ДНК-анализ полиморфизма генов миостатина, лептина и кальпаина 1 у российской популяции крупного рогатого скота абердин-ангусской породы

Автор: Коновалова Е.Н., Селионова М.И., Гладырь Е.А., Романенкова О.С., Евстафьева Л.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Генетическая структура популяций

Статья в выпуске: 4 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Расширить производство говядины, которая имеет высокую питательную ценность и уникальный аминокислотный состав (В.С. Колодязная с соавт., 2011; D. Pighin с соавт., 2016), можно за счет использования специализированных мясных пород крупного рогатого скота, в частности абердин-ангусской. Эта порода положительно зарекомендовала себя при разведении как за рубежом, так и в России благодаря хорошей акклиматизационной способности и высокой продуктивности (R. Toušová с соавт., 2015; V.M. Gabidulin с соавт., 2018; А.И. Отаров с соавт., 2021). Современные стратегии повышения эффективности мясного скотоводства включают анализ ДНК животных, который позволяет устанавливать генетические детерминанты высокой продуктивности для целенаправленного отбора носителей экономически значимых аллелей (В.Ф. Федоренко с соавт., 2018; S.A. Terry с соавт., 2020). В настоящей работе впервые созданы тест-системы на основе метода ПЦР-ПДРФ для выявления аллельных вариантов полиморфизмов Arg4Cys LEP и CAPN1 _316, при помощи которых провели генотипирование популяции крупного рогатого скота абердин-ангусской породы. Были подсчитаны частоты встречаемости различных генотипов изучаемых полиморфизмов, а также определено влияние полиморфизмов генов лептина и кальпаина 1 на откормочные качества животных. Цель исследований заключалась в разработке тест-систем для выявления полиморфизма генов лептина ( LEP ) в позиции c.466 C→T и кальпаина 1 ( CAPN1 ) в позиции rs17872000, исследовании популяции крупного рогатого скота абердин-ангусской породы по этим генам и гену миостатина ( MSTN ), а также в определении связи различных аллельных вариантов с откормочными качествами животных. Объектом исследования была популяция молодняка крупного рогатого скота ( Bos taurus ) абердин-ангусской породы ООО «КФХ «Хэппи Фарм» (Калужская обл., Медынский р-н) ( n = 145), представленная группами бычков ( n = 64) и телок ( n = 81), рожденных в период с марта 2020 года по май 2021 года. Отъем телят от матерей проводили в возрасте 6-9 мес в зависимости от развития теленка. Живую массу определяли в возрасте 6, 8, 12 и 15 мес. Для генотипирования из образцов крови выделяли ДНК с использованием набора ДНК-Экстран 1 (ЗАО «Синтол», Россия). При разработке тест-систем применяли метод полимеразной цепной реакции с последующим анализом полиморфизма длин рестрикционных фрагментов (ПЦР-ПДРФ). ПЦР-амплификацию осуществляли на термоциклере Bio-Rad T100 («Bio-Rad Laboratories», Сингапур). При успешной амплификации дальнейший ПДРФ-анализ, позволяющий дифференцировать различные аллели изучаемых SNPs, проводили при помощи эндонуклеаз рестрикции, для которых в ДНК-последовательностях мутантных аллелей обнаружены сайты узнавания. Эндонуклеазы подбирали в программе NEBcutter v2.0. (https://nc2.neb.com/NEBcutter2/). Анализ продуктов ПЦР-ПДРФ проводили методом гель-электрофореза в 2 % агарозном геле. Тест-система для анализа полиморфизма F94L MSTN была разработана ранее (E.N. Konovalova с соавт., 2021). Для верификации корректности ПЦР по полиморфизму гена кальпаина 1 CAPN1 _316 амплификаты