Детекция генов, кодирующих ферменты биосинтеза эктоина, у актинобактерий, выделенных из почвы района разработки Верхнекамского соленосного бассейна

Автор: Ананьина Л.Н., Шестакова Е.А., Плотникова Е.Г.

Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio

Рубрика: Микробиология

Статья в выпуске: 3, 2018 года.

Бесплатный доступ

Разработаны две системы праймеров, подобраны условия полимеразной цепной реакции и состав ПЦР-смеси для амплификации фрагмента ect-оперона, включающего гены ectB и ectG, детерминирующие Ь-2,4-диаминобутиратаминотрансферазу и эктоинсинтезу, соответственно, на матрице ДНК бактерий родов Rhodococcus, Microbacterium и Brevibacterium. Проведен скрининг 9 штаммов бактерий, выделенных из почвы района промышленной разработки Верхнекамского соленосного бассейна, с применением разработанных систем праймеров. В ходе амплификации специфический продукт генов-мишеней получен на матрице ДНК штаммов Brevibacterium sp. B-R и Microbacterium sp. Y6, а также представителей филогенетических групп R. erythropolis и R. rhodochrous рода Rhodococcus. На матрице ДНК штамма Microbacterium sp. SMB33 специфический продукт не был синтезирован, что может указывать на отличие генетических детерминант синтеза эктоина этого штамма от известных.

Еще

Олигонуклеотиды, ect-гены, полимеразная цепная реакция, актинобактерии

Короткий адрес: https://sciup.org/147227027

IDR: 147227027

Список литературы Детекция генов, кодирующих ферменты биосинтеза эктоина, у актинобактерий, выделенных из почвы района разработки Верхнекамского соленосного бассейна

  • Бабошко А.О., Бачурин Б.А. Тяжелые металлы в отходах калийной промышленности // Горный информационно-аналитический бюллетень. 2009. № 5. С. 369-376.
  • Гавриш Е.Ю. и др. Три новых вида бревибактерий - Brevibacterium antiquum sp. nov., Brevibacterium aurantiacum sp. nov. и Brevibacterium per-mense sp. nov. // Микробиология. 2004. Вып. 73, № 2. С. 218-225.
  • Кригер О.В. и др. Основные аспекты конструирования праймеров для определения видовой принадлежности ДНК крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакцией // Современные проблемы науки и образования. 2012. № 2. C. 362-370.
  • Патрушев Л.И. Искусственные генетические системы. М.: Наука, 2004. T. 1: Генная белковая инженерия. 526 с.
  • Плотникова Е.Г. и др. Характеристика микроорганизмов, выделенных из техногенных почв Прикамья // Экология. 2006. № 4. С. 261-268.
  • Плотникова Е.Г. и др. Бактерии-деструкторы полициклических ароматических углеводородов, выделенные из почв и донных отложений района солеразработок // Микробиология. 2001. № 1. С. 61-69.
  • Alvarez H.M. et al. Physiological and morphological responses of the soil bacterium Rhodococcus opacus strain PD630 to water stress // FEMS Microbiology ecology. 2004. Vol. 50. P. 75-86.
  • DOI: 10.1016/j.femsec.2004.06.002
  • Anan'ina L.N. et al. Naphthalene-degrading bacteria of the genus Rhodococcus from the Verkhnekamsk salt mining region of Russia // Antonie van Leeu-wenhoek. 2011. Vol. 100. P. 309-316.
  • Bolhuis H., Fillinger L., Stal L.J. Coastal microbial mat diversity along a natural salinity gradient // PLoS One. 2013. Vol. 8. P. e63166.
  • DOI: 10.1371/journal.pone.0063166
  • Boujelben I. et al. Spatial and seasonal prokaryotic community dynamics in ponds of increasing salinity of Sfax solar saltern in Tunisia // Antonie Van Leeuwenhoek. 2012. Vol. 101. P. 845-857.
  • DOI: 10.1007/s10482-012-9701-7
  • Claverias F.P. et al. Culturable diversity and antimicrobial activity of Actinobacteria from marine sediments in Valparaiso bay, Chile // Frontiers microbiology. 2015. Vol. 6. P. 737.
  • DOI: 10.3389/fmicb.2015.00737
  • Designing PCR primers and probes. URL: https://eu.idtdna.com/pages/decoded/decoded-articles/pipettips/decoded/2013/10/21/designing-pcr-primers-and-probes.
  • Gonzalez-Silva B.M. et al. Changes in the microbial community of an anammox consortium during adaptation to marine conditions revealed by 454 py-rosequencing // Appllied microbiology and bio-technolology. 2017. Vol. 101. P. 5149-5162.
  • DOI: 10.1007/s00253-017-8160-5
  • Lee L.-H. et al. Diversity and antimicrobial activities of Actinobacteria isolated from tropical mangrove sediments in Malaysia // The scientific world journal. 2014. Vol. 2014. URL:
  • DOI: 10.1155/2014/698178
  • Luo W. et al. Effects of salinity build-up on the performance and bacterial community structure of a membrane bioreactor // Bioresource technology. 2016. Vol. 200. P. 305-310.
  • DOI: 10.1016/j.biortech.2015.10.043
  • Megaw J., Busetti A., GilmoreB.F. Isolation and characterisation of 1-alkyl-3-methylimidazolium chloride ionic liquid-tolerant and biodegrading marine bacteria // PLoS One. 2013. Vol. 8. P. e60806.
  • DOI: 10.1371/journal.pone.0060806
  • Nagata S., Adachi K., Sano H. Intracellular changes in ions and organic solutes in halotolerant Brevibacterium sp. strain JCM 6894 after exposure to hyperosmotic shock // Appllied and environmental microbiology. 1998. Vol. 64. P. 3641-3647.
  • Ou D. et al. Salt-tolerance aerobic granular sludge: formation and microbial community characteristics // Bioresource technololgy. 2018. Vol. 249. P. 132-138.
  • DOI: 10.1016/j.biortech.2017.07.154
  • Qiu G., Ting Y.P. Osmotic membrane bioreactor for wastewater treatment and the effect of salt accumulation on system performance and microbial community dynamics // Bioresource technology. 2013. Vol. 150. P. 287-297.
  • DOI: 10.1016/j.biortech.2013.09.090
  • Raymond R.L. Microbial oxidation of n-paraffinic hydrocarbons // Developments in industrial microbiology. 1961. Vol. 2. P. 23-32.
  • Wilson K. Preparation of genomic DNA from bacteria // Ausubel F.M., Brent R., Kingston R.E., Moore D.D., Seidman J.G., Smith J.A., Struhl K. (eds.) Current protocols in molecular biology, 3rd edn. Wiley; New York, 1995.
  • Yuan M. et al. Phylogenetic diversity and biological activity of actinobacteria isolated from the Chukchi Shelf marine sediments in the Arctic Ocean // Marine drugs. 2014. Vol. 12. P. 1281-1297.
  • DOI: 10.3390/md12031281
Еще
Статья научная