene. Journal of Animal Science, 1998, 76(5): 1499-1500 (doi: 10.2527/1998.7651499x).
  • Чижова Л.Н., Карпова Е.Д., Суржикова Е.С., Забелина М.В. Жирнокислотный состав ли-пидов мышечной ткани молодняка овец разных аллельных вариантов гена CAST. Овцы, козы, шерстяное дело, 2021, 2: 12-15 (doi: 10.26897/2074-0840-2021-2-12-15).
  • Aali M., Moradi-Shahrbabak H., Moradi-Shahrbabak M., Sadeghi M., Yousefi R. Association of the calpastatin genotypes, haplotypes, and SNPs with meat quality and fatty acid composition in two Iranian fat- and thin-tailed sheep breeds. Small Ruminant Research, 2017, 149: 40-51 (doi: 10.1016/j.smallrumres.2016.12.026).
Еще
Статья обзорная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp