Федеральный научный центр овощеводства: вековая история как фундамент развития (обзор)

Федеральный научный центр овощеводства: вековая история как фундамент развития (обзор)

Автор: Пивоваров В.Ф., Солдатенко А.В., Пышная О.Н., Гуркина Л.К.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Селекция и семеноводство овощных культур в России (к 100-летию федерального научного центра овощеводства)

Статья в выпуске: 5 т.55, 2020 года.

Бесплатный доступ

Был создан Всероссийский НИИ селекции и семеноводства овощных культур, впоследствии реорганизованный в Федеральный научный центр овощеводства (ФГБНУ ФНЦО). Деятельность центра берет начало с 1920 года, когда под руководством профессора С.И. Жегалова на Грибовской опытной станции была заложена теоретическая и практическая база для развития отечественной селекции. В последующие годы значительное внимание ученых было уделено разработке и совершенствованию методов селекции, повышающих эффективность отбора, а также ускорению селекционного процесса по созданию адресных сортов и гибридов. Применительно к основным овощным культурам разработаны методы межвидовой гибридизации (Н.И. Тимин с соавт., 2013; А.Ф. Агафонов с соавт., 2018), молекулярного маркирования (Т.П. Супрунова с соавт., 2011; Е.А. Домблидес с соавт., 2015), клонального микроразмножения и получения удвоенных гаплоидов, успешно использованные в селекции (М.С. Бунин с соавт., 2004). Предложены базовые протоколы культуры микроспор in vitro для большинства капустных культур (Е.А. Домблидес с соавт., 2016), культуры неопыленных семяпочек - для тыквенных культур (Н.А. Шмыкова с соавт., 2015). Разработана технология получения удвоенных гаплоидов моркови столовой в культурах пыльников, неопыленных семяпочек и микроспор in vitro (Т.С. Вюртц с соавт., 2016). Доказана экономическая выгода использования современных биотехнологических методов in vitro при создании гибридов: сроки создания гибридов сокращаются с 12 до 6 лет, финансовые затраты снижаются в 2 раза (A. Mineikina с соавт., 2019; T. Vurtz с соавт., 2019). Показано ухудшение фитопатологической обстановки и расширение ареалов новых вредоносных возбудителей на овощных культурах. На основе иммунологической, молекулярно-генетической, морфофизиологической оценки селекционного материала овощных культур в условиях искусственного заражения, провокационного и естественного инфекционных фонов выделены источники резистентности к экономически значимым болезням: капусты - к киле, свеклы столовой - к церкоспорозу, фасоли овощной - к вирусным болезням, лука - к пероноспорозу (И.А. Енгалычева с соавт., 2019). При создании сортов с высоким содержанием биологически активных веществ и антиоксидантов широко применяются физиологические и биохимические методы. С использованием созданных сортов овощебахчевых культур разработаны технологии получения функциональных продуктов питания, включая новые виды чая лечебно-профилактического действия, безалкогольные напитки, пищевые красители, и кондитерские изделия (М.С. Гинс с соавт., 2017). Предложены рецептуры безглютеновых хлебобулочных изделий с применением интродуцированных культур якона, амаранта и дайкона. Разработаны технологии обогащения селеном овощных культур для употребления в свежем виде и в качестве сырья для функциональных продуктов (Н.А. Голубкина с соавт., 2018). ФНЦО осуществляет координацию научных исследований по селекции, производству и переработке овощных и бахчевых культур в России в рамках государственных программ по развитию отрасли и обеспечению продовольственной безопасности.

Еще

История, юбилей, научные исследования, сорта, овощные культуры, селекция, биотехнология, иммунитет, молекулярное маркирование, биохимия, функциональные продукты

Короткий адрес: https://sciup.org/142229431

IDR: 142229431   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2020.5.861rus

Список литературы Федеральный научный центр овощеводства: вековая история как фундамент развития (обзор)

