Цистатин С: взаимосвязь с некоторыми маркерами иммунитета, воспаления и его роль в прогрессировании диабетической ретинопатии у больных сахарным диабетом 2-го типа
Автор: Саклакова О. А., Фефелова Е. В., Максименя М. В., Терешков П. П., Караваева Т. М., Переломова А. А.
Журнал: Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины @cardiotomsk
Рубрика: Клинические исследования
Статья в выпуске: 3 т.39, 2024 года.
Бесплатный доступ
Цель: изучить корреляции между уровнем цистатина C (Cys-C) и величинами маркеров иммунитета, воспаления, а также клиническими проявлениями диабетической ретинопатии (ДР) у пациентов с сахарным диабетом (СД) 2-го типа.Материал и методы. Сформированы 3 группы пациентов с СД 2-го типа и разными стадиями ДР (по 21 человеку в каждой): I группа - непролиферативная стадия ДР (НПДР), II - препролиферативная (ППДР), III - пролиферативная (ПДР). Группу сравнения составили больные СД 2-го типа без сосудистых осложнений. Клиническое исследование включало: визометрию, тонометрию, оценку критической частоты слияния мельканий, биомикроскопию переднего отдела глаза, офтальмоскопию, биомикроскопию и ультразвуковое исследование (УЗИ) сетчатки, хрусталика, стекловидного тела, фоторегистрацию глазного дна, оптическую когерентную томографию. В сыворотке крови определяли содержание Cys-C, растворимых форм молекул B7.2 (CD86), 4-1ВВ, CTLA-4, Tim-3, LAG-3, PD-1, PD-L1, Галактина-9, белков sICAM-1, SAA, NGAL, а также ферментов (МРО, ММР-2, ММР-9) методом иммуноферментного анализа (ИФА) (мультиплексный анализ).Результаты. По мере прогрессирования ДР уровень Cys-C нарастает относительно группы сравнения: при НПДР - на 94,1% (р function show_abstract() { $('#abstract1').hide(); $('#abstract2').show(); $('#abstract_expand').hide(); }
Сахарный диабет, диабетическая ретинопатия, цистатин c, иммунитет, воспаление
Короткий адрес: https://sciup.org/149146304
IDR: 149146304 | DOI: 10.29001/2073-8552-2024-39-3-89-95
Список литературы Цистатин С: взаимосвязь с некоторыми маркерами иммунитета, воспаления и его роль в прогрессировании диабетической ретинопатии у больных сахарным диабетом 2-го типа
- Saeedi P., Petersohn I., Salpea P., Malanda B., Karuranga S., Unwin N. et al. IDF Diabetes Atlas Committee. Global and regional diabetes prevalence estimates for 2019 and projections for 2030 and 2045: Results from the International Diabetes Federation Diabetes Atlas, 9th edition. Diabetes Res. Clin. Pract. 2019;157:107843. DOI: 10.1016/j.diabres.2019.107843.
- Yang Q.H., Zhang Y., Zhang X.M., Li X.R. Prevalence of diabetic retinopathy, proliferative diabetic retinopathy and non-proliferative diabetic retinopathy in Asian T2DM patients: a systematic review and Meta-analysis. Int. J. Ophthalmol. 2019;12(2):302–311. DOI: 10.18240/ijo.2019.02.19.
- Chou Y., Ma J., Su X., Zhong Y. Emerging insights into the relationship between hyperlipidemia and the risk of diabetic retinopathy. Lipids Health Dis. 2020;19(1):241. DOI: 10.1186/s12944-020-01415-3.
- Zhu B.T. Biochemical mechanism underlying the pathogenesis of diabetic retinopathy and other diabetic complications in humans: the methanol- formaldehyde-formic acid hypothesis. Acta Biochim. Biophys. Sin. (Shanghai). 2022;54(4):415–451. DOI: 10.3724/abbs.2022012.
- Yang N., Lu Y.F., Yang X., Jiang K., Sang A.M., Wu H.Q. Association between cystatin C and diabetic retinopathy among type 2 diabetic patients in China: a Meta-analysis. Int. J. Ophthalmol. 2021;14(9):1430–1440. DOI: 10.18240/ijo.2021.09.21.
