Биопрепарат на основе штамма Lactobacillus plantarum l-211 для животноводства. Сообщение II. Кормлениe поросят

Биопрепарат на основе штамма Lactobacillus plantarum l-211 для животноводства. Сообщение II. Кормлениe поросят

Автор: Фисинин В.И., Артемьева Ольга Анатольевна, Чеботарев И.И., Лаптев Г.Ю., Никонов И.Н., Ильина Л.А., Машенцева Н.Г., Савинов А.В., Клабукова Д.Л., Йылдырым Е.А., Новикова Н.И.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Корма, кормовые добавки

Статья в выпуске: 2 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Недостаток лизина в рационе свиней отрицательно сказывается на аппетите, продуктивности, обмене веществ и иммунитете животных. Большинство кормов для свиней дефицитно по содержанию лизина. Использование синтетических аминокислот в качестве добавок значительно удорожает комбикорма. Перспективным представляется разработка биопрепаратов на основе штаммов микроорганизмов, синтезирующих лизин в желудочно-кишечном тракте животных. Наиболее известные продуценты лизина - Brevibacterium lactofermentum, Escherichia coli и представители рода Corynebacterium относятся к условно-патогенной микрофлоре, способной вызывать оппортунистические инфекции. В представленном исследовании мы впервые изучили изменения в бактериальном сообществе кишечника и продуктивные показатели поросят породы крупная белая (ООО «Новгородский бекон», Новгородская обл.) под влиянием продуцента лизина - штамма Lactobacillus plantarum L-211 (ООО «Биореактор», г. Москва). Таксономический состав микроорганизмов определяли с помощью T-RFLP (terminal restriction fragment length polymorphism) анализа. Наблюдение проводили на двух группах поросят в период с 28- до 84-суточного возраста - контрольной ( n = 715) и опытной ( n = 657). Поросятам из опытной группы на фоне основного рациона, соответствующего нормам для породы, один раз в 7 сут выпаивали препарат на основе штамма L. plantarum L-211 (не менее 109 КОЕ/гол.). Микробное сообщество толстого отдела кишечника поросят характеризовалось таксономическим разнообразием и включало ряд неидентифицированных филотипов. В нем доминировали представители филума Firmicutes, включающего преимущественно бактерии из класса Clostridia с целлюлозо- и амилолитическими свойствами, а также из порядка Negativicutes, для которого характерна способность ферментировать кислоты. В меньшем количестве присутствовали микроорганизмы, принадлежащие к филумам Proteobacteria, Bacteroidetes, Actinobacteria и Fusobacteria. Численность бактерий рода Lactobacillus у поросят оказалась ниже, чем предполагалось ранее, кроме того, отмечалось полное отсутствие энтерококков и бифидобактерий, которые принято относить к автохтонной микробиоте толстого отдела кишечника у животных и птицы. Включение штамма, синтезирующего лизин, в рецептуру комбикорма приводило к высокому пробиотическому эффекту - достоверному увеличению численности родов Lactobacillus (в 2,94 раза, Р

Еще

Лизин, микрофлора кишечника, поросята, бактериальное сообщество, пробиотик, продуктивность, сохранность, конверсия корма

Короткий адрес: https://sciup.org/142214040

IDR: 142214040   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.418rus

Список литературы Биопрепарат на основе штамма Lactobacillus plantarum l-211 для животноводства. Сообщение II. Кормлениe поросят

  • Георгиевский В.И. Физиология сельскохозяйственных животных. М., 1990.
  • Эрнст Л.К., Лаптев Г.Ю. Оптимизация микрофлоры желудочно-кишечного тракта сельскохозяйственных животных. СПб, 2011.
  • Hulshof T.G., van der Poel A.F., Hendriks W.H., Bikker P. Amino acid utilization and body composition of growing pigs fed processed soybean meal or rapeseed meal with or without amino acid supplementation. Animal, 2016, 5: 1-11 ( ) DOI: 10.1017/S1751731116002548
  • Gallo L., Dalla Bona M., Carraro L., Cecchinato A., Carnier P., Schiavon S. Effect of progressive reduction in crude protein and lysine of heavy pigs diets on some technological properties of green hams destined for PDO dry-cured ham production. Meat. Sci., 2016, 121: 135-140 ( ) DOI: 10.1016/j.meatsci.2016.06.005
  • Craig A., Henry W., Magowan E. Effect of phase feeding and valine-to-lysine ratio during lactation on sow and piglet performance. J. Anim. Sci., 2016, 94(9): 3835-3843 ( ) DOI: 10.2527/jas.2016-0648
  • Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных. Справочное пособие/Под ред. А.П. Калашникова, В.И. Фисинина, В.В. Щеглова, Н.И. Клейменова. М., 2003.
  • Hulshof T.G., Poel A.F., Hendriks W.H., Bikker P. Amino acid utilization and body composition of growing pigs fed processed soybean meal or rapeseed meal with or without amino acid supplementation. Animal, 2016, Dec 5: 1-11 ( ) DOI: 10.1017/S1751731116002548
  • Фисинин В.И., Чеботарев И.И., Никонов И.Н., Ильина Л.А., Лаптев Г.Ю., Машенцева Н.Г. Подходы к созданию пробиотических биопрепаратов на основе лизин-продуцирующих бактерий. Биофармацевтический журнал, 2014, 6(6): 60-64.
  • Ильина Л.А., Йылдырым Е.А., Филиппова В.А., Никонов И.Н., Лаптев Г.Ю., Новикова Н.И., Фисинин В.И., Чеботарев И.И., Машенцева Н.Г., Клабукова Д.Л. Определение пробиотической активности штамма Lactobacillis plantarum L-211 методом T-RFLP. Биофармацевтический журнал, 2015, 7(6): 11-15.
  • Lal P.B., Schneider B.L., Vu K., Reitzer L. The redundant aminotransferases in lysine and arginine synthesis and the extent of aminotransferase redundancy in Escherichia coli. Mol. Microbiol., 2014, 94(4): 843-856 ( ) DOI: 10.1111/mmi.12801
  • Zhou L.B., Zeng A.P. Exploring lysine riboswitch for metabolic flux control and improvement of L-lysine synthesis in Corynebacterium glutamicum. ACS Synth. Biol., 2015, 4(6): 729-734 ( ) DOI: 10.1021/sb500332c
  • Xing Y., Wang S., Fan J., Oso A.O., Kim S.W., Xiao D., Yang T., Liu G., Jiang G., Li Z., Li L., Zhang B. Effects of dietary supplementation with lysine-yielding Bacillus subtilis on gut morphology, cecal microflora, and intestinal immune response of Linwu ducks. J. Anim. Sci., 2015, 93(7): 3449-3457 ( ) DOI: 10.2527/jas.2014-8090
  • Odunfa S.A., Adeniran S.A., Teniola O.D., Nordstrom J. Evaluation of lysine and methionine production in some Lactobacilli and yeasts from Ogi. Int. J. Food Microbiol., 2001, 63(1-2): 159-163.
  • Delia E., Tafaj M., Mӓnnerin K. Efficiency of probiotics in farm animals. In: Probiotic in animals/E. Rigobelo (ed.). InTech., 2012. V. 2: 247-272 ( ) DOI: 10.5772/50055
  • Li P., Li X., Gu Q., Lou X.Y., Zhang X.M., Song D.F., Zhang C. Comparative genomic analysis of Lactobacillus plantarum ZJ316 reveals its genetic adaptation and potential probiotic profiles. J. Zhejiang Univ. Sci. B., 2016, 17(8): 569-579 ( ) DOI: 10.1631/jzus.B1600176