  • Селекция и семеноводство овощных культур на Грибовской опытной станции за 50 лет /Под ред. З.В. Купцовой. М., 1970.
  • Emsweller S.L., Jones H.A. An interspecific hybrid in Allium L. Hitgardis, 1935, 5(9): 265-273.
  • Тимин Н.И., Пышная О.Н., Агафонов А.Ф., Мамедов М.И., Титова И.В., Кан Л.Ю., Логунова В.В., Романов В.С., Шмыкова Н.А., Тимина Л.Т., Гуркина Л.К., Джос Е.А., Супрунова Т.П., Кривошеев С.М., Енгалычева И.А. Межвидовая гибридизация овощных растений (Allium L. — лук, Daucus L. — морковь, Capsicum L. — перец) /Под ред. В.Ф. Пивоварова. М., 2013.
  • Агафонов А.Ф., Логунова В.В., Гуркина Л.К. Межвидовые гибриды лука с высокой степенью устойчивости к пероноспорозу и высоким содержанием сухого вещества. Овощи России, 2018, 4(42): 3-5 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-4-3-5).
  • Umehara M., Sueyoshi T., Shimomura K., Iwai M., Shigyo M., Hirashima K., Nakahara T. Interspecific hybrids between Allium fistulosum and Allium schoenoprasum reveal carotene-rich phenotype. Euphytica, 2006, 148(3): 295-301 (doi: 10.1007/s10681-005-9029-8).
  • Hirschegger P., Jakse J., Trontelj P., Bohanec B. Origins of Allium ampeloprasum horticultural groups and a molecular phylogeny of the section Allium (Allium: Alliaceae). Molecular Phyloge-netics and Evolution, 2010, 54(2): 488-497 (doi: 10.1016/j.ympev.2009.08.030).
  • Scholten O.E., van Kaauwen M.P.W., Shahin A., Hendrickx P.M., Keizer L.C.P., Burger K., van Heusden A.W., van der Linden C.G., Vosman B. SNP-markers in Allium species to facilitate introgression breeding in onion. BMC Plant Biology, 2016, 16(1): 187-196 (doi: 10.1186/s12870-016-0879-0).
  • Ariyanti N.A., Hoa V.Q., Khrustaleva L.I., Hirata S., Abdelrahman M., Ito S., Yamauchi N., Shigyo M. Production and characterization of alien chromosome addition lines in Allium fistu-losum carrying extra chromosomes of Allium roylei using molecular and cytogenetic analyses. Euphytica, 2015, 206(2): 343-355 (doi: 10.1007/s10681-015-1476-2).
  • Кан Л.Ю. Цитологический анализ селекционно-генетического материала рода Daucus L. Мат. Межд. науч.-практ. конф, посвященной 131-ой годовщине со дня рождения академика Н.И. Вавилова «Вавиловские чтения — 2018». М., 2018: 59-63.
  • Suzuki G., Ogaki Y., Hokimoto N., Xiao L., Kikuchi-Taura A., Harada C., Okayama R., Tsu-ru A., Onishi M., Saito N., Do G.S., Lee S.H., Ito T., Kanno A., Yamamoto M., Mukai Y. Random BAC FISH of monocot plants reveals differential distribution of repetitive DNA elements in small and large chromosome species. Plant Cell Rep., 2012, 31(4): 621-628 (doi: 10.1007/s00299-011-1178-8).
  • Коротцева И.Б. Направления работы и основные достижения лаборатории селекции и семеноводства тыквенных культур ВНИИССОК. Овощи России, 2015, 3(28): 54-57 (doi: 10.18619/2072-9146-2015-3-4-54-57).
  • Химич Г.А., Коротцева И.Б., Гинс М.С., Гинс В.К., Байков А.А. Тыквы селекции ВНИИССОК. Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования, 2016, 12: 271-273.
  • Котляр И.П., Ушаков В.А., Кайгородова И.М., Пронина Е.П. Селекция гороха овощного на технологичность. Овощи России, 2019, 2(46): 34-38 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-234-38).
  • Пивоваров В.Ф., Пронина Е.П. Основные направления и результаты селекции и семеноводства овощных бобовых культур во ВНИИССОК. Овощи России, 2013, 1(18): 4-11 (doi: 10.18619/2072-9146-2013-1-4-11).
  • Пронина Е.П., Ушаков В.А., Котляр И.П., Солдатенко А.В. Русские белые — новый урожайный перспективный сорт бобов овощных (Vicia faba L.). Овощи России, 2019, 6: 50-52 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-50-52).