трех возможных генотипов были секвенированы по Сэнгеру. При разработке тест-системы для диагностики полиморфизмов Arg4Cys LEP и CAPN1 _316 использовали последовательности NM_174259 и AJ512638.1 из Национального центра биотехнологической информации (National Center for Biotechnology Information, NCBI, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/). Установлено, что по полиморфизму F94L MSTN генотип CC встречался у 98,77 % исследованных животных. По полиморфизму Arg4Cys LEP наиболее часто встречался генотип СТ , частота которого в группе бычков составила 42,19 %, телок - 45,68 %. По полиморфизму CAPN1 _316 таковым оказался генотип GG , который выявляли у 51,56 % бычков и 69,14 % телочек. Частоты желательных с точки зрения продуктивности аллелей в группах бычков и телок составили: А F94L MSTN - 0,00 и 0,01, С Arg4Cys LEP - 0,49 и 0,51, C CAPN1 _316 - 0,20 и 0,28. Бычки с генотипом ТТ Arg4Cys LEP демонстрировали наибольшую эффективность набора живой массы в период от рождения до 8 мес, среднесуточный прирост их массы составил 778 г и был достоверно выше ( t = 2,18) по сравнению с СС (748 г). В отношении полиморфизма CAPN1 _316 в группе телок от рождения до 8 мес была отмечена тенденция к более высоким приростам массы у животных с генотипом СС : они набирали 770 г/сут, тогда как особи c генотипами GC и GG - соответственно 720 и 730 г/сут. Однако в послеотъемный период наблюдаемые тенденции поменялись: у бычков в возрасте 12 мес с генотипом СС Arg4Cys LEP наблюдалась значительно большая живая масса по сравнению с СТ , а телки с GG CAPN1 _316 в период от 8 до 15 мес имели достоверно более высокий прирост живой массы по сравнению с СС (790 г против 740 г). Разработанные нами тест-системы для ДНК-диаг-ностики полиморфизмов Arg4Cys LEP и CAPN1 _316 могут быть использованы при генотипировании мясного скота и отборе животных - носителей желательных генотипов.

Еще

Крупный рогатый скот, абердин-ангусская порода, маркеры продуктивности, миостатин, лептин, кальпаин 1

Короткий адрес: https://sciup.org/142239842

IDR: 142239842   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.4.622rus

Список литературы ДНК-анализ полиморфизма генов миостатина, лептина и кальпаина 1 у российской популяции крупного рогатого скота абердин-ангусской породы

  • Колодязная В.С., Бараненко Д.А, Бройко Ю.В. Биологическая ценность белков молочной телятины. Процессы и аппараты пищевых производств, 2011, 1: 232-237.
  • Pighin D., Pazos A., Chamorro V., Paschetta F., Cunzolo S., Godoy F., Messina V., Por-domingo A., Grigioni G. A contribution of beef to human health: a review of the role of the animal production systems. The Scientific World Journal, 2016, 2016: 8681491 (doi: 10.1155/2016/8681491).
  • Terry S.A., Basarab J.A., Guan L.L., McAllister T.A. Strategies to improve the efficiency of beef cattle production. Canadian Journal of Animal Science, 2020, 101(1): 1-19 (doi: 10.1139/cjas-2020-0022).
  • Федоренко В.Ф., Мишуров Н.П., Кузьмина Т.Н., Тихомиров А.И., Гуськова С.В., Свина-рев И.Ю., Бекенев В.А., Колосов Ю.А., Фролова В.И., Большакова И.В. Передовые прак-тики в отечественном племенном животноводстве: научный аналитический обзор. М., 2018.
  • Дунин И.М., Тяпугин С.Е., Мещеров Р.К., Ходыков В.П., Аджибеков В.К., Тяпугин Е.Е., Дюльдина А.В. Состояние мясного скотоводства в Российской Федерации: реалии и перспективы. Молочное и мясное скотоводство, 2020, 2: 2-7 (doi: 10.33943/MMS.2020.40.30.001).
