Естественная резистентность и микробиоценоз кишечника телят при применении БАВ
Автор: Андреева А.В., Арсланова Ю.Ф.
Статья в выпуске: 3 т.207, 2011 года.
Бесплатный доступ
Иммунизация телят с применением ронколейкина и прополисного молочка оказывает благоприятное воздействие на естественную резистентность крови, способствуя увеличению Т-лимфоцитов, фагоцитарной активности лейкоцитов, иммуноглобулинов, а также на микрофлору кишечника, активизируя развитие бифидобактерий и лактобактерий.
Иммунитет, резистентность, лимфоциты, микробиоценоз, ронколейкин, прополис
Короткий адрес: https://sciup.org/14287295
IDR: 14287295
Текст научной статьи Естественная резистентность и микробиоценоз кишечника телят при применении БАВ
Нормальная микрофлора кишечника участвует не только в обмене веществ, синтезе витаминов, детоксикации, но и в формировании естественного иммунитета, реализации иммунологических защитных механизмов. Одна из функций нормофлоры – иммунотропная - заключается в стимулировании синтеза иммуноглобулинов, потенцировании механизмов резистентности, системного и местного иммунитета, стимулирует созревание системы фагоцитирующих мононуклеаров и лимфоидный аппарат кишечника. Нормофлора активизирует не только местный иммунитет кишечника, но и иммунную систему всего организма. Поэтому для повышения эффективности иммунизации наряду с улучшением кормления и содержания животных, важным моментом является повышение естественной резистентности и поддержание нормобиоценоза кишечника телят с помощью биологически активных веществ, обладающих иммуностимулирующим действием [1, 2, 3, 4, 5].
В связи с вышеизложенным целью работы явилось изучение влияния ронколейкина и прополиса на естественную резистентность и микробиоценоз кишечника телят при иммунизации.
Материалы и методы. Исследования проводили в условиях СПК имени Ленина Баймакского района Республики Башкортостан. По принципу аналогов были подобраны новорожденные телята симментальской породы и разделены на 8 групп (n=6). В опыте применяли ронколейкин подкожно и прополисное молочко внутрь. Телята первой группы служили контрольной; к животным второй группы применяли ронколейкин в дозе 1000 МЕ/кг при вакцинации и ревакцинации; к животным третьей группы - ронколейкин в первые сутки после рождения в дозе 100000МЕ/гол, однократно и 1000МЕ/кг при вакцинации; к животным четвёртой группы - ронколейкин в первые сутки после рождения в дозе 100000МЕ/гол; к животным пятой группы - прополисное молочко в дозе 15 мл на животное, один раз в день, в течение 20 дней; к животным шестой группы - прополисное молочко в течение 20 дней и ронколейкин при вакцинации в дозе 1000МЕ/кг; к телятам седьмой группы - прополисное молочко в течение 10 дней по 15 мл на животное; вк телятам осьмой группы - прополисное молочко в течение 10 дней и ронколейкин при вакцинации в дозе 1000МЕ/кг. Всех животных подвергали двукратной вакцинации против сальмонеллёза телят. Кровь для исследований брали на 10-й, 20-й, 30-й, 60-й дни после рождения.
Количество Т-лимфоцитов определяли методом спонтанного розеткообразования с эритроцитами барана (Е-РОК) по Wybran et al. (1972), фагоцитарную активность лейкоцитов в крови устанавливали путем реакции фагоцитоза с латексом (С.Г. Потапов с соавт., 1977), количество циркулирующих иммунных комплексов – по методу Ю.А. Гриневич, И.И. Алферова (1981). Количество иммуноглобулинов A, M и G в сыворотке крови телят определяли методом радиальной иммунодиффузии в геле по Манчини (1965).
Бактериологические исследования проводили по Э.П. Касаткиной с соавт. (1996). Для выделения кишечной палочки производили посев на среду Эндо. Выделение стафилококков осуществляли на агаре типа Байрд-Паркера и на солевом кровяном МПА. Рост микробов рода протея изучали на среде Ресселя с мочевиной. Для учета лактобактерий использовали MRS-2 агар, для бифидобактерий - среду Блаурокка. Популяционный уровень каждой группы микроорганизмов выражали в десятичных логарифмах (lg КОЕ/г). Статистическую обработку полученных данных проводили на ПК с использованием программ Microsoft Excel с применением критерия достоверности по Стьюденту.
Результаты исследований. Уровень Т-Е-РОК лимфоцитов в крови телят третьей, четвертой, пятой, шестой, седьмой и восьмой опытных групп на протяжении всего исследования был выше, чем в контрольной группе и достиг своего пика на 30-й день исследования, что выше фоновых значений в 1,26; 1,14; 1,20; 1,27; 1,14 и в 1,23 раза. Максимальные показатели Т-Е-РОК лимфоцитов получены у телят третьей и шестой групп, что выше контрольных значений в 1,23 и в 1,18 раза.
