Жирные кислоты мембран эритроцитов и сыворотки крови как биомаркеры для диагностики ранних стадий колоректального рака
Автор: Кручинина М.В., Кручинин В.Н., Громов А.А., Шашков М.В., Соколова А.С., Яковина И.Н., Шестов А.А.
Журнал: Сибирский онкологический журнал @siboncoj
Рубрика: Лабораторные и экспериментальные исследования
Статья в выпуске: 2 т.21, 2022 года.
Бесплатный доступ
Цель исследования - выявить перечень жирных кислот (ЖК) мембран эритроцитов и сыворотки крови, которые могут служить потенциальными биомаркерами ранних стадий колоректального рака. Материал и методы. Обследованы 65 пациентов с КРР I-II стадий (средний возраст - 63,3 ± 9,6 года), из них 30 мужчин, 35 женщин, и 35 человек группы сравнения, сопоставимых по возрасту и полу. Исследование состава жирных кислот мембран эритроцитов и сыворотки крови проведено с помощью ГХ/МС системы на основе трех квадруполей Agilent 7000B (США). Для статистической обработки использованы методы программного обеспечения MATLAB (R2019a, MathWorks) и языка программирования R: T-тест, анализ главных компонент (PCA), Fold Change, Volcano plot, метод машинного обучения (Random Forest), ROC-анализ, построение тепловых карт (Heatmap). Результаты. У пациентов с КРР I-II стадий выявлено снижение уровней насыщенных, отдельных мононенасыщенных и высокодостоверное повышение большей части уровней полиненасыщенных ЖК с преобладанием омега-3. Для большей части уровней жирных кислот достоверные различия в группах касались мембран эритроцитов с той же тенденцией в сыворотке крови. Уровни эритроцитарных миристиновой, пентадекановой, 7-пальмитолеиновой, отношения насыщенные/полиненасыщенные ЖК (содержание которых достоверно ниже при КРР I-II стадий, чем в контроле) и уровни α-линоленовой, эйкозапентаеновой, докозапентаеновой, докозагексаеновой, суммы омега-3 ЖК, EPA + DHA, докодиеновой, дигомо-γ-линоленовой, докозатетраеновой ЖК (содержание которых достоверно выше при КРР, чем у здоровых) являются дифференцирующими при различении больных КРР I-II стадий и здоровых лиц. В сыворотке крови уровень биомаркеров имели следующие ЖК: арахидоновая, миристиновая, докозагексаеновая, сумма омега-3 ПНЖК, отношение омега-6/омега-3 ПНЖК, пентадекановая, докозапентаеновая и докодиеновая. Модель, включающая перечень жирных кислот (С14:0, С15:0, С16:1;7, С18:3 n-3, C20:2 n-6, C20:3 n-6, C20:5 n-3, C22:4 n-6,C22:5 n-3, C22:6 n-3, сумма омега-3, омега-3(EPA + DHA), отношение насыщенные/полиненасыщенные ЖК, обеспечила AUC 0,916 со специфичностью 0,90, чувствительностью 0,95 при различении пациентов с КРР I-II стадий от здоровых лиц. Заключение. Изучение уровней и соотношений жирных кислот в мембранах эритроцитов и сыворотке крови следует считать перспективным направлением в поиске биомаркеров для ранней диагностики КРР.
Ранняя диагностика, колоректальный рак, жирные кислоты, липидомика, эритроциты, сыворотка крови
Короткий адрес: https://sciup.org/140293900
IDR: 140293900
Список литературы Жирные кислоты мембран эритроцитов и сыворотки крови как биомаркеры для диагностики ранних стадий колоректального рака
- Ferlay J., Soerjomataram I., Dikshit R., Eser S., Mathers C., RebeloM., Parkin D.M., Forman D., Bray F. Cancer incidence and mortality worldwide: sources, methods and major patterns in GLOBOCAN 2012. Int J Cancer. 2015; 136(5): 359-86. doi: 10.1002/ijc.29210.
- Garborg K., Holme O., L0berg M., Kalager M., Adami H.O., Bretthauer M. Current status of screening for colorectal cancer. Ann Oncol. 2013; 24(8): 1963-72. doi: 10.1093/annonc/mdt157.
- BrennerH., Arndt V., Stürmer T. Cost-effectiveness of colonoscopy in screening for colorectal cancer. Arch Intern Med. 2002; 162(19): 2249. doi: 10.1001/archinte.162.19.2249.
- Pignone M., Rich M., Teutsch S.M., Berg A.O., Lohr A.N. Screening for colorectal cancer in adults at average risk: a summary of the evidence for the U.S. Preventive Services Task Force. Ann Intern Med. 2002; 137(2): 132-41. doi: 10.7326/0003-4819-137-2-200207160-00015.