  • Seo B.J., Mun M.R., Rejish Kumar V.J., Kim C.-J., Lee I., Chang Y.-H., Park Y.H. Bile tolerant Lactobacillus reuteri isolated from pig feces inhibits enteric bacterial pathogens and porcine rotavirus. Vet. Res. Commun., 2010, 34(4): 323-333 ( ) DOI: 10.1007/s11259-010-9357-6
  • Pajarillo E.A., Chae J.P., Balolong M.P., Kim H.B., Seo K.S., Kang D.-K. Characterization of the fecal microbial communities of Duroc pigs using 16S rRNA gene pyrosequencing. Asian-Australas. J. Anim. Sci., 2015, 28: 584-591 ( ) DOI: 10.5713/ajas.14.0651
  • Vondruskova H., Slamova R., Trckova M., Zraly Z., Pavlik I. Alternatives to antibiotic growth promoters in prevention of diarrhoea in weaned piglets: A review. Veterinarni Medicina, 2010, 55(5): 199-224.
  • Dicksved J., Floistrup H., Bergstrom A., Rosenquist M., Pershagen G., Scheynius A., Roos S., Alm J.S., Engstrand L., Braun-Fahrlander C., von Mutius E., Jansson J.K. Molecular fingerprinting of the fecal microbiota of children raised according to different lifestyles. Appl. Environ. Microbiol., 2007, 73: 2284-2289 ( ) DOI: 10.1128/AEM.02223-06
  • Davis E., Rehberger J., King M., Brown D.C., Maxwell C.V., Rehberger T. Characterization of gastrointestinal microbial and immune populations post-weaning in conventionally-reared and segregated early weaned pigs (Proc. 11th Int. Symp. on Digestive Physiology of Pigs, Costa Daurada, 2009). Livestock Science, 2010, 133: 92-94 ( ) DOI: 10.1016/j.livsci.2010.06.032
  • Chae J.P., Pajarillo E.A., Oh J.K., Kim H., Kang D.K. Revealing the combined effects of lactulose and probiotic enterococci on the swine faecal microbiota using 454 pyrosequencing. Microbial Biotechnology, 2016, 9: 486-495 ( ) DOI: 10.1111/1751-7915.12370
  • Dicksved J., Jansson J.K., Lindberg J.E. Fecal microbiome of growing pigs fed a cereal based diet including chicory (Cichorium intybus L.) or ribwort (Plantago lanceolata L.) forage. Journal of Animal Science and Biotechnology, 2015, 6: 53 ( ) DOI: 10.1186/s40104-015-0054-8
  • Лаптев Г.Ю., Новикова Н.И., Ильина Л.А., Йылдырым Е.А., Нагорнова К.В., Думова В.А., Солдатова В.В., Большаков В.Н., Горфункель Е.П., Дубровина Е.Г., Соколова О.Н., Никонов И.Н., Лебедев А.А. Нормы содержания микрофлоры в рубце крупного рогатого скота. Метод. реком. СПб, 2014.
  • Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. М., 1984.
  • Тараканов Б.В. Методы исследования микрофлоры пищеварительного тракта сельскохозяйственных животных и птицы. М., 2006.
  • Nocek J.E. Bovine acidosis: implications on laminitis. J. Dairy Sci., 1997, 80: 1005-1028 ( ) DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(97)76026-0
  • Encyclopedia of metagenomics: environmental metagenomics/S.K. Highlander, F. Rodriguez-Valera, B.A. White (eds.). Springer US, NY, 2015.
  • Kraler M., Ghanbari M., Domig K.J., Schedle K., Kneifel W. The intestinal microbiota of piglets fed with wheat bran variants as characterised by 16S rRNA next-generation amplicon sequencing. Arch. Anim. Nutr., 2016, 70(3): 173-189 ( ) DOI: 10.1080/1745039X.2016.1160534
  • Kucan M., Gobin I., Markov K., Jurcic Momcilovic D., Frece J. Testing the adhesion and colonization ability of Lactobacillus plantarum strain S1 to the mice intestinal epithelium. International Journal of Sanitary Engineering Research, 2012, 6(1): 25-30.
Еще
Статья научная
SciUp 2024 © 2024 ©