- Yuan H.Q., Miao J.X., Xu J.P., Zhu S.X., Xu F., Wang X.H. et al. Increased serum cystatin C levels and responses of pancreatic α- and β-cells in type 2 diabetes. Endocr. Connect. 2022;11(3):e210597. DOI: 10.1530/EC-21-0597.
- Gurudas S., Frudd K., Maheshwari J.J., Revathy Y.R., Sivaprasad S., Ramanathan S.M. et al. Multicenter evaluation of diagnostic circulating biomarkers to detect sight-threatening diabetic retinopathy. JAMA Ophthalmol. 2022;140(6):587–597. DOI: 10.1001/jamaophthalmol. 2022.1175.
- Соловьев Н.В. Возможность фармакологической коррекции, NMDA-индуцированной эксайтотоксичности сетчатки производными 3-гидроксипиридина. Современные технологии в офтальмологии. 2023;2:64. Soloviev N.V. Possibility of pharmacological correction of NMDA-induced excitotoxicity of 3-hydroxypyridine derivatives. Modern technologies in ophthalmology. 2023;2:64. (In Russ.). DOI: 10.25276/2312-4911-2023-2-64-70.
- Мудров В.А. Алгоритмы статистического анализа количественных признаков в биомедицинских исследованиях с помощью пакета программ SPSS. Забайкальский медицинский вестник. 2020;1:140–150. Mudrov V.A. Statistical analysis algorithms of quantitative features in biomedical researchusing the SPSS software package. The Transbaikal medical bulletin. 2020;1:140–150. (In Russ.). DOI: 10.52485/19986173_2020_1_140.
- Zi M., Xu Y. Involvement of cystatin C in immunity and apoptosis. Immunol. Lett. 2018;196:80–90. DOI: 10.1016/j.imlet.2018.01.006.
- Москалец О.В. Молекулы клеточной адгезии ICAM-1 и VCAM-1 при инфекционной патологии. Тихоокеанский медицинский журнал. 2018;2:21–25. Moskalets O.V. Molecules of cellular adhesion ICAM-1 and VCAM-1 in infectious pathology. Pacific Medical Journal. 2018;2:21–25. (In Russ.). DOI: 10.17238/PmJ1609-1175.2018.2.21-25.
- Romejko K., Markowska M., Niemczyk S. The review of current knowledge on Neutrophil Gelatinase-Associated Lipocalin (NGAL). Int. J. Mol. Sci. 2023;24:10470. DOI: 10.3390/ijms241310470.
- Floderer M., Prchal-Murphy M., Vizzardelli C. Dendritic cell-secreted lipocalin2 induces CD8+ T-cell apoptosis, contributes to T-cell priming and leads to a TH1 phenotype. PLoS One. 2014;9(7):e101881. DOI: 10.1371/journal.pone.0101881.
- Lu F., Inoue K., Kato J., Minamishima Sh., Morisaki H. Functions and regulation of lipocalin-2 in gut-origin sepsis: a narrative review. Crit. Care. 2019;23:269. DOI: 10.1186/s13054-019-2550-2.
- Kowluru R.A., Zhong Q., Santos J.M. Matrix metalloproteinases in diabetic retinopathy: potential role of MMP-9. Expert Opin. Investig. Drugs. 2012;21(6):797–805. DOI: 10.1517/13543784.2012.681043.
- Kim I.S., Yang W.S., Kim C.H. Physiological properties, functions, and trends in the matrix metalloproteinase inhibitors in inflammation-mediated human diseases. Curr. Med. Chem. 2023;30(18):2075–2112. DOI:10.2174/0929867329666220823112731.
- Kargapolova Y., Geißen S., Zheng R., Baldus S., Winkels H., Adam M. The enzymatic and non-enzymatic function of myeloperoxidase (MPO) in inflammatory communication. Antioxidants (Basel). 2021;10(4):562. DOI: 10.3390/antiox10040562.
- Shamsi A., Bano B. Journey of cystatins from being mere thiol protease inhibitors to at heart of many pathological conditions. Int. J. Biol. Macromol. 2017;102:674–693. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.
- Perišić Nanut M., Pečar Fonović U., Jakoš T., Kos J. The role of cysteine peptidases in hematopoietic stem cell differentiation and modulation of immune system function. Front. Immunol. 2021;12:680279. DOI: 10.3389/fimmu.2021.680279.