- BianX., Qian Y., TanB., LiK., HongX., Wong C.C., FuL., ZhangD., Li D., Wu J.-L. In-depth mapping carboxylic acid metabolome reveals the potential biomarkers in colorectal cancer through characteristic fragment ions and metabolic flux. Anal Chim Acta. 2020; 1128: 62-71. doi: 10.1016/j.aca.2020.06.064.
- Monedeiro F., Monedeiro-Milanowski M., Ligor T., Buszewski B. A Review of GC-Based Analysis of Non-Invasive Biomarkers of Colorectal Cancer and Related Pathways. J Clin Med. 2020; 9: 3191-224. doi: doi:10.3390/jcm9103191.
- Sun L., Kang Q., Pan Y., Li N., Wang X., He Y., Wang H., Yu D., Xie H., Yang L., Lu Y., Jin P., Sheng J. Serum metabolite profiling offamilial adenomatous polyposis using ultra performance liquid chromatography and tandem mass spectrometry. Cancer Biol Ther. 2019; 20(7): 1-12. doi: 10.1080/15384047.2019.1595277.
- Arab L., Akbar J. Biomarkers and the measurement of fatty acids. Public Health Nutr. 2002; 5: 865-71. doi: 10.1079/phn2002391.
- Zeleniuch-Jacquotte A., Chajes V., Van Kappel A.L., Riboli E., Toniolo P. Reliability of fatty acid composition in human serum phospho-lipids. Eur J Clin Nutr. 2000; 54: 367-72. doi: 10.1038/sj.ejcn.1600964.
- Katan M.B., van Birgelen A., Deslypere J.P., Penders M., van Staveren W.A. Biological markers of dietary intake, with emphasis on fatty acids. Ann Nutr Metab. 1991; 35: 249-52. doi: 10.1159/000177653.
- Mika A., Kobiela J., Czumaj A., Chmielewski M., Stepnowski P., Sledzinski T. Hyper-Elongation in Colorectal Cancer Tissue - Cerotic Acid is a Potential Novel Serum Metabolic Marker of Colorectal Malignancies. Cell Physiol Biochem. 2017; 41(2): 722-30. doi: 10.1159/000458431.
- Rifkin S.B., Shrubsole M.J., Cai Q., Smalley W.E., Ness R.M., Swift L.L., Zheng W., Murff H.J. PUFA levels in erythrocyte membrane phospholipids are differentially associated with colorectal adenoma risk. Br J Nutr. 2017; 117(11): 1615-22. doi: 10.1017/S0007114517001490.
- Crotti S., Agnoletto E., Cancemi G., Di Marco V., Traldi P., Puc-ciarelli S., Nitti D., Agostini M. Altered plasma levels of decanoic acid in colorectal cancer as a new diagnostic biomarker. Analytical and bioanalyti-cal chemistry. 2016; 408(23): 6321-8. doi: 10.1007/s00216-016-9743-1.
- Kang J.X., Wang J. A simplified method for analysis of polyun-saturated fatty acids. BMC Biochem. 2005; 6: 5-13. doi: 10.1186/14712091-6-5.
- Shashkov M.V., Sidelnikov V.N. Properties of columns with several pyridinium and imidazolium ionic liquid stationary phases. J Chromatogr A. 2013; 1309: 56-63. doi: 10.1016/j.chroma.2013.08.030.
- BreimanL. Random Forests. Machine Learning. 2001; 45: 5-32. https://doi.org/10.1023/A:1010933404324.
- Gradilla A.-C., Sanchez-Hernandez D., Brunt S., Scholpp L. From top to bottom: Cell polarity in Hedgehog and Wnt trafficking. BMC Biology. 2018; 16: 37-46. doi: 10.1186/s12915-018-0511-x.
- Doll S., Freitas F.P., Shah R., Aldrovandi M., da Silva M.C., IngoldI., Goya Grocin A., Xavier da Silva T.N., PanziliusE., Scheel C.H., Mourao A., Buday K., Sato M., Wanninger J., Vignane T., Mohana V., Rehberg M., Flatley A., Schepers A., Kurz A., White D., Sauer M., Sattler M., Tate E.W., Schmitz W, Schulze A., O'Donnell V., Proneth B., Popowicz G.M., PrattD.A., Angeli J.P.F., ConradM. FSP1 is a glutathione-independent ferroptosis suppressor. Nature. 2019; 575(7784): 693-8. doi: 10.1038/s41586-019-1707-0.
- Igal R.A. Stearoyl-CoA desaturase-1: a novel key player in the mechanisms ofcell proliferation, programmed cell death and transformation to cancer. Carcinogenesis. 2010; 31: 1509-15. doi: 10.1093/carcin/ bgq131.
