Адаптационная способность перспективных сортов лаванды и лавандина при культивировании in vitro и ex situ

Адаптационная способность перспективных сортов лаванды и лавандина при культивировании in vitro и ex situ

Автор: Митрофанова И.В., Палий А.Е., Гребенникова О.А., Браилко В.А., Лесникова-седошенко Н.П., Работягов В.Д., Митрофанова О.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Культуры in vitro

Статья в выпуске: 3 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Лаванда узколистная (Lavandula angustifolia Mill.) и лавандин (Lavandula х intermedia Emeric ex Loisel.) - перспективные эфиромасличные растения, обладающие лекарственными, ароматическими и декоративными свойствами. В настоящей работе мы впервые дали сравнительную физиолого-биохимическую характеристику перспективных сортов лаванды и лавандина при различных условиях культивирования. Целью работы было выявление адаптационной способности ценных сортов лаванды и лавандина в условиях in vitro и ex situ с помощью определения их физиологических и биохимических параметров. В качестве объектов исследования были выбраны ценные сорта лаванды узколистной (Белянка, Рекорд) и лавандина (Рабат, Снежный Барс) селекции Никитского ботанического сада. Для физиолого-биохимических исследований отбирали интактные растения в фенофазу технической зрелости, а также микропобеги, культивируемые in vitro. Пробы отбирали во II и III декадах июля 2016 года. Культивирование микропобегов (4-5 мес) проходило на модифицированной питательной среде Мурасиге и Скуга, дополненной кинетином (0,3 мг/л), α-нафтилуксусной кислотой (0,025 мг/л) и гибберелловой кислотой (0,25 мг/л)...

Еще

Биохимические индикаторы, фотосинтетическая активность, водный режим

Короткий адрес: https://sciup.org/142216556

IDR: 142216556   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.3.539rus

Список литературы Адаптационная способность перспективных сортов лаванды и лавандина при культивировании in vitro и ex situ