  • Toušová R., Ducháček J., Stádník L., Ptáček M., Beran J. The selected factors influenced growth ability to weaning of Aberdeen Angus cattle. Acta Universitatis Agriculturae et Silviculturae Men-delianae Brunensis, 2015, 63(2): 457-461 (doi: 10.11118/actaun201563020457).
  • Отаров А.И., Каюмов Ф.Г., Третьякова Р.Ф. Оценка мясной продуктивности и качества мяса бычков разных генотипов в предгорной и горной зонах Кабардино-Балкарской Республики. Животноводство и кормопроизводство, 2021, 104 (2): 56-64 (doi: 10.33284/2658-3135-104-2-56).
  • Габидулин В.М., Алимова С.А. Генотипические, биологические, физиологические особенности скота абердин-ангусской породы. Вестник мясного скотоводства, 2017, 4(100): 18-24.
  • Дунин И.М., Бутусов Д.В., Шичкин Г.И., Сафина Г.Ф., Чернов В.В., Ласточкина О.В., Тяпугин С.Е., Боголюбова Л.П., Никитина С.В., Матвеева Е.А., Тяпугин Е.Е. Состояние мясного скотоводства в Российской Федерации. В сб.: Ежегодник по племенной работе в мясном скотоводстве в хозяйствах Российской Федерации (2019 год). Лесные Поляны, 2020: 3-16.
  • Chen M.-M., Zhao Y.-P., Zhao Y., Deng S.-L., Yu K. Regulation of myostatin on the growth and development of skeletal muscle. Frontiers in Cell and Developmental Biology, 2021, 9: 785712 (doi: 10.3389/fcell.2021.785712).
  • Grobet L., Martin L.J.R., Poncelet D., Pirottin D., Brouwers B., Riquet J., Schoeberlein A., Dunner S., Ménissier F., Massabanda J., Fries R., Hanset R., Georges M. A deletion in the bovine myostatin gene causes the double—muscled phenotype in cattle. Nature Genetics, 1997, 17(1): 71-74 (doi: 10.1038/ng0997-71).
  • Dunner S., Miranda M.E., Amigues Y., Canon J., Georges M., Hanset R., Williams J., Menis-sier F. Haplotype diversity of the myostatin gene among beef cattle breeds. Genetics, Selection, Evolution, 2003, 35: 103-118 (doi: 10.1186/1297-9686-35-1-103).
  • Sellick G.S., Pitchford W.S., Morris C.A., Cullen N.G., Crawford A.M., Raadsma H.W., Bottema C.D.K. Effect of myostatin F94L on carcass yield in cattle: MSTN effects on beef yield. Animal Genetics, 2007, 38(5): 440-446 (doi: 10.1111/j.1365-2052.2007.01623.x).
  • Esmailizadeh A.K., Bottema C.D.K, Sellick G.S., Verbyla A.P., Morris C.A., Cullen N.G., Pitch-ford W.S. Effects of the myostatin F94L substitution on beef traits. Journal of Animal Science, 2008, 86(5): 1038-1046 (doi: 10.2527/jas.2007-0589).
  • Lee J., Kim J.-M., Garrick D.J. Increasing the accuracy of genomic prediction in pure-bred Limousin beef cattle by including cross-bred Limousin data and accounting for an F94L variant in MSTN. Animal Genetics, 2019, 50(6): 621-633 (doi: 10.1111/age.12846).
  • Konovalova E.N., Romanenkova O.S., Zimina A.A., Volkova V.V., Sermyagin A.A. Genetic var-iations and haplotypic diversity in the myostatin gene of different cattle breeds in Russia. Animals, 2021, 11(10): 2810 (doi: 10.3390/ani11102810).
  • Eduardo Casas E., Kehrli Jr.M.E. A review of selected genes with known effects on performance and health of cattle. Frontiers Veterinary Science, 2016, 3: 113 (doi: 10.3389/fvets.2016.00113).