- Danielsen S.A., Eide P.W., Nesbakken A., Guren T, Leithe E, Lothe R.A. Portrait of the PI3K/AKT pathway in colorectal cancer. Biochim Biophys Acta. 2015; 1855: 104-21. doi: 10.1016/j.bbcan.2014.09.008.
- Zhou X.P., Loukola A., Salovaara R., Nystrom-Lahti M., Pelto-makiP., de laChapelle A., AaltonenL.A., Eng C. PTEN mutational spectra, expression levels,and subcellular localization in microsatellite stable and unstable colorectalcancers. Am J Pathol. 2002; 161: 439-47. doi: 10.1016/ S0002-9440(10)64200-9.
- Baro L., Hermoso J.C., Nunez M.C., Jimenez-Rios J.A., Gil A. Abnormalities in plasma and red blood cell fatty acid profiles of patients with colorectal cancer. Br J Cancer. 1998; 77: 1978-83. doi: 10.1038/ bjc.1998.328.
- Veglia F., Tyurin V.A., Blasi M., De Leo A., Kossenkov A.V., Donthireddy L., To T.K.J., Schug Z., Basu S., Wang F., Ricciotti E., DiRusso C., Murphy M.E., VonderheideR.H., LiebermanP.M., Mulligan C., Nam B., Hockstein N., Masters G., Guarino M., Lin C., Nefedova Y., Black P., Kagan V.E., Gabrilovich D.I. Fatty acid transport protein 2 reprograms neutrophils in cancer. Nature. 2019; 569(7754): 73-8. doi: 10.1038/s41586-019-1118-2.
- Kortlever R.M., Sodir N.M., Wilson C.H., Burkhart D.L., Pel-legrinetL., SwigartL.B., Littlewood T.D., Evan G.I. Myc Cooperates with Ras by Programming Inflammation and Immune Suppression. Cell. 2017; 171: 1301-15. doi: 10.1016/j.cell.2017.11.013.
- Singh K.B., Hahm E.R., Kim S.H., Wendell S.G., Singh S.V A novel metabolic function of Myc in regulation of fatty acid synthesis in prostate cancer. Oncogene. 2021; 40(3): 592-602. doi: 10.1038/s41388-020-01553-z.
- Duman C., Yaqubi K., Hoffmann A., Acikgoz A.A., Korshunov A., Bendszus M., Herold-Mende C., Liu H.K., Alfonso J. Acyl-CoA-Binding Protein Drives Glioblastoma Tumorigenesis by Sustaining Fatty Acid Oxidation. Cell Metabolism. 2019; 30(2): 274-89. doi: 10.1016/j. cmet.2019.04.004.
- AreggerM., LawsonK.A., BillmannM., CostanzoM., TongA.H.Y., Chan K., Rahman M., Brown K.R., Ross C., Usaj M., Nedyalkova L., Sizova O., Habsid A., Pawling J., Lin Z.-Y., Abdouni H., Wong C.J., Weiss A., Mero P., Dennis J.W., Gingras A.C., Myers C.L., Andrews B.J., Boone C., Moffat J. Systematic mapping of genetic interactions for de novo fatty acid synthesis identifies C12orf49 as a regulator of lipid metabolism. Nature Metabolism. 2020; 2: 499-513. doi: 10.1038/s42255-020-0211-z.
- Yessoufou A., Ple A., Moutairou K., Hichami A., Khan N.A. Do-cosahexaenoic acid reduces suppressive and migratory functions of CD4+ CD25+ regulatory T-cells. J Lipid Res. 2009; 50: 2377-88. doi: 10.1194/ jlr.M900101-JLR200.
- WoodworthH.L., McCaskey S.J., DuriancikD.M., ClinthorneJ.F., Langohr I.M., Gardner E.M., Fenton J.I. Dietary fish oil alters T lymphocyte cell populations and exacerbates disease in a mouse model of inflammatory colitis. Cancer Res 2010; 70(20): 7960-9. doi: 10.1158/0008-5472. CAN-10-1396.
- OhmoriH., FujiiK., Kadochi Y., Mori S., Nishiguchi Y., FujiwaraR., Kishi S., Sasaki T., Kuniyasu H. Elaidic Acid, a Trans-Fatty Acid, Enhances the Metastasis of Colorectal Cancer Cells. Pathobiology. 2017; 84(3): 144-51. doi: 10.1159/000449205.
- CockbainA.J., Toogood G.J., HullM.A. Omega-3 polyunsaturated fatty acids for the treatment and prevention of colorectal cancer. Gut. 2012; 61: 135-49. doi: 10.1136/gut.2010.233718.