У телят контрольной группы фагоцитарная активность крови достоверно увеличилась на 30-й день исследования, достигнув максимума на 60-й день, и на протяжении всего исследуемого периода оставалась ниже, чем в опытных группах. При применении ронколейкина и прополисного молочка у телят фагоцитарная активность крови повышалась на протяжении всего исследуемого периода, превысив фоновые значения: на 20-й день – в 1,24; 1,31; 1,25; 1,23; 1,33; 1,16 и в 1,26 раза (на 9,2; 13,2; 10,5; 9,2; 13,2; 6,7 и на 10,7%); на 30-й день – в 1,37; 1,42; 1,36; 1,34; 1,44; 1,27 и в 1,38 раза (на 14,3; 17,7; 15,0; 14,0; 17,8; 11,2 и в 15,3%); на 60-й день - в 1,44; 1,47; 1,38; 1,40; 1,50; 1,31 и в 1,42 раза (на 17,3; 19,8; 15,8; 16,2; 20,3; 12,7 и в 17,3%), соответственно.
У животных исследуемых групп после вакцинации отмечалась тенденция к повышению уровня циркулирующих иммунных комплексов в крови различной степени выраженности, достигнув максимума на 30-й день исследования (через 10 дней после ревакцинации), на 60-й день данный показатель понижался, однако оставался выше фоновых значений.
Количество иммунных комплексов в сыворотке крови исследуемых групп увеличилось на 30-й день опыта по отношению к фоновым значениям в 1,34; 1,27; 1,33; 1,31; 1,26; 1,25; 1,32 и в 1,27 раза, на 60-й день – в 1,28; 1,17; 1,23; 1,24; 1,17; 1,20; 1,24 и в 1,19 раза, соответственно. Уровень ЦИК в контрольной группе на протяжении всего опытного периода был выше, чем в опытных группах, что свидетельствует о недостаточности клеточного звена иммунитета и нарушении системы утилизации комплексов антиген-антитело у названных животных.
Содержание иммуноглобулина А в сыворотке крови телят увеличивалось во всех группах на протяжении исследуемого периода, достигнув максимума на 60-й день опыта, что выше фоновых значений в 1,49; 1,74; 1,63; 1,54;1,56;1,63; 1,52 и в 1,53 раза. В контрольной группе содержание иммуноглобулина А было ниже, чем в опытных группах. Максимальное содержание установлено у животных шестой группы, что выше контрольных показателей в 1,44 раза.
На 20-й день опыта количество иммуноглобулина M было максимальным во всех исследуемых группах, превысив фоновые значения в 1,20; 1,51; 1,56; 1,39; 1,35; 1,55; 1,32 и в 1,50 раза. Самое высокое его содержание отмечено у телят третьей и шестой групп, что выше контрольных значений в 1,32 и в 1,34 раза.
Наибольших значений содержание иммуноглобулина G достигло на 30-й день исследования во всех группах, превысив фоновые значения в 1,30; 1,50; 1,43; 1,28; 1,35; 1,50; 1,33 и в 1,44 раза (на 3,4; 5,9; 5,7; 3,7; 4,4; 6,18; 4,0 и на 5,4г/л). Максимальные показатели IgG в сыворотке крови получены у телят третьей и шестой групп, где на 30-й день исследования их значения превысили данные животных контрольной группы в 1,28 и 1,25 раза (на 4,1 и 3,8г/л) соответственно.
Результаты бактериологического исследования показали, что уровень бифидофлоры телят первой группы в период опыта заметно не изменялся и находился на уровне от 7,67±0,21 до 8,33±0,21 lg КОЕ/г. Более выраженная активность бифидофлоры наблюдалась на 30-й день после рождения в кишечнике телят третьей, пятой, шестой, седьмой и восьмой опытных групп, превысив фоновые значения в 1,18; 1,17; 1,19; 1,13 и в 1,14 раза, что выше контроля в 1,16; 1,24; 1,28; 1,18 и в 1,16 раза соответственно. К 60-му дню наблюдалось незначительное снижение показателей во всех группах, однако содержание бифидобактерий оставалось выше фоновых значений.
Содержание лактобактерий в кишечнике телят контрольной группы составило от 6,56±0,12 до 7,13±0,21 lg КОЕ/г. Самый высокий уровень был зарегистрирован у животных пятой и шестой групп на 30-й день исследования, что выше фоновых значений в 1,16 раза (на 1,22 lg КОЕ/г) и в 1,18 раза (на 1,41 lg КОЕ/г), соответственно, и выше контроля в 1,27 раза (на 1,95 lg КОЕ/г).
В группах, с применением прополисного молочка, наряду с активизацией в кишечнике бифидобактерий и лактобактерий отмечено торможение активности условно-патогенных микроорганизмов. Уровень кишечной палочки в кишечнике телят пятой, шестой, седьмой и восьмой групп за период исследования имел достоверную тенденцию к уменьшению. Так, по сравнению с фоном количество кишечной палочки уменьшилось на 30-й день - в 1,11 раза (на 0,82 lg КОЕ/г); 1,14 раза (на 1,03 lg КОЕ/г); 1,05 раза (на 0,42 lg КОЕ/г) и в 1,07 раза (на 0,56 lg КОЕ/г); на 60-й день в 1,07 раза (на 0,51 lg КОЕ/г); 1,13 раза (на 0,93 lg КОЕ/г); 1,05 раза (на 0,40 lg КОЕ/г) и в 1,06 раза (на 0,44 lg КОЕ/г) соответственно.
Установлено, что уровень эпидермальных стафилококков в кишечнике телят пятой, шестой и восьмой групп понижался на 20-й день -в 1,14 раза, а в седьмой группе в 1,12 раза соответственно; на 30-й день - в 1,16; 1,2; 1,13 и в 1,18 раза; на 60-й день - в 1,14; 1,13; 1,09 и в 1,11 раза. Самое низкое содержание стафилококков было зарегистрировано у животных шестой группы на 30-й день исследования, что ниже контрольного значения в 1,25 раза.
В исследуемых группах при изучении содержания в кишечнике бактерий из рода протей достоверных изменений не установлено. Наблюдалось их уменьшение по отношению к фоновым значениям на 20-й день в 1,04; 1,04; 1,10; 1,09; 1,30; 1,27; 1,17 и в 1,05 раза, на 30-й день - в 1,19; 1,20; 1,24; 1,21; 1,58; 1,59; 1,31 и в 1,18 раза, на 60-й день - в 1,09; 1,09; 1,17; 1,15; 1,30; 1,27; 1,24 и в 1,05 раза соответственно.
Заключение. Таким образом, ронколейкин и прополисное молочко оказывают благоприятное влияние на естественную резистентность и микробиоценоз кишечника телят, способствуя увеличению содержания Т-лимфоцитов, уровня фагоцитарной активности лейкоцитов, иммуноглобулинов, вызывают активизацию размножения в кишечнике бифидобактерий и лактобактерий и затормаживают рост эшерихий, стафилококков и бактерий рода протей.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Землянская, Н.И. Вакцинация телят против сальмонеллёза на фоне применения иммуномодулирующих препаратов / Н.И. Землянская, З.А. Литвинова // Аграрная наука – 2008. - № 12. - С. 2527. 2. Манжурина, О.А. Совершенствование специфической профилактики желудочно-кишечных болезней у телят / О.А. Манжурина, А.А Некрылов // Вестник Воронежского государственного аграрного университета – 2009. - № 3. - С. 29-32. 3. Моисеев, А.Н. Ронколейкин: иммунопрофилактика инфекционных заболеваний телят / А.Н. Моисеев // БИО – 2010. - № 5. C. 19-20. 4. Овчинников, А.К. Профилактическая и иммуномодулирующая роль споробактерина в схемах специфической вакцинопрофилактики сальмонеллёза у телят : автореф. дис. … канд. биол. наук (16.00.03) / Овчинников Александр Константинович ; Башкирский гос. ун-т. – Уфа, 2004. – 19 с. 5. Шахов, А.Г. Применение иммуномодуляторов при вакцинации животных против сальмонеллёза / А.Г. Шахов и др. // Ветеринария– 2006. - № 6. С. 21-26.
ЕСТЕСТВЕННАЯ РЕЗИСТЕНТНОСТЬ И МИКРОБИОЦЕНОЗ КИШЕЧНИКА ТЕЛЯТ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ БАВ
Андреева А.В., Арсланова Ю.Ф.
Резюме
Иммунизация телят с применением ронколейкина и прополисного молочка оказывает благоприятное воздействие на естественную резистентность крови, способствуя увеличению Т-лимфоцитов, фагоцитарной активности лейкоцитов, иммуноглобулинов, а также на микрофлору кишечника, активизируя развитие бифидобактерий и лактобактерий.
NATURAL RESISTANCE AND INTESTINAL MICROBIOCENOSIS CALVES IN APPLYING THE BAS
Andreeva A.V., Arslanova J.F.