  • Komisarek J., Szyda J., Michalak A., Dorynek Z. Impact of leptin gene polymorphisms on breed-ing value for milk production traits in cattle. Journal of Animal and Feed Sciences, 2005, 14(3): 491-500 (doi: 10.22358/JAFS/67042/2005).
  • Герасимов Н.П., Колпаков В.И., Косян Д.Б., Сыромятников М.Ю., Кван О.В., Руса-кова Е.А. Оценка взаимосвязи послеубойных качеств животных крупного рогатого скота с наличием полиморфизмов LEP 528С/T и LEP 73С/T. Животноводство и кормопроизвод-ство, 2020, 103(3): 114-126 (doi: 10.33284/2658-3135-103-3-114).
  • Liefers S., Pas M.T., Veerkamp R., Chilliard Y., Delavaud C., Gerritsen R., van der Lende T. Association of leptin gene polymorphisms with serum leptin concentration in dairy cows. Mam-malian Genome, 2003, 14: 657-663 (doi: 10.1007/s00335-003-2275-y).
  • Kovalyuk N.V., Machulskaya E.V., Satsuk V.F., Shakhnazarova Yu.Yu. Influence of polymor-phism of R25C and Y7F loci of the leptin gene on the duration of economic use of the Ayrshire cattle. Russian Agricultural Sciences, 2017, 43(6): 494-496 (doi: 10.3103/S1068367417060064).
  • Mota L.F.M., Bonafé C.M., Alexandre P.A., Santana M.H., Novais F.J, Toriyama E., Pires A.V., Silva S.L., Leme P.R., Ferraz J.B.S., Fukumasu H. Circulating leptin and its muscle gene ex-pression in Nellore cattle with divergent feed efficiency. Journal of Animal Science and Biotech-nology, 2017, 8: 71 (doi: 10.1186/s40104-017-0203-3).
  • Buchanan F.C., Fitzsimmons C.J., Van Kessel A.G., Thue T.D., Winkelman-Sim D.C., Schmutz S.M. Association of a missense mutation in the bovine leptin gene with carcass fat content and leptin mRNA levels. Genetics, Selection, Evolution, 2002, 34: 105-116 (doi: 10.1186/1297-9686-34-1-105).
  • Hou G., Huang M., Gao X., Li J., Gao H., Ren H., Xu S. Association of calpain 1 (CAPN1) and HRSP12 allelic variants in beef cattle with carcass traits. African Journal of Biotechnology, 2011, 10(63): 13714-8 (doi: 10.5897/AJB11.338).
  • Casas E., White S.N., Wheeler T.L., Shackelford S.D., Koohmaraie M., Riley D.G., Chase C.C. Jr., Johnson D.D., Smith T.P. Effects of calpastatin and micro-calpain markers in beef cattle on tenderness traits. Journal of Animal Science, 2006, 84(3): 520-525 (doi: 10.2527/2006.843520x).
  • White S.N., Casas E., Wheeler T.L., Shackelford S.D., Koohmaraie M., Riley D.G., Chase C.C. Jr., Johnson D.D., Keele J.W., Smith T.P.L. A new single nucleotide polymorphism in CAPN1 extends the current tenderness marker test to include cattle of Bos indicus, Bos taurus, and cross-bred descent. Journal of Animal Science, 2005, 83(9): 2001-2008 (doi: 10.2527/2005.8392001x).
  • Brooker R.J., Widmaier E.P., Graham L.E., Stiling P.D. Biology. Fourth edition. McGraw-Hill Education, 2017.
  • Основы животноводства /Под ред. А.И. Солдатова. М., 1988.
  • Leal-Gutiérrez J.D, Elzo M.A., Johnson D.D., Scheffler T.L., Scheffler J.M., Mateescu R.G. Association of μ-calpain and calpastatin polymorphisms with meat tenderness in a Brahman-Angus population. Frontiers in Genetics, 2018, 9: 56 (doi: 10.3389/fgene.2018.00056).
  • Rodriguez S., Gaunt T.R., Day I.N.M. Hardy-Weinberg Equilibrium Testing of Biological As-certainment for Mendelian Randomization Studies. American Journal of Epidemiology, 2009, 169(4): 505-514 (doi: 10.1093/aje/kwn359).
  • Glantz S.A. Primer of biostatistics. 4th ed.; Health Professions Division, McGraw-Hill, New York, 1997.
  • Методическое рекомендации по порядку и условиям проведения бонитировки племенного крупного рогатого скота мясного направления продуктивности /Под ред. И.М. Дудина. Лесные Поляны, 2020. Режим доступа: https://files.stroyinf.ru/Data2/1/4293721/4293721853.pdf. Без даты.
  • Ребриков Д.В., Саматов Г.А., Трофимов Д.Ю., Семёнов П.А., Савилова А.М., Ко-фиади И.А., Абрамов Д.Д. ПЦР в реальном времени: практическое руководство. 8-е изд. /Под ред. Д.В. Ребрикова. М., 2020.
  • Chacko E., Ranganathan S. Genome-wide analysis of alternative splicing in cow: implications in bovine as a model for human diseases. BMC Genomics, 2009, 10(3): S11 (doi: 10.1186/1471-2164-10-S3-S11).
  • Скачкова О.А., Васильев А.А., Бригида А.В. Изучение альтернативного сплайсинга в генах LEPR, PRLR, GHR крупного рогатого скота в аспекте молочной продуктивности. Аграрный научный журнал, 2022, 2: 61-64 (doi: 10.28983/asj.y2022i2pp61-64).
  • Габидуллин В.М., Алимова С.А. Метод прогнозирования продуктивности абердин-ангус-ского скота с учетом результатов полиморфизма генов. Вестник мясного скотоводства, 2016, 4(96): 30-35.
  • Алипкина С.И., Налобин Д.С., Галиакберова А.А., Трошев Д.В., Краснов М.С., Богуславский Д.В., Глазко Т.Т., Глазко В.И., Косовский Г.Ю. Лептин и его рецептор в норме и при патоло-гии. Успехи современной биологии, 2019, 139(4): 352-364 (doi: 10.1134/S0042132419040033).
  • Zhang J., Scarpace P.J. The soluble leptin receptor neutralizes leptin-mediated STAT3 signalling and anorexic responses in vivo. British Journal of Pharmacology, 2009, 158(2): 475-482 (doi: 10.1111/j.1476-5381.2009.00246.x).
  • Kratzsch J., Lammert A., Bottner A., Seidel B., Mueller G., Thiery J., Hebebrand J., Kiess W. Circulating soluble leptin receptor and free leptin index during childhood, puberty, and adoles-cence. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 2002, 87(10): 4587-4594 (doi: 10.1210/jc.2002-020001).
  • Zhang M., Bai X.J. Leptin and leptin receptor gene polymorphisms are correlated with production performance in the Arctic fox. Genetics and Molecular Research, 2015, 14(2): 5560-5570 (doi: 10.4238/2015.May.25.7).
  • Mrode R., Ojango J.M.K., Okeyo A.M., Mwacharo J.M. Genomic selection and use of molecular tools in breeding programs for indigenous and crossbred cattle in developing countries: current status and future prospects (review article). Frontiers Genetics, 2019, 9: 694 (doi: 10.3389/fgene.2018.00694).
  • Moravčíková N., Kasarda R., Vostrý L., Krupová Z., Krupa E., Lehocká K., Olšanská B., Tra-kovická A., Nádaský R., Židek R., Belej L., Golian J. Analysis of selection signatures in the beef cattle genome. Czech Journal of Animal Science, 2019, 64(12): 491-503 (doi: 10.17221/226/2019-CJAS).
Еще
Статья научная