Биохимический статус и продуктивные качества свиней (Sus scrofa domesticus) при моделировании стресса и его коррекции
Автор: Некрасов Р.В., Боголюбова Н.В., Остренко К.С., Чабаев М.Г., Кутьин И.В., Лахонин П.Д., Семенова А.А., Пчелкина В.А., Насонова В.В., Лоскутов С.И., Рыков Р.А., Прытков Ю.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Стресс и продуктивность
Статья в выпуске: 4 т.58, 2023 года.
Бесплатный доступ
Одна из особенностей живого организма - его способность сохранять постоянство внутренней среды с помощью механизмов саморегуляции. У высших животных функции управления и регуляции биохимических реакций выполняет нервно-эндокринная система. С ее помощью организм воспринимает различные воздействия внешней и внутренней среды и реагирует на них посредством гормонов. В связи с этим биомаркерами уровня стресса служит в первую очередь содержание гормонов, а также концентрации в крови метаболитов и их соотношения. Использование в питании дигидрокверцетина, витаминов С и Е может способствовать снижению негативного влияния стресса. В настоящей работе впервые установлено положительное влияние дополнительного скармливания комплекса антиоксидантов (дигидрокверцетин и витамины Е, С) на адаптацию организма свиней к условиям стресса посредством оптимизации метаболических процессов и гормонального статуса при усилении антиоксидантной защиты, что способствовало получению мяса более высокого качества. Цель работы - оценка влияния скармливания комплекса адаптогенов ДКВЕС (дигидрокверцетин и витамины Е, С) на биохимический статус и продуктивные качества свиней при моделировании стресса. Опыты проводили в 2022-2023 годах в Федеральном исследовательском центре животноводства - ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста. В эксперимент отобрали 34 боровка ( Sus scrofa domesticus ) F2 [(крупная белая ½ ландрас) ½ дюрок] в период откорма. Живая масса поросят на начало эксперимента составляла 40,7-41,0 кг, возраст - 99 сут. Период откорма длился 90 сут. В предварительный период поросята были распределены в четыре группы методом пар-аналогов: I контрольная (С-, без скармливания ДКВЕС) (9 гол.), II контрольная (С+, скармливание ДКВЕС) (9 гол.), III опытная (Е-, без скармливания ДКВЕС) (8 гол.), IV опытная (Е+, скармливание ДКВЕС) (8 гол.). Размер каждого станка составлял 2,40½2,25 м (площадь 5,4 м2), фронт кормления - 1,05 м. То есть при размещении свиней в станках по 4 гол. (группы Е- и Е+) вместо 3 гол. (группы С- и С+) происходило снижение площади станка в расчете на 1 гол. с 1,80 до 1,35 м2, а фронта кормления - с 0,35 м до 0,26 м (при норме не менее 0,3 м/гол. согласно ГОСТ 28839-2017). ДКВЕС содержал ДКВ (Экостимул-2, «АО Аметис», Россия; ДКВ 72-73 %) в дозе 32 мг/кг корма, витамин Е (ИННОВИТ Е60, ГК «МЕГАМИКС», Россия) - 10 мг/кг корма, витамин С (Тайгер С 35, «Anhui Tiger Biotech Co., Ltd.», Китай) - 35 мг/кг корма. Животные из групп С+ и Е+ дополнительно к рациону получали ДКВЕС в количестве 0,025 % по массе комбикорма на протяжении всего времени испытаний. Молодняк взвешивали индивидуально каждую декаду. Для оценки клинико-физиологического и метаболического статуса в конце периода доращивания, а также при переводе на заключительный откорм и перед убоем у животных брали кровь из яремной вены утром до кормления для анализа. В сыворотке крови определяли содержание кальция, фосфора, магния, активность аспартатаминотрансферазы, аланинаминотрансферазы, количество щелочной фосфатазы, общего билирубина, креатинина, холестерина, глюкозы, общего белка, альбумина, хлоридов и мочевины. Для оценки антиоксидантного статуса определяли в пробах сыворотки крови общее количество свободных водорастворимых антиоксидантов с помощью амперометрического метода. Также определяли концентрации в сыворотке крови тиреоидных гормонов - общего и свободного тироксина (Т4общ. и Т4св.) и трийодтиронина (Т3общ. и Т3св.), тиреотропного гормона, кортизола, адреналина, инсулиноподобного фактора роста 1, мелатонина методом твердофазного иммуноферментного анализа. Непосредственно перед убоем измеряли живую массу (ЖМ) свиней после голодной выдержки. После убоя определяли массу парной туши, а также убойный выход, толщину шпика, площадь мышечного глазка, рН через 45 мин после убоя и через 24 ч хранения. Установлено, что на фоне усиления конкуренции за кормовой стол скармливание ДКВЕС приводило к существенному снижению содержания кортизола (р = 0,014) и адреналина (p = 0,09) у поросят в заключительный период откорма. Вследствие конкуренции за корм снижалась концентрация мелатонина (р = 0,01), а скармливание ДКВЕС в группе Е+ нормализовало ее до значений, полученных при 1-м и 2-м взятиях крови. Стресс негативно сказывался на метаболических процессах, индикаторами которых служат биохимические показатели крови (концентрация в сыворотке крови триглицеридов, холестерина, билирубина). В заключительный период откорма произошли существенные сдвиги в гормональном статусе животных. У поросят в группах С по сравнению с Е снижалась концентрация Т4общ. (p = 0,02), Т3общ. (p = 0,05), Т3своб. (p = 0,004), что сопровождалось усилением выработки ТТГ (p = 0,05). Скармливание ДКВЕС несколько сглаживало отрицательное влияние моделируемого фактора. Самые низкие значения Т4общ., Т4своб., Т3общ., Т3своб. наблюдались в группе Е+.
Адаптоген, дигидрокверцетин, витамин, стресс, молодняк свиней, гормоны, биохимия крови, убойные показатели
Короткий адрес: https://sciup.org/142239863
IDR: 142239863 | DOI: 10.15389/agrobiology.2023.4.638rus
Список литературы Биохимический статус и продуктивные качества свиней (Sus scrofa domesticus) при моделировании стресса и его коррекции
- Афиногенова С.А., Булатов А.А., Гончарова В.Н. Биохимия гормонов и гормональной регуляции. М., 1976.
- Terlouw E.M.C., Arnould C., Auperin B., Berri C., Bihan-Duval E. Le, Deiss V., Lefèvre F., Lensink B.J., Mounier L. Pre-slaughter conditions, animal stress and welfare: current status and possible future research. Animal, 2008, 2(10): 1501-1517 (doi: 10.1017/S1751731108002723).
- Durosaro S.O., Iyasere O.S., Ilori B.M., Oyeniran V.J., Ozoje M.O. Molecular regulation, breed differences and genes involved in stress control in farm animals. Domestic Animal Endocrinology, 2023, 82: 106769 (doi: 10.1016/j.domaniend.2022.106769).
- Lindblom S.C., Gabler N.K., Dilger R.N., Olson Z.F., Loving C.L., Kerr B.J. Influence of feeding thermally peroxidized soybean oil on oxidative status in growing pigs. Journal of Animal Science, 2018, 96(2): 545-557 (doi: 10.1093/jas/sky005).
- de Oliveira M.J.K., Melo A.D.B., Marçal D.A., Valini G.A. da C., Silva C.A., Veira A.M., Fraga A.Z., Arnaut P.R., Campos P.H.R.F., dos Santos L.S., Htoo J.K.K., Brand H.G., Hauschild L. Effects of lowering dietary protein content without or with increased protein-bound and feed-grade amino acids supply on growth performance, body composition, metabolism, and acute-phase protein of finishing pigs under daily cyclic heat stress. Journal of Animal Science, 2023, 101: skac387 (doi: 10.1093/jas/skac387).
- Ijiri M., Odo K., Sato M., Kawaguchi M., Fujimoto Y., Miura N., Matsuo T., Hou D.X., Yamato O., Tanabe T., Kawaguchi H. Potential biomarkers for chronic seasonal heat stress in kagoshima berkshire pigs reared in the subtropical region. Journal of Veterinary Research, 2022, 66(2): 209-214 (doi: 10.2478/jvetres-2022-0024).
- Rey A.I., Almudena de-Cara, Calvo L., Puig P., Hechavarría T. Changes in plasma fatty acids, free amino acids, antioxidant defense, and physiological stress by oleuropein supplementation in pigs prior to slaughter. Antioxidants, 2020, 9(1): 56 (doi: 10.3390/antiox9010056).
- Miller D.B., O'Callaghan J.P. Neuroendocrine aspects of the response to stress. Metabolism, 2002, 51(6): 5-10 (doi: 10.1053/meta.2002.33184).
- Petrosus E., Silva E.B., Lay D. Jr., Eicher S. D. Effects of orally administered cortisol and norepinephrine on weanling piglet gut microbial populations and Salmonella passage. Journal of Animal Science, 2018, 96(11): 4543-4551 (doi: 10.1093/jas/sky312).
- Yu C.-H., Chen C.-Y., Chang C.-C. The immediate effects of weaning stress on the hypothala-mus-pituitary-adrenal alteration of newly weaned piglets. Animal Physiology and Animal Nutrition, 2019, 103(4): 1218-1223 (doi: 10.1111/jpn.13104).
- Cassar-Malek I., Picard B., Kahl S., Hocquette J.F. Relationships between thyroid status, tissue oxidative metabolism, and muscle differentiation in bovine fetuses. Domestic Animal Endocrinol-ogy, 2007, 33(1): 91-106 (doi: 10.1016/j.domaniend.2006.04.011).
- Bi C., Yin J., Yang W., Shi B., Shan A. Effects of dietary γ-aminobutyric acid supplementation on antioxidant status, blood hormones and meat quality in growing-finishing pigs undergoing transport stress. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr., 2020, 104(2): 590-596 (doi: 10.1111/jpn.13280).
- Kota S.K., Gayatri K., Jammula S., Meher L.K., Kota S.K., Krishna S.V.S., Modi K.D. Fetal endocrinology. Indian Journal of Endocrinology and Metabolism, 2013, 17: 568-579 (doi: 10.4103/2230-8210.113722).
- Gritsenko S., Belookov A., Belookova O., Derkho M., Sereda T., Vereshchaga O., Koruhov D., Fedoseeva N. Assessment of blood parameters of pigs of different breeds and its interrelation with lifetime animal performance indicators. International Journal of Advanced Science and Technology, 2020, 29(5s): 1411-1417.
- Wan X., Wang D., Xiong Q., Xiang H., Li H., Wang H., Liu Z., Niu H., Peng J., Jiang S., Chai J. Elucidating a molecular mechanism that the deterioration of porcine meat quality re-sponds to increased cortisol based on transcriptome sequencing. Sci. Rep., 2016, 6(36589): 14 (doi: 10.1038/srep36589).
- Puppel K., Kapusta A., Kuczyńska B. The etiology of oxidative stress in the various species of animals, a review. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2014, 95(11): 2179-2184 (doi: 10.1002/jsfa.7015).
- Хайдаров Ш.Т., Туйчибоев Ж., Жамолдинов А., Джаббарова Г.М.-К., Зарипова М.Р., Юсупова У.Р. Сравнительный анализ антиоксидантной активности кверцетина и дигидро-кверцетина при экспериментальном гипотиреозе. Universum: химия и биология, 2021, 4(82).
- Kalyanaraman B. Teaching the basics of redox biology to medical and graduate students: Oxidants, antioxidants and disease mechanisms. Redox Biology, 2013, 1(1): 244-257 (doi: 10.1016/j.re-dox.2013.01.014).
- Prevatto J.P., Torres R.C., Diaz B.L., e Silva P M.R., Martins M.A., Carvalho V.F. Antioxidant treatment induces hyperactivation of the HPA axis by upregulating ACTH receptor in the adrenal and downregulating glucocorticoid receptors in the pituitary. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2017, 2017: 4156361 (doi: 10.1155/2017/4156361).
- Montanelli L., Benvenga S., Hegedüs L., Vitti P., Latrofa F., Duntas L.H. Drugs and other substances interfering with thyroid function. In: Thyroid diseases. Endocrinology /P. Vitti, L. Hegedüs (eds.). Springer, Cham, Switzerland, 2018 (doi: 10.1007/978-3-319-29195-6_27-1).
- Semenova A.A., Nasonova V.V., Kuznetsova T.G., Tunieva E.K., Bogolyubova N.V., Nekra-sov R.V. PSIII-17 program chair poster pick: a study on the effect of dihydroquercetin added into a diet of growing pigs on meat quality. Journal of Animal Science, 2020, 98(S4): 364 (doi: 10.1093/jas/skaa278.639).
- Семенова А.А., Кузнецова Т.Г., Насонова В.В., Некрасов Р.В., Боголюбова Н.В., Цис Е.Ю. Использование антиоксидантов в качестве адаптогенов для свиней (Sus scrofa domesticus Erxleben, 1777) (мета-анализ). Сельскохозяйственная биология, 2020, 55(6): 1107-1125 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.6.1107rus).
