Цитогенетический статус кобыл (Equus caballus) украинской верховой породы в связи с оплодотворяемостью
Автор: Ткачв А.В., Ткачва О.Л., Россоха В.И.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Репродуктивные биотехнологии
Статья в выпуске: 2 т.53, 2018 года.
Бесплатный доступ
В странах с развитым коневодством цитогенетические исследования кобыл широко применяются на практике (в случаях эмбриональной смертности - в обязательном порядке), активно ведутся работы по генетической оценке Equus caballus. Тем не менее, в доступной литературе нам не удалось найти публикаций о связи между цитогенетическими нарушениями у кобыл и результативностью искусственного осеменения замороженной и оттаянной спермой. Мы впервые изучили влияние цитогенетического статуса конематок украинской верховой породы на полноценность их полового цикла и оплодотворяемость по харьковской технологии. Показано, что при установлении гипофункции яичников, которая вызвана повышенной хромосомной изменчивостью (в отсутствие геномных мутаций и сбалансированных цитогенетических нарушений, передаваемых потомству), кобыл целесообразно разделять на три группы по общей хромосомной нестабильности - с числом метафаз с аберрациями до 5 %, от 5 до 10 % и более 10 %. Такое разделение позволяет лучше охарактеризовать физиологическое состояние животных, оптимизировать план лечебных мероприятий, что в дальнейшем влияет на результативность искусственного осеменения при проведении работ по харьковской технологии. В случае охлажденной спермы оплодотворяемость (по проценту рожденных жеребят) у кобыл с цитогенетическим статусом более 10 % метафаз с аберрациями оказалась наименьшей и в среднем была на 29,81-31,86 % ниже (р
Цитогенетический статус кобыл, оплодотворяемость, хромосомные аберрации
Короткий адрес: https://sciup.org/142214170
IDR: 142214170 | DOI: 10.15389/agrobiology.2018.2.302rus
Список литературы Цитогенетический статус кобыл (Equus caballus) украинской верховой породы в связи с оплодотворяемостью
- Aldridge L.I., Kelleher D.L., Reilly M., Brophy P.O. Estimation of the genetic correlation between performances at different levels of show jumping competition in Ireland. J. Anim. Breed. Genet., 2000, 117: 65-72 ( ) DOI: 10.1046/j.1439-0388.2000.00232.x
- Shubertova Z., Candrak J., Rolinec M. Genetic evaluation of show jumping horses in the Slovak Republic. Ann. Anim. Sci., 2016, 16(2): 387-398 ( ) DOI: 10.1515/aoas-2015-0072
- Stefaniuk-Szmukier M., Ropka-Molik K., Zagrajczuk A., Piorkowska K., Szmatola T., Luszczynski J., Bugno-Poniewierska M. Genetic variability in equine GDF9 and BMP15 genes in Arabian and Thoroughbred mares. Ann. Anim. Sci., 2018, 18(1): 39-52 ( ) DOI: 10.1515/aoas-2017-0035
- Zabek T., Semik E., Fornal A., Bungo-Poniewierska M. Genetic variation of two horse breeds in Cpg islands of Oas1 locus. Ann. Anim. Sci., 2014, 14(4): 841-850 ( ) DOI: 10.2478/aoas-2014-0069
- Curik I., Zechner P., Sölkner J., Achmann R., Bodo I., Dovc P., Kavar T., Marti E., Brem G. Inbreeding, microsatellite heterozygosity, and morphological traits in Lipizzan horses. J. Hered., 2003, 94: 125-132 ( ) DOI: 10.1093/jhered/esg029
- Khanshour A., Juras R., Blackburn R., Cothran E.G. The legend of the Canadian Horse: genetic diversity and breed origin. J. Hered., 2015, 106(1): 37-44 ( ) DOI: 10.1093/jhered/esu074
- Ducro B.J., Koenen E.P.C., Tartwijk J.M.F.M., Bovenhuis H. Genetic relations of movement and free-jumping traits with dressage and show-jumping performance in competition of Dutch Warmblood horses. Livest. Sci., 2007, 107: 227-234 ( ) DOI: 10.1016/j.livsci.2006.09.018
- Druml T., Grilz-Seger G., Neuditschko M., Neuhauser B., Brem G. Phenotypic and genetic analysis of the leopard complex spotting in Noriker horses. J. Hered., 2017, 108(5): 505-514 ( ) DOI: 10.1093/jhered/esx039
- Collins C.W., Songsasen N.S., Vick M.M., Wolfe B.A., Weiss R.B. Abnormal reproductive patterns in Przewalski's mares are associated with a loss in gene diversity. Biol. Reprod., 2012, 86(2): 1-10 ( ) DOI: 10.1095/biolreprod.111.092676
- Tkachev A.V., Sheremetа V.I., Tkachevа O.L., Rossokha V.I. Physiological relationship of erythrocyne antigens with indicators of horse spermogram. Fiziol. Zh., 2017, 63(1): 84-90 ( ) DOI: 10.15407/fz63.01.084