  • Шиманский Л.П., Копылович В.Л., Сикорский А.В., Сирота С.М., Агафонов А.Ф., Пронина Е.П. Основные итоги Российско-Белорусского сотрудничества по селекции овощных бобовых и луковых культур. Овощи России, 2014, 4(25): 23-27 (doi: 10.18619/20729146-2014-4-23-27).
  • Логунова В.В., Кривенков Л.В., Гуркина Л.К., Гращенкова Н.Н. Селекция лука репчатого на гетерозис. Известия ФНЦО, 2019, 2: 45-49 (doi: 10.18619/2658-4832-2019-2-45-49).
  • Бондарева Л.Л. Конвейер гибридов капусты белокочанной селекции ВНИИССОК на овощном рынке России. Овощи России, 2017, 1(34): 22-23 (doi: 10.18619/2072-9146-20171-22-23).
  • Федорова М.И., Степанов В.А. Корнеплодные овощные растения, направления селекции, результаты. Овощи России, 2017, 4(37): 16-22 (doi: 10.18619/2072-9146-2017-4-16-22).
  • Гинс М.С., Гинс В.К. Физиолого-биохимические основы интродукции и селекции овощных культур. М., 2011.
  • Hasler C.M., Bloch A.S., Thomson C.A., Enrione E., Manning C. Position of the American dietetic association: functional foods. Journal of the American Dietetic Association, 2004, 104(5): 814-826 (doi: 10.1016/j.jada.2004.03.015).
  • Martirosyan D.M. Functional foods and chronic diseases: science and practice (volume 8). Oxford, 2011.
  • Lewandowska U., Szewczyk K., Hrabec E., Janecka A., Gorlach S. Overview of metabolism and bioavailability enhancement of polyphenols. J. Agric. Food Chem., 2013, 61(50): 1218312199 (doi: 10.1021/jf404439b).
  • European Commission. Functional foods. Brussels, 2010 (doi: 10.2777/82512).
  • Mudry J. Functional foods, marketing of. In: Encyclopedia of food and agricultural ethics
  • /P.B. Thompson, D.M. Kaplan (eds.). Springer, Dordrecht, 2014 (doi: 10.1007/978-94-007-0929-4_417).
  • Woo K.S., Hwang I.G., Kim T.M., Kim D.J., Hong J.T., Jeon H.S. Changes in the antioxidant activity of onion (Allium cepa) extracts with heat treatment. Food Sci. Biotechnol., 2007, 16(5): 828-831.
  • Ficco D.B.M., de Simone V., Colecchia S.A., Pecorella I., Platani C., Nigro F., Finocchia-ro F., Papa R., de Vita P. Genetic variability in anthocyanin composition and nutritional properties of blue, purple, and red bread (Triticum aestivum L.) and durum (Triticum turgidum L. ssp. turgidum convar. durum) wheats. J. Agric. Food Chem., 2014, 62(34): 8686-8695 (doi: 10.1021/jf5003683).
  • Zhang Z., Lei M., Liu R., Gao Y., Xu M., Zhang M. Evaluation of alliin, saccharide contents and antioxidant activities of black garlic during thermal processing. Journal of Food Biochemistry, 2015, 39(1): 39-47 (doi: 10.1111/jfbc.12102).
  • Adzhieva V.F., Babak O.G., Shoeva O.Y., Kilchevsky A.V., Khlestkina E.K. Molecular genetic mechanisms of the development of fruit and seed coloration in plants. Russian Journal of Genetics: Applied Research, 2016, 6(5): 537-552 (doi: 10.1134/S2079059716050026).
  • Гинс М.С., Гинс В.К., Кононков П.Ф. Антиоксидантный метаболом овощных культур. Вестник Российской сельскохозяйственной науки, 2016, 2: 55-58.
  • Гинс М.С., Романова Е.В., Плющиков В.Г., Гинс В.К., Пивоваров В.Ф. Функциональные продукты питания из растительного сырья. М., 2017.
  • Крячко Т.И., Малкина В.Д., Мартиросян В.В., Смирнова С.А., Голубкина Н.А., Бондарева Л.Л. Исследование химического состава порошка из капусты брокколи как сырья для производства функциональных продуктов питания. Известия высших учебных заведений. Пищевая технология, 2019, 1(367): 22-26.
  • Малкина В.Д., Крячко Т.И., Мартиросян В.В., Голубкина Н.А., Середин Т.М., Павлов Л.В. Применение порошка лука-порея — аккумулятора селена для обогащения хлебобулочных изделий. Кондитерское и хлебопекарное производство, 2019, 3-4(180): 31-35.
  • Голубкина Н.А., Середин Т.М., Кошеваров А.А., Шило Л.М., Баранова Е.В., Павлов Л.В. Порошок чеснока, обогащенного селеном. Микроэлементы в медицине, 2018, 19(1): 43-50 (doi: 10.19112/2413-6174-2018-19-1-43-50).
  • Pethybridge S.J., Kikker J.R., Hanson L.E., Nelson S.C. Challenges and prospects for building resilient disease management strategies and tactics for the New York table beet industry. Agronomy, 2018, 8(7): 112 (doi: 10.3390/agronomy8070112).
  • West J.S., Townsend J.A., Stevens M., Fitt B.D.L. Comparative biology of different plant pathogens to estimate effects of climate change on crop diseases in Europe. European Journal of Plant Pathology, 2012, 133(1): 315-331 (doi: 10.1007/s10658-011-9932-x).
  • Санин С.С. Фитосанитарные вызовы современного интенсивного растениеводства. В сб.: Плодоводство и ягодоводство России. М., 2015, вып. 43: 178-183.
  • Velasquez A.C., Castroverde C.D.M., He S.Y. Plant—pathogen warfare under changing climate conditions. Current Biology, 2018, 28(10): R619-R634 (doi: 10.1016/j.cub.2018.03.054).
  • Рябушкина Н.А. Биотесты для скрининга аллелопатического потенциала диких и культурных видов растений. Биотехнология. Теория и практика, 2005, 5: 5-15.
  • Chen J., Shang Y.-T., Wang W.-H. Chen X.-Y., He E.-M., Zheng H.-L., Shangguan Z. Hydrogen sulfide-mediated polyamines and sugar changes are involved in hydrogen sulfide-induced drought tolerance in Spinacia oleracea seedlings. Frontiers in Plant Science, 2016, 7: 1173 (doi: 10.3389/fpls.2016.01173).
  • Тимина Л.Т., Енгалычева И.А. Патогенная микробиота на овощных культурах в условиях Центрального региона РФ. Селекция и семеноводство овощных культур, 2014, 45: 530-539.
  • Агафонов А.Ф., Тимина Л.Т., Шестакова К.С. Вниманию луководов — черная плесень лука. Овощи России, 2012, 3(16): 48-51.
  • Nayuolu M.V. Plant viruses. India, 2007.
  • Makkouk K.M., Kumari S.G. Epidemiology and integrated management of persistently transmitted aphid-borne viruses of legume and cereal crops in West Asia and North Africa. Virus Research, 2009, 141(2): 209-218 (doi: 10.1016/j.virusres.2008.12.007).
  • Hampton R.O., Jensen A., Hagel G.T. Attributes of bean yellow mosaic potyvirus transmission from clover to snap beans by four species of aphids (Homoptera: Aphididae). Journal of Economic Entomology, 2005, 98(6): 1816-1823 (doi: 10.1603/0022-0493-98.6.1816).
  • Енгалычева И.А., Павлова О.В. Межвидовая гибридизация салата (Lactuca sativa L.) в селекции на устойчивость к Tomato aspermy cucumovirus. Вестник защиты растений, 2016, 3(89): 68-70.
  • Енгалычева И.А., Козарь Е.Г. Основные направления исследований вирусных болезней овощных культур в ФГБНУ ФНЦО (мониторинг, иммунитет, источники устойчивости). Аграрная наука, 2019, S3: 79-85 (doi: 10.32634/0869-8155-2019-326-3-79-85).
  • Almasi A., Csillery G., Csomor Z., Nemes K., Palkovics L., Salanki K., Tobias I. Phylogenetic analysis of Tomato spotted wilt virus (TSWV) NSs protein demonstrates the isolated emergence of resistance-breaking strains in pepper. Virus Genes, 2015, 50(1): 71-78 (doi: 10.1007/s11262-014-1131-3).
  • Scholthof K.B.G., Adkins S., Czosnek H., Palukaitis P., Jacquot E., Hohn T., Hohn B., Saunders K., Candresse T., Ahlquist P., Hemenway C., Foster G.D. Top 10 plant viruses in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology, 2011, 12(9): 938-954 (doi: 10.1111/j.1364-3703.2011.00752.x).
  • Yu L., Zhang C., Shