Брахитерапия рака предстательной железы и иммунный ответ
Автор: Сивков А.В., Синюхин В.Н., Корякин Андрей Викторович
Журнал: Экспериментальная и клиническая урология @ecuro
Рубрика: Онкоурология
Статья в выпуске: 3 т.15, 2022 года.
Бесплатный доступ
Введение. Информация о сопутствующих брахитерапии (БТ) иммунных реакциях, которые можно попытаться использовать в терапевтических целях, представляет большую клиническую ценность. Материалы и методы. При подготовке обзора литературы по проблеме влияния БТ на иммунитет при раке предстательной железы (РПЖ) были использованы следующие библиографические базы данных: PubMed, Science Direct, научная электронная библиотеки России (еLibrary). Поиск провели по следующим ключевым словам: «рак», «рак предстательной железы», «брахитерапия», «иммунитет», «иммунотерапия», «cancer», «prostate cancer», «brachytherapy», «immunity», «immunotherapy». Всего было найдено 6 источников, имевших непосредственное отношение к влиянию БТ на иммунитет при РПЖ. Результаты. Накопленные клинические данные свидетельствуют о том, что и низкодозная, и высокодозная БТ РПЖ вызывают системный иммунный ответ. Наблюдаемое увеличение числа лейкоцитов в крови объясняют индукцией воспалительной реакции в ответ на облучение опухоли, а уменьшение количества В-клеток - перемещением из кровотока антиген-распознающих B-клеток к месту облучения. Кроме того, после БТ продемонстрировано увеличение количества активированных Т-лимфоцитов, тогда как число миелоидных супрессорных клеток существенно уменьшилось. Высказано предположение, что снижение именно этого показателя может активировать Т-клетки: количество наивных CD4+- и CD8+ T-лимфоцитов достоверно возрастало после локального введения радиоактивных источников, при одновременном снижении количества CD4+ и CD8+ T-клеток памяти. Последнее может говорить о том, что локальная радиотерапия стимулирует процесс активации тимуса и выброс наивных Т-лимфоцитов в кровоток при миграции клеток памяти из кровотока в ПЖ. Описанные эффекты отражают процесс «включения» Т-клеточного иммунитета после БТ. Исследователи считают, что увеличение количества активированных Т-лимфоцитов способствует активации противоопухолевого иммунитета, длительной ремиссии и снижает вероятность возникновения рецидивов РПЖ. Высокодозная БТ локализованного РПЖ, как, вероятно, и низкодозная БТ, вызывают трансформацию иммуногенных свойств опухоли и приводят к выраженной поликлональной инфильтрации ПЖ, преимущественно Т-клетками, которая происходит под контролем большого количества «контрольных точек». Возникновение инфильтратов из иммунных клеток и изменения в системе передачи сигналов между ними после БТ, отражаются изменением типа «воспалительной подписи опухоли» (TIS) от «холодного» к «горячему». После облучения в зоне опухоли, как правило, возрастало количество PD-L1- макрофагов, что расценивают как маркер реакции опухоли на проводимую терапию. Считают, что если БТ вызывает увеличение экспрессии PD1+, то назначение ингибиторов контрольных точек этим больным может дать хороший терапевтический эффект. Заключение. Имеющиеся данные свидетельствуют о том, что БТ праймирует системный иммунный ответ, ведет к активации Т-клеточного иммунитета и, как следствие, противоопухолевого иммунитета. Все это открывает перспективы разработки методов комбинированного лечения РПЖ с использованием БТ и иммунотерапии.
Рак предстательной железы, брахитерапия, иммунный ответ, противоопухолевый иммунитет
Короткий адрес: https://sciup.org/142236639
IDR: 142236639 | DOI: 10.29188/2222-8543-2022-15-3-36-43
Список литературы Брахитерапия рака предстательной железы и иммунный ответ
- Park DS. Current status of brachytherapy for prostate cancer. Korean J Urol 2012;53(11):743-9. https://doi.org/10.4111/kju.2012.53.11.743.
- Janeway CA, Travers P, Walport M, Shlomchik MJ. Immunobiology: The Immune System in Health and Disease. 5th edition. New York: Garland Science 2001; 201 p.
- Schreiber RD, Old LJ, Smyth MJ. Cancer immunoediting: integrating immunity's roles in cancer suppression and promotion. Science 2011;331(6024):1565-70. https://doi.org/10.1126/science.1203486.
- Taube JM, Anders RA, Young GD, Xu H, Sharma R, McMiller T, et al. Colocalization of inflammatory response with B7-h1 expression in human melanocytic lesions supports an adaptive resistance mechanism of immune escape. Sci Transl Med 2012;4(127):127ra37. https://doi.org/10.1126/sci-translmed.3003689.
- Pardoll DM. The blockade of immune checkpoints in cancer im-munotherapy. Nat Rev Cancer 2012;12(4):252-64. https://doi.org/10.1038/ nrc3239.
- Vesely MD, Kershaw MH, Schreiber RD, Smyth MJ. Natural innate and adaptive immunity to cancer. Annu Rev Immunol 2011(29):235-271. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-031210-101324.
- Zhang L, Zhao Y. The regulation of Foxp3 expression in regulatory CD4(+) CD25(+) T cells: multiple pathways on the road. J Cell Physiol 2007;211(3):590-5. https://doi.org/10.1002/jcp.21001.
- Coussens LM, Zitvogel L, Palucka AK. Neutralizing tumor promoting chronic inflammation: A magic bullet? Science 2013;339(6117):286-91. https://doi.org/10.1126/science.1232227.
- Azimi F, Scolyer RA, Rumcheva P, Moncrieff M, Murali R, McCarthy SW, et al. Tumor-infiltrating lymphocyte grade is an independent predictor of sentinel lymph node status and survival in patients with cutaneous melanoma. J Clin Oncol 2012;30(21):2678-83. https://doi.org/10.1200/JC0.2011.37.8539.
- Medler TR, Tiziana Cotechini T, Lisa M, Coussens LM. Immune response to cancer therapy: mounting an effective antitumor response and mechanisms of resistance. Trends Cancer 2015;1(1):66-75. https://doi.org/10.1016Zj.trecan.2015.07.008.
- Walle T, Martinez Monge R, Cerwenka A, Ajona D, Melero I, Lecanda F. Radiation effects on antitumor immune responses: current perspectives and challenges. Ther Adv Med Oncol 2018;10:1758834017742575. https://doi.org/10.1177/1758834017742575.
- Hiller JG, Perry NJ, Poulogiannis G, Riedel B, Sloan EK. Perioperative events influence cancer recurrence risk after surgery. Nat Rev Clin Oncol 2018;15(4):205-218. https://doi.org/10.1038/nrclinonc.2017.194.
- Sharabi AB, Tran PT, Lim M, Drake CG, Deweese TL. Stereotactic radiation therapy combined with immunotherapy: augmenting the role of radiation in local and systemic treatment. Oncology (Williston Park) 2015;29(5):331-40.
- Twyman-Saint Victor C, Rech AJ, Maity A, Rengan R, Pauken KE, Stelekati E, et al. Radiation and dual checkpoint blockade activate non-redundant immune mechanisms in cancer. Nature 2015;520(7547):373-7. https://doi.org/10.1038/nature14292.
- Patel RB, Baniel CC, Sriramaneni RN, Bradley K, Markovina S, Morris ZS. Combining brachytherapy and immunotherapy to achieve in situ tumor vaccination: A review of cooperative mechanisms and clinical opportunities. Brachytherapy 2018;17(6):995-1003. https://doi.org/10.1016/j.brachy.2018.07.004.
- Tsaur I, Brandt MP, Juengel E, Manceau C, Ploussard G. Immunotherapy in prostate cancer: new horizon of hurdles and hopes. World J Urol 2021;39(5):1387-403. https://doi.org/10.1007/s00345-020-03497-1.
- Dudzinski SO, Cameron BD, Wang J, Rathmell JC, Giorgio TD, Kirschner AN. Combination immunotherapy and radiotherapy causes an abscopal treatment response in a mouse model of castration resistant prostate cancer. J Immunother Cancer 2019;7(1):218. https://doi.org/10.1186/s40425-019-0704-z.
- Sharabi AB, Tran PT, Lim M, Drake CG, Deweese TL. Stereotactic radiation therapy combined with immunotherapy: augmenting the role of radiation in local and systemic treatment. Oncology (Williston Park) 2015;29(5):331-40.
- Hanahan D, Weinberg RA. The hallmarks of cancer. Cell 2000;100(1):57-70. https://doi.org/10.1016/s0092-8674(00)81683-9.
- Hanahan D, Weinberg RA. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell 2011;144(5):646-74. https://doi.org/10.1016/jxell.2011.02.013.
- Vitkin N, Nersesian S, Siemens DR, Koti M. The tumor immune contexture of prostate cancer. Front Immunol 2019(10):603. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00603.
- Medler TR, Cotechini T, Coussens LM. Immune response to cancer therapy: mounting an effective antitumor response and mechanisms of resistance. Trends Cancer 2015;1(1):66-75. https://doi.org/10.1016/ j.trecan.2015.07.008.
- Hiller JG, Perry NJ, Poulogiannis G, Riedel B, Sloan EK. Perioperative events influence cancer recurrence risk after surgery. Nat Rev Clin Oncol 2018;15(4):205-18. https://doi.org/10.1038/nrclinonc.2017.194.
- Du E, Wang L, Li CY, Zhang CW, Qu YC, Liu RL, et al. Analysis of immune status after iodine-125 permanent brachytherapy in prostate cancer. Onco Targets Ther 2017(10):2561-7. https://doi.org/10.2147/ OTT.S137491.
- Kubo M, Satoh T, Ishiyama H, Tabata KI, Tsumura H, Komori S, et al. Enhanced activated T cell subsets in prostate cancer patients receiving iodine-125 low-dose-rate prostate brachytherapy. Oncol Rep 2018;39(1):417-24. https://doi.org/10.3892/or.2017.6095.
- Williams S, Keam S, Halse H, Mitchell C, Caramia F, Byrne D. Direct evidence of a clonal and tumor-directed T cell response to prostate cancer brachytherapy. J Clin Oncol 2019;37(7 Suppl):22. https://doi.org/10.1200/ JC0.2019.37.7_suppl.22.
- Keam SP, Hals H, Nguyen T, Wang M, Van Kooten Losi N, Mitchell C, et al. High dose-rate brachytherapy of localized prostate cancer converts tumors from cold to hot. J Immunother Cancer 2020;8(1):e000792. https://doi.org/10.1136/jitc-2020-000792.
- Ayers M, Lunceford J, Nebozhyn M, Murphy E, Loboda A, Kaufman DR, et al. IFN-y-related mRNA profile predicts clinical response to PD-1 blockade. J Clin Invest 2017(127):2930-40. https://doi.org/10.1172/JCI91190.
- Danaher P, Warren S, Lu R, Simoa J, Sullivan A, Pekker I, et al. Pan-cancer adaptive immune resistance as defined by the tumor inflammation signature (TIS): results from the cancer genome atlas (TCGA). J Immunother Cancer 2018;6(1):63. https://doi.org/10.1186/s40425-018-0367-1.
- Wang H, Mendez LC, Morton G, Loblaw A, Mesci A, Chung HT, et al. Immune cell profiling in Gleason 9 prostate cancer patients treated with brachytherapy versus external beam radiotherapy: An exploratory study. Radiother Oncol 2021(155):80-85. https://doi.org/10.1016/ j.radonc.2020.10.029.