- Choi Y.H., Love C.C., Chung Y.G., Varner D.D., Westhusin M.E., Burghardt R.C., Hinrichs K. Production of nuclear transfer horse embryos by Piezo-driven injection of somatic cell nuclei and activation with stallion sperm cytosolic extract. Biol. Reprod., 2002, 67(2): 561-567 ( ) DOI: 10.1095/biolreprod67.2.561
- McPartlin L.A., Suarez S.S., Czaya C.A., Hinrichs K., Bedford-Guaus S.J. Hyperactivation of stallion sperm is required for successful in vitro fertilization of equine oocytes. Biol. Reprod., 2009, 81(1): 199-206 ( ) DOI: 10.1095/biolreprod.108.074880
- Moskalets V.V., Moskalets T.Z., Vasylkivskyi S.P., Grynyk I.V., Vovkohon A.H., Tarasyuk S.I., Rybalchenko V.K. Adaptability and stability mechanisms of Triticeae tribe to epiphytoparasites in anthropical ecosystem. Ukrainian Journal of Ecology, 2017, 7(2): 230-238 ( ) DOI: 10.15421/2017_41
- Taguchi T., Kubota S., Mezaki T., Tagami E., Sekida S., Nakachi S., Okuda K., Tominaga A. Identification of homogeneously staining regions by G-banding and chromosome microdissection, and FISH marker selection using human Alu sequence primers in a scleractinian coral Coelastrea aspera Verrill, 1866 (Cnidaria). Comp. Cytogenet., 2016, 10(1): 61-75 ( ) DOI: 10.3897/CompCytogen.v10i1.5699
- Dean W., Santos F., Reik W. Epigenetic reprogramming in early mammalian development and following somatic nuclear transfer. Seminars in Cell and Developmental Biology, 2003, 14: 93-100 ( ) DOI: 10.1016/s1084-9521(02)00141-6
- Савина Н.В., Смаль М.П., Кужир Т. Д. Метод ДНК-комет в выявлении геномной нестабильности. Мониторинг состояния генома у работников ОАО «МАЗ». Молекулярная и прикладная генетика, 2008, 10: 108-114.
- Kosowska B., Strzała T., Moska M. Cytogenetic examination of South American tapirs, Tapirus terrestris (Perissodactyla, Tapiridae) from the Wroclaw Zoological Garden. Vestnik zoologii, 2015, 49(6): 529-536 ( ) DOI: 10.1515/vzoo-2015-0063
- Перевозкин В.П., Бондарчук С.С., Минич А.С. Цитогенетический анализ видового состава и инверсионной структуры популяций малярийных комаров Астраханской области. Генетика, 2015, 51(8): 924-933.
- Pawlina K., Bugno-Poniewierska M. The application of zoo-fish technique for analysis of chromosomal rearrangements in the Equidae family. Ann. Anim. Sci., 2012, 12(1): 5-13 ( ) DOI: 10.2478/v10220-012-0001-y
- Danielak-Czech B., Rejduch B., Kozubska-Sobocińska A. Identification of telomeric sequences in pigs with rearranged karyotype using prins technique/Identyfikacja sekwencji telomerowych u świń z rearanżacją kariotypu przy wykorzystaniu techniki PRINS. Ann. Anim. Sci., 2013, 13(3): 495-502 ( ) DOI: 10.2478/aoas-2013-0022
- Warchałowska-Śliwa E., Grzywacz B., Heller K.G., Chobanov D.P. Comparative analysis of chromosomes in the Palaearctic bush-crickets of tribe Pholidopterini (Orthoptera, Tettigoniinae). Comp. Cytogenet., 2017, 11(2): 309-324 ( ) DOI: 10.3897/CompCytogen.v11i2.12070
- Sadílek D., Angus R.B.,ŠTáhlavský F., Vilímová J. Comparison of different cytogenetic methods and tissue suitability for the study of chromosomes in Cimex lectularius (Heteroptera, Cimicidae). Comp. Cytogenet., 2016, 10(4): 731-752 ( ) DOI: 10.3897/CompCytogen.v10i4.10681
- Ткачов О.В. Пристрiй атравматичний для штучного осiменiння кобил. Патент України на корисну модель № 105004, МПК А61D 19/02. Заявл. 05.10.2015. Опубл. 25.02.2016. Бюл. № 4.
- Плохинский Н.А. Руководство по биометрии для зоотехников. М., 1969.
- Wejer J., Lewczuk D. Effect of the age on the evaluation of horse conformation and movement. Ann. Anim. Sci., 2016, 16(3): 863-870 ( ) DOI: 10.1515/aoas-2015-0092
- Melo C.M., Papa F.O., Fioratti E.G., Magalhaes L.C.O., Alvarenga M.A. Application of equine epididymal sperm. Biol. Reprod., 2010, 83(Suppl_1): 672-680 ( ) DOI: 10.1093/biolreprod/83.s1.672
- Robeck T.R., Steinman K.J., Gearhart S., Reidarson T.R., McBain J.F., Monfort S.L. Reproductive physiology and development of artificial insemination technology in killer whales (Orcinus orca). Biol. Reprod., 2004, 71(2): 650-660 ( ) DOI: 10.1095/biolreprod.104.027961
- Lindsey A.C., Morris L.H., Allen W.R., Schenk J.L., Squires E.L., Bruemmer J.E. Hysteroscopic insemination of mares with low numbers of nonsorted or flow sorted spermatozoa. Equine Vet. J., 2002, 34: 128-132 ( ) DOI: 10.2746/042516402776767178
- Lindsey A.C., Schenk J.L., Graham J.K., Bruemmer J.E., Squires E.L. Hysteroscopic insemination of low numbers of flow sorted fresh and frozen/thawed stallion spermatozoa. Equine Vet. J., 2002, 34: 121-127 ( ) DOI: 10.2746/042516402776767321