  • Либусь О.К., Работягов В.Д., Кутько С.П., Хлыпенко Л.А. Эфиромасличные и пряно-ароматические растения. Херсон, 2004.
  • Torras-Claveria L., Jauregui O., Bastida J., Codina C., Viladomat F. Antioxidant activity and phenolic composition of Lavandin (Lavandula ´ intermedia Emeric ex Loiseleur) Waste. J. Agric. Food Chem., 2007, 55: 8436-8443 ( ) DOI: 10.1021/jf070236n
  • Mitrofanova I., Brailko V., Lesnikova-Sedoshenko N., Mitrofanova O. Clonal micropropagation and some physiology aspects of essential oil roses valuable cultivars regeneration in vitro. Agriculture and Forestry, 2016, 62(4): 73-81 ( ) DOI: 10.17707/AgricultForest.62.4.09
  • Mitrofanova I.V., Chirkov S.N., Lesnikova-Sedoshenko N.P., Chelombit S.V., Zakubanskiy A.V., Rabotyagov V.D., Mitrofanova, O.V. Micropropagation of Lavandula angustifolia Mill. 'Record' and 'Belyanka'. Acta Hortic., 2017, 1187: 37-42 ( ) DOI: 10.17660/ActaHortic.2017.1187.4
  • Mittler R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends Plant Sci., 2002, 7: 405-410 ( ) DOI: 10.1016/S1360-1385(02)02312-9
  • Mullineaux Ph., Baker N. Oxidative stress: antagonistic signaling for acclimation or cell death? Plant Physiol., 2010, 154(2): 521-525 ( ) DOI: 10.1104/pp.110.161406
  • Kavi Kishor P.B., Sangam S., Amrutha R.N., Laxmi P.S., Naidu K.R., Rao S., Reddy K.J., Theriappan P., Sreenivasulu N. Regulation of proline biosynthesis, degradation, uptake and transport in higher plants: Its implication in plant growth and abiotic stress tolerance. Current Science, 2005, 88(3): 424-438.
  • Smirnoff N. Ascorbic acid: metabolism and functions of a multifacetted molecule. Curr. Opin. Plant Biol., 2000, 3: 229-235.
  • Запрометов М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях. М., 1993.
  • Araji S., Grammer T.A., Gertzen R., Anderson S.D., Mikulic-Petkovsek M., Veberic R., Phu M.L., Solar A., Leslie C.A., Dandekar A.M., Escobar M.A. Novel roles for the polyphenol oxidase enzyme in secondary metabolism and the regulation of cell death in walnut. Plant Physiol., 2014, 164(3): 1191-203 ( ) DOI: 10.1104/pp.113.228593
  • Alscher R.G., Erturk N., Heath L.S. Role of superoxide dismutases (SODs) in controlling oxidative stress in plants. J. Exp. Bot., 2002, 53(372): 1331-1341 ( ) DOI: 10.1093/jexbot/53.372.1331
  • Racchi M.L. Antioxidant defenses in plants with attention to Prunus and Citrus spp. Antioxidants, 2013, 2: 340-369 ( ) DOI: 10.3390/antiox2040340
  • Бараненко В.В. Супероксиддисмутаза в клетках растений. Цитология, 2006, 48(6): 465-474.
  • Budagovsky A., Budagovskaya O., Budagovsky I. Biological structure as a converter of coherent radiation. In: Biophotonics and coherent systems in biology. Springer, NY, 2006: 53-70 ( ) DOI: 10.1007/978-0-387-28417-0
  • Romanov V.A., Galelyuka I.B., Sarakhan Ie.V. Portable fluorometer Floratest and specifics of its application. Sensor Electronics and Microsystem Technologies, 2010, 7(3): 39-44.
  • Stirbet A., Govindjee J. On the relation between the Kautsky effect (chlorophyll a fluorescence induction) and photosystem II: basics and applications of the OJIP fluorescence transient. J. Photoch. Photobio. B, 2011, 104: 236-257 ( ) DOI: 10.1016/j.jphotobiol.2010.12.010
  • Ralph P.J., Gademann R. Rapid light curves: a powerful tool to assess photosynthetic activity. Aquat. Bot., 2005, 82(3): 222-237 ( ) DOI: 10.1016/j.aquabot.2005.02.006
  • Strizh I.G., Neverov K.V. Photoinhibition of photosystem 2 in vitro: spectral and kinetic analysis. Russian Journal of Plant Physiology, 2007, 54(4): 439-499 ( ) DOI: 10.1134/S1021443707040024
  • Camejo D., Jimenez A., Alarcon J.J., Torres W., Gomez J.M., Sevilla F. Changes in photosynthetic parameters and antioxidant activities following heat-shock treatment in tomato plants. Funct. Plant Biol., 2006, 33(2): 177-187 ( ) DOI: 10.1071/FP05067
  • Khan N.A., Singh S., Nazar R. Activities of antioxidative enzymes, sulphur assimilation, photosynthetic activity and growth of wheat (Triticum aestivum) cultivars differing in yield potential under cadmium stress. J. Agron. Crop Sci., 2007, 193(6): 435-444 ( ) DOI: 10.1111/j.1439-037X.2007.00272.x
  • Андрющенко В.К., Саянова В.В., Жученко А.А. Модификация метода определения пролина для выявления засухоустойчивых форм Lycopersicon Tourn. Известия АН МССР, 1981, 4: 55-60.
  • Гержикова В.Г. Методы технохимического контроля в виноделии. Симферополь, 2002.
  • Рихтер А.А. Использование в селекции взаимосвязей биохимических признаков. Труды Государственного Никитского ботанического сада, 1999, 108: 121-129.
  • Воскресенская О.Л., Алябышева Е.А., Половникова М.Г. Большой практикум по биоэкологии. Йошкар-Ола, 2006.
  • Ермаков А.И. Методы биохимического исследования растений. Л., 1987.
  • Костюк В.А., Потапович А.И., Ковалева Ж.В. Простой и чувствительный метод определения активности супероксиддисмутазы, основанный на реакции окисления кверцетина. Вопросы медицинской химии, 1990, 2: 88-91.
  • Ross J. The radiation regime and architecture of plant stands (Tasks for vegetation science, v. 3 book series). Springer, Dordrecht, 1981 ( ) DOI: 10.1007/978-94-009-8647-3
  • Брайон О.В., Корнєєв Д.Ю., Снєгур О.О., Китаєв О.I. Iнструментальне вивчення фотосинтетичного апарату за допомогою iндукцiї флуоресценцiї хлорофiлу: Методичнi вказiвки для студентiв бiологiчного факультету. Київ, 2000.
  • Lyers S., Caplan P. Products of praline catabolism can induce osmotically regulated genes in rice. Plant Physiol., 1998, 116: 203-211.
  • Mazid M., Khan T.A., Mohammad F. Role of secondary metabolites in defense mechanisms of plants. Biology and Medicine, 2011, 3(2): 232-249.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp