Биологические свойства штамма Salmonella phage BF-1356 и его эффективность при фаготерапии пуллороза кур

Автор: Лаишевцев А.И., Зулькарнеев Э.Р., Пименов Н.В., Киселева И.А., Багандова К.М., Мизаева Т.Э., Алешкин А.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринарная вирусология, микробиология, иммунология

Статья в выпуске: 4 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Резюме: Salmonella Pullorum - редко встречающийся, но важный патоген из рода Salmonella , который наносит серьезный вред птицеводству и вызывает экономические потери, связанные с высокой летальностью птицы. Терапия бактериофагами активно обсуждается в последнее время как дополнительный метод лечения птицы. В представленной работе была впервые показана терапевтическая эффективность вирулентного бактериофага Salmonella phage BF-1356, назначенного спустя 12 ч после перорального заражения цыплят кросса Cobb 500 высоковирулентным штаммом Salmonella Pullorum № 732-ВИЭВ. Цель работы - характеристика бактериофага Salmonella phage BF-1356 и его взаимодействия с бактериальным штаммом-хозяином in vitro, а также оценки эффективности фаготерапии пуллороза in vivo на модели цыплят Cobb 500. Штамм сальмонеллы (Salmonella Pullorum № 732-ВИЭВ) был выделен в 2017 году на птицефабрике в Московской области. Для проведения фаготерапии использовали вирулентный бактериофаг Salmonella phage BF-1356 из коллекции Московского НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского (Россия). Очищенный бактериофаг содержал титр не менее 1011 БОЕ/мл. Стерильность готового фага проверяли посредством инкубации 0,1 мл фаголизата в 5 мл тиогликолевой среды («HiMedia», Индия) при 32,5±2,5 и 22,5±2,5 °С в течение 14 сут. Диапазон литической активности бактериофага определяли в отношении 164 бактериальных штаммов Salmonella enterica , выделенных на территории РФ в 2010-2018 годы. Литическую активность оценивали визуально по появлению зоны лизиса в точках нанесения бактериофага на индикаторные чашки Петри с 1,5 % агаром Мюллера-Хинтона, которые содержали 200 мкл культуры исследуемых штаммов в середине лог-фазы (106 КОЕ). Оценивали адсорбцию бактериофага Salmonella phage BF-1356 на штамме Salmonella Typhimurium B-1025. Латентный период и выход Salmonella phage BF-1356 определяли посредством мониторинга динамических изменений числа фаговых частиц в течение репликативного цикла на штамме Salmonella Typhimurium B-1025. Чтобы оценить влияние pH на титр бактериофагов, известные концентрации очищенных бактериофагов инкубировали в буферах при различных значениях pH. В качестве лабораторных объектов использовали не зараженных сальмонеллами 14-суточных цыплят (Gallus gallus L.) кросса Cobb 500 (n = 40). Цыплят случайным образом разделили на группы: 10 цыплят использовали для контроля условий содержания (I контрольная группа не подвергалась заражению и фаготерапии), 20 цыплят - для определения эффективности препарата после его лечебного использования и оценки дальнейшего сальмонеллоносительства (опытная группа); 10 цыплят - как контроль заражения (II контрольная группа, инфицированная сальмонеллой, без введения бактериофага). Птицу опытной и II контрольной группы в возрасте 14 сут подвергали пероральному заражению Salmonella Рullorum № 732-ВИЭВ в дозе 3,8½108 кл., в объеме, равном 0,4 мл, что соответствовало ~ 5 LD50 (острой инфицирующей дозе, гарантирующей моделирование инфекции пуллороза с полной гибелью в контрольной группе). Критерием для начала применения бактериофага служило появление симптомов инфекционного процесса. Цыплятам из опытной группы вводили бактериофаг перорально в дозе 1010 БОЕ/мл, в объеме 0,2 мл. Исследование на наличие фагов и сальмонелл у птицы проводили сразу после дефекации. Число фаговых частиц оценивали методом двойных агаровых слоев. Для подтверждения эффективности фаготерапии птицу из опытной группы подвергали убою, проводили патологоанатомическое вскрытие и отбор секционного материала для лабораторных исследований и идентификации культур сальмонелл из органов. В контрольной группе патологоанатомическое вскрытие проводили по мере падежа птицы. Бактериофаг Salmonella phage BF-1356 проявлял специфическую литическую активность в отношении распространенных сероваров сальмонелл, таких как Pullorum, Enteritidis, Typhimurium, Cholerasuis, Infantis. Латентный период для бактериофага составлял в среднем 40 мин, а среднее число высвободившихся фагов из одной клетки-мишени - 67 вирусных частиц. Бактериофаг был стабилен при pH 5-8 и незначительно снижался в титре при pH 3,6 в течение 1 ч. Однократное пероральное введение бактериофага BF-1356 в титре 1010 БОЕ/мл через 12 ч после заражения цыплят кросса Cobb 500 штаммом Salmonella Pullorum № 732 позволило обеспечить 100 % сохранность поголовья и значительно снизить последствия патологического процесса у цыплят. Гибель цыплят контрольной группы происходила в течении 2-6 сут. Структура поражений была свойственна для сальмонеллезной патологии, что подтвердилось в лабораторных условиях. Полной элиминации возбудителя из организма не было достигнуто, однако при инфицировании 5 LD50 отмечали эффективное снижение выделения возбудителя из органов и тканей уже на 7-е сут.

Еще

Пуллороз, вирулентные бактериофаги, адсорбция, спектр литической активности, испытания in vivo, сальмонеллез, генерализованная форма

Короткий адрес: https://sciup.org/142243786

IDR: 142243786   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.4.799rus

Список литературы Биологические свойства штамма Salmonella phage BF-1356 и его эффективность при фаготерапии пуллороза кур

  • Пименов Н.В., Лаишевцев А.И. Современные методы эпизоотического и эпидемиологического мониторинга в птицеводческой отрасли на примере сальмонеллёзной инфекции. Российский журнал сельскохозяйственных и социально-экономических наук, 2017, 4(64): 257-269 (doi: 10.18551/rjoas.2017-04.33).
  • Пименов Н.В., Лаишевцев А.И. Пименова В.В. Роль возбудителей сальмонеллеза птиц в инфицировании и патологии человека. Российский журнал сельскохозяйственных и социально-экономических наук, 2017, 2(62): 282-289 (doi: 10.18551/rjoas.2017-02.33).
  • Barrow P.A., Freitas Neto O.C. Pullorum disease and fowl typhoid — new thoughts on old diseases: a review. Avian Pathology, 2011, 40(1): 1-13 (doi: 10.1080/03079457.2010.542575).
  • Allen H.K., Levine U.Y., Looft T., Bandrick M., Casey T.A. Treatment, promotion, commotion: antibiotic alternatives in food-producing animals. Trends in Microbiology, 2013, 21(3): 114-119 (doi: 10.1016/j.tim.2012.11.001).
  • Chen C., Li J., Zhang H., Xie Y., Xiong L., Liu H., Wang F. Effects of a probiotic on the growth performance, intestinal flora, and immune function of chicks infected with Salmonella pullorum. Poultry Science, 2020, 99(11): 5316-5323 (doi: 10.1016/j.psj.2020.07.017).
  • Zhang Y., Ding Y., Li W., Zhu W., Wang J., Wang X. Application of a novel lytic podoviridae phage Pu20 for biological control of drug-resistant Salmonella in liquid eggs. Pathogens, 2021, 10(1): 34 (doi: 10.3390/pathogens10010034).
  • Le Bouquin S., Bonifait L., Thépault A., Ledein T., Guillon F., Rouxel S., Souillard R., Chemaly M. Epidemiological and bacteriological investigations using whole-genome sequencing in a recurrent outbreak of pullorum disease on a quail farm in France. Animals, 2021, 11(1): 29. (doi: 10.3390/ani11010029).
  • Li X., Nie C., Liu Y., Chen Y., Lv X., Wang L., Zhang J., Yang W., Li K., Zheng C., Jia Y., Ning Z., Qu L. The genetic architecture of early body temperature and its correlation with Salmonella Pullorum resistance in three chicken breeds. Frontiers in Genetics, 2020, 10: 1287 (doi: 10.3389/fgene.2019.01287).
  • Pan Z.M., Wang X.Q., Zhang X.M., Geng S.Z., Chen X., Pan W.J., Cong Q.X., Liu X.X, Jiao X.N., Liu X.F. Changes in antimicrobial resistance among Salmonella enterica subspecies enterica serovar Pullorum isolates in China from 1962 to 2007. Veterinary Microbiology, 2009, 136(3-4): 387-392 (doi: 10.1016/j.vetmic.2008.11.015).
  • Gao P., Ma C., Sun Z., Wang L.F., Huang S., Su X.Q., Xu J., Zhang H.P. Feed-additive probiotics accelerate yet antibiotics delay intestinal microbiota maturation in broiler chicken. Microbiome, 2017, 5: 91 (doi: 10.1186/s40168-017-0315-1).
  • Sulakvelidze A., Alavidze Z., Morris Jr. J.G. Bacteriophage therapy. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2001, 45(3): 649-659 (doi: 10.1128/AAC.45.3.649-659.2001).
  • Summers W.C. Bacteriophage therapy. Annual Review of Microbiology, 2001, 55: 437-451 (doi: 10.1146/annurev.micro.55.1.437).
  • Пименов Н.В., Лаишевцев А.И. Современные аспекты борьбы с сальмонеллезной инфекцией в птицеводстве. М., 2017.
  • Пименов Н.В. Специфическая борьба с сальмонеллой в условиях птицеводства. Российский журнал сельскохозяйственных и социально-экономических наук, 2013, 23(11): 16-23.
  • Aleshkin A.V., Volozhantsev N.V., Svetoch E.A., Kiseleva I.A., Rubal’sky E.O., Afanas’ev S.S., Borzilov A.I., Zatevalov A.M., Vasil’ev D.A., Zolotukhin S.N., Zeigarnik M.V., Galimzyanov Kh.M., Rubal’sky O.V. Bacteriophages as probiotics: phage-based probiotic dietary supplement in prophylaxis against foodborne infections. Infekc. Bolezni (Infectious Diseases), 2016, 14(2): 31-40 (doi: 10.20953/1729-9225-2016-2-31-40).
  • Kropinski A.M., Mazzocco A., Waddell T.E., Lingohr E., Johnson R.P. Enumeration of bacteriophages by double agar overlay plaque assay. In: Bacteriophages. Methods in molecular biology, vol. 501 /M.R. Clokie, A.M. Kropinski (eds.). Humana Press, 2009: 69-76 (doi: 10.1007/978-1-60327-164-6_7).
  • Haines M.E., Hodges F.E., Nale J.Y., Mahony J., van Sinderen D., Kaczorowska J., Alrashid B., Akter M., Brown N., Sauvageau D., Sicheritz-Pontén T., Thanki A.M., Millard A.D., Edouard E., Galyov E.E., Clokie M.R. Analysis of selection methods to develop novel phage therapy cocktails against antimicrobial resistant clinical isolates of bacteria. Frontiers in Microbiology, 2021, 12: 613529 (doi: 10.3389/fmicb.2021.613529).
  • Pajunen M., Kiljunen S., Skurnik M. Bacteriophage φYeO3-12, specific for Yersinia enterocolitica serotype O:3, is related to coliphages T3 and T7. Journal of Bacteriology, 2000, 182(18): 5114-5120 (doi: 10.1128/jb.182.18.5114-5120.2000).
  • Capra M.L., Quiberoni A., Reinheimer J. Phages of Lactobacillus casei/paracasei: response to environmental factors and interaction with collection and commercial strains. Journal of Applied Microbiology, 2006, 100(2): 334-342 (doi: 10.1111/j.1365-2672.2005.02767.x).
  • Методические указания по патоморфологической диагностике болезней животных, птиц и рыб в ветеринарных лабораториях. М., 2000.
  • Методические указания 4.2.2723-10. Лабораторная диагностика сальмонеллезов, обнаружение сальмонелл в пищевых продуктах и объектах окружающей среды. М., 2010.
  • Federation of Animal Science Societies. Guide for the care and use of agricultural animals in agricultural research and teaching (4th ed.). American Dairy Science Association, 2010.
  • Ravindran V. Feed enzymes: the science, practice, and metabolic realities. Journal of Applied Poultry Research, 2013, 22(3): 628-636 (doi: 10.3382/japr.2013-00739).
  • Payne R.J., Jansen V.A. Understanding bacteriophage therapy as a density-dependent kinetic process. Journal of Theoretical Biology, 2001, 208(1): 37-48 (doi: 10.1006/jtbi.2000.2198).
  • Kasman L.M., Kasman A., Westwater C., Dolan J., Schmidt M.G., Norris J.S. Overcoming the phage replication threshold: a mathematical model with implications for phage therapy. Journal of Virology, 2002, 76(11): 5557-5564 (doi: 10.1128/JVI.76.11.5557-5564.2002).
  • Atterbury R.J., Van Bergen M.A.P., Ortiz F., Lovell M.A., Harris J.A., De Boer A., Wagenaar J.A., Allen V.M., Barrow P.A. Bacteriophage therapy to reduce Salmonella colonization of broiler chickens. Journal of Applied and Environmental Microbiology, 2007, 73(14): 4543-4549 (doi: 10.1128/AEM.00049-07).
  • Gonçalves G.A.M., Donato T.C., Baptista A.A.S., de Oliveira Corrêa I.M., Garcia K.C.O.D., Andreatti Filho R.L. Bacteriophage-induced reduction in Salmonella Enteritidis counts in the crop of broiler chickens undergoing preslaughter feed withdrawal. Poultry Science, 2014, 93(1): 216-220 (doi: 10.3382/ps.2013-03360).
Еще
Статья научная