- Директива 2010/63/EC Европейского парламента и Совета европейского союза по охране животных, используемых в научных целях. Режим доступа: https://ruslasa.ru/wp-content/up-loads/2017/06/Directive_201063_rus.pdf. Без даты.
- European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for Experimental and other Sci-entific Purposes (ETS № 123) (Strasburg, 18.03.1986). Режим доступа: https://norecopa.no/leg-islation/council-of-europe-convention-ets-123. Без даты.
- Овсянников А.И. Основы опытного дела в животноводстве. Уч. пос. М., 1976.
- Антонова В.С., Топурия Г.М., Косилов В.И. Методология научных исследований в животноводстве: уч. пос. Оренбург, 2011.
- Некрасов Р.В., Головин А.В., Махаев Е.А., Аникин А.С., Первов Н.Г., Стрекозов Н.И., Мысик А.Т., Дуборезов В.М., Чабаев М.Г., Фомичев Ю.П., Гусев И.В. Нормы потребностей молочного скота и свиней в питательных веществах /Под ред. Р.В. Некрасова, А.В. Головина, Е.А. Махаева. М., 2018.
- Pirgozliev V., Westbrook C., Woods S., Mansbridge S.C., Rose S.P., Whiting I.M., Yovchev D., Atanasov A.G., Kljak K., Staykova G.P., Ivanova S., Karagecili M.R., Karadas F., Stringhini J.H. Feeding dihydroquercetin and vitamin E to broiler chickens reared at standard and high ambient temperatures. Archives of Animal Nutrition, 2020, 74(6): 496-511 (doi: 10.1080/1745039x.2020.1820807).
- Fomichev Y., Bogolyubova N., Nekrasov R., Chabaev M., Semenova A. Physiological aspects of using dihydroquercetin in intensively growing young pigs diets. In: Fundamental and applied sci-entific research in the development of agriculture in the Far East (AFE-2021). AFE 2021. Lecture notes in networks and systems, vol 354 /A. Muratov, S. Ignateva (eds.). Springer, Cham, 2022, 354: 507-520 (doi: 10.1007/978-3-030-91405-9_56).
- Zhou Y., Chen L., Han H., Xiong B., Zhong R., Jiang Y., Liu L., Sun H., Tan J., Cheng X., Schroyen M., Gao Y., Zhao Y., Zhang H. Taxifolin increased semen quality of Duroc boars by improving gut microbes and blood metabolites. Front Microbiol., 2022, 13: 1020628 (doi: 10.3389/fmicb.2022.1020628).
- Zou Y., Wei H., Xiang Q.-H., Wang J., Zhou Y-F., Peng J. Protective effect of quercetin on pig intestinal integrity after transport stress is associated with regulation oxidative status and inflam-mation. Journal of Veterinary Medical Science, 2016, 78(9): 1487-1494 (doi: 10.1292/jvms.16-0090).
- Боголюбова Н.В., Насонова В.В., Некрасов Р.В., Рыков Р.А., Семенова А.А., Чабаев М.Г. Способ кормления молодняка свиней в период откорма. А.с. (РФ) МКИ А 23 К 20. А 23 К 50. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный исследовательский центр животноводства — ВИЖ им. Л.К.Эрнста», Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр пищевых систем им. В.М. Горба-това» (РФ). Заявка № 2022129798/10(065177) от 17.11.2022.
- Коваленко В.А., Гильман З.Д., Орлова А.С. Методические рекомендации по оценке мясной продуктивности, качества мяса и подкожного жира свиней. М., 1987.
- Маннапова Р.Т., Рапиев Р.А. Коррекция уровня гормонов надпочечников при кратковременном и длительном стрессе свиней янтарем и маточным молочком пчел. Фундаментальные исследования, 2013, 1: 304-307.
- Peeters E. Neyt A., Beckers F., De Smet S., Aubert A.E., Geers R. Influence of supplemental magnesium, tryptophan, vitamin C, and vitamin E on stress responses of pigs to vibration. Journal of Animal Science, 2005, 83(7): 1568-1580 (doi: 10.2527/2005.8371568x).
- Bai X., Yan X., Xie L., Hu X., Lin X., Wu C., Zhou N., Wang A., See M.T. Effects of pre-slaughter stressor and feeding preventative Chinese medicinal herbs on glycolysis and oxidative stability in pigs. Animal Science Journal, 2015, 87(8): 1028-1033 (doi: 10.1111/asj.12537).
- Singh A.K., Pandita S., Upadhyay R.C., Chandra G., Chaudhari B.K., Maurya P.K. Effect of pre-partum supplementation of vitamin e to murrah buffaloes on metabolic adaptation and growth performance of calves. Indian Journal of Animal Research, 2023, 47(3): 196-204.
- Clegg P.C., Clegg A.G. Hormones, cells and Organisms the role of hormones in mammals. Stanford University Press Stanford. California, 1969.
- Semenova A.A., Kuznetsova T.G., Nasonova V.V., Nekrasov R.V., Bogolyubova N.V. Myopathy as a destabilizing factor of meat quality formation. Theory and Practice of Meat Processing, 2019, 4(3): 24-31 (doi: 10.21323/2414-438X-2019-4-3-24-31).
- Мекин Р.С., Дерхо М.А. Особенности взаимосвязей между гормонами тиреотропин-тироидной системы в организме молодняка свиней разного пола и породы. Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана, 2021, 245(1): 101-107 (doi: 10.31588/2413-4201-1883-245-1-101-108).
- Pathak P.K., Roychoudhury R., Saharia J., Borah M.C., Dutta D.J., Bhuyan R., Kalita D. Impact of seasonal thermal stress on physiological and blood biochemical parameters in pigs under dif-ferent dietary energy levels. Trop. Anim. Health Prod., 2018, 50: 1025-1032 (doi: 10.1007/s11250-018-1526-6).
- Kim Y.-H., Kim K.-Y. Effect of air cleaner on stress hormones of pig and pork quality. J. Anim. Sci. Technol., 2021, 63(4): 892-903 (doi: 10.5187/jast.2021.e68).
- Dang X., Chung Y.H., Kim I.H. Effects of dietary supplementation of herbal active ingredients promoting insulin-like growth factor-1 secretion on production performance, egg quality, blood hematology, and excreta gas emission in laying hens. Animal Bioscience, 2021, 34(11): 1802-1810 (doi: 10.5713/ab.20.0762).
- Mohana Devi S., Park J., Kim I.H. Effect of plant extracts on growth performance and insulin-like growth factor 1 secretion in growing pigs. Revista Brasileira de Zootecnia, 2015, 44(10): 355-360 (doi: 10.1590/S1806-92902015001000003).
- Liu G., Wei Y., Wang Z., Wu D., Zhou A., Liu G. Effects of herbal extract supplementation on growth performance and insulin-like growth factor (IGF)-I system in finishing pigs. Journal of Animal and Feed Sciences, 2008, 17(4): 538-547 (doi: 10.22358/jafs/66681/2008).
- Губин Д.Г. Многообразие физиологических эффектов мелатонина. Международный жур-нал прикладных и фундаментальных исследований, 2016, 11(6): 1048-1053.
- Duan T., Wu Z., Zhang, H., Liu Y., Li Y., Zhang W. Effects of melatonin implantation on carcass characteristics, meat quality and tissue levels of melatonin and prolactin in Inner Mon-golian cashmere goats. J. Animal Sci. Biotechnol., 2019, 10: 70 (doi: 10.1186/s40104-019-0377-y).
- Tang J., Faustman C., Mancini R.A., Seyfert M., Hunt M.C. The effects of freeze-thaw and sonication on mitochondrial oxygen consumption, electron transport chain-linked metmyoglobin reduction, lipid oxidation, and oxymyoglobin oxidation. Meat Science, 2006, 74(3): 510-515 (doi: 10.1016/j.meatsci.2006.04.021).
- Todini L. Thyroid hormones in small ruminants: effects of endogenous, environmental and nu-tritional factors. Animal, 2007, 1(7): 997-1008 (doi: 10.1017/S1751731107000262).
- Zhang S., Gao H., Yuan X., Wang J., Zang J. Integrative analysis of energy partition patterns and plasma metabolomics profiles of modern growing pigs raised at different ambient tempera-tures. Animals, 2020, 10(11): 1953 (doi: 10.3390/ani10111953).
- Brent G.A. Tissue-specific actions of thyroid hormone: insights from animal models. Rev. Endocr. Metab. Disord., 2000, 1: 27-33 (doi: 10.1023/A:1010056202122).
- Hansen P.S., Brix T.H., Sørensen T.I.A., Kyvik K.O., Hegedüs L. Major genetic influence on the regulation of the pituitary-thyroid axis: A study of healthy danish twins. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 2004, 89(3): 1181-1187 (doi: 10.1210/jc.2003-031641).
- Panicker V., Wilson S.G., Spector T.D., Brown S.J., Falchi M., Richards J.B., Surdulescu G.L., Lim E.M., Fletcher S.J., Walsh J.P. Heritability of serum TSH, free T4 and free T3 concentra-tions: a study of a large UK twin cohort. Clinical Endocrinology, 2008, 68(4): 652-659 (doi: 10.1111/j.1365-2265.2007.03079.x).
- Chaker L., Korevaar T.I.M., Medici M., Uitterlinden A.G., Hofman A., Dehghan A., Franco O.H., Peeters R.P. Thyroid function characteristics and determinants: The Rotterdam study. Thy-roid, 2016, 26(9): 1195-1204 (doi: 10.1089/thy.2016.0133).
- Song Q., Chen X., Su Y., Xie Z., Wang S., Cui B. Age and gender specific thyroid hormones and their relationships with body mass index in a large Chinese population. International Journal of Endocrinology and Metabolism, 2019, 17(1): e66450 (doi: 10.5812/ijem.66450).
- Knezevic J., Starchl C., Berisha A.T., Amrein K. Thyroid-gut-axis: How does the microbiota influence thyroid function? Nutrients, 2020, 12(6): 1769 (doi: 10.3390/nu12061769).
- Helmreich D.L., Parfitt D.B., Lu X.-Y., Akil H., Watson S.J. Relation between the hypothalamic-pituitary-thyroid (HPT) axis and the hypothalamic-pituitary-adrenal (HPA) axis during repeated stress. Neuroendocrinology, 2005, 81(3): 183-192 (doi: 10.1159/000087001).
- Gore A.C., Chappell V.A., Fenton S.E., Flaws J.A., Nadal A., Prins G.S., Toppari J., Zoeller R.T. EDC-2: The endocrine society’s second scientific statement on endocrine-disrupting chemicals. Endocrine Reviews, 2015, 36(6): Е1-Е150 (doi: 10.1210/er.2015-1010).
- Otun J., Sahebkar A., Östlundh L., Atkin S.L., Sathyapalan T. Systematic review and meta-analysis on the effect of soy on thyroid function. Sci. Rep., 2019, 9: 3964 (doi: 10.1038/s41598-019-40647-x).
- Śmiecińska K., Denaburski J., Sobotka W. Slaughter value, meat quality, creatine kinase activity and cortisol levels in the blood serum of growing-finishing pigs slaughtered immediately after transport and after a rest period. Journal of Veterinary Sciences, 2011, 14(1): 47-54 (doi: 10.2478/v10181-011-0007-x).
- Terlouw E.M., Picard B., Deiss V., Berri C., Hocquette J.-F., Lebret B., Lefèvre F., Hamill R., Gagaoua M. Understanding the determination of meat quality using biochemical characteristics of the muscle: stress at slaughter and other missing keys. Foods, 2021, 10(1): 84 (doi: 10.3390/foods10010084).
- Yoshioka G., Imaeda N., Ohtani T., Hayashia K. Effects of cortisol on muscle proteolysis and meat quality in piglets. Meat Science, 2005, 71(3): 590-593 (doi: 10.1016/j.meatsci.2005.05.015).
- Ostrenko K.S., Lemeshevsky V.O., Ovcharova A.N., Galochkina V.P., Sofronova O.V. Effect of adaptogens on the quality of pig meat. Ukrainian Journal of Ecology, 2020, 10(1): 344-348 (doi: 10.15421/2020_54).
- Govindasamy K., Gonmei C., Singh N.S., Singh N.M. Thermal stress-related physiological, be-havioral, and serum biochemical responses in indigenous pigs adapted to Eastern Himalayan re-gion. Front. Vet. Sci., 2022, 9: 1034635 (doi: 10.3389/fvets.2022.1034635).
- Rosochacki S. J., Piekarzewska A.B., Poloszynowicz J., Sakowski T. The influence of restraint immobilization stress on the concentration of bioamines and cortisol in plasma of Pietrain and Duroc pigs. Journal of Veterinary Medicine Series A, 2007, 47(4): 231-242 (doi: 10.1046/j.1439-0442.2000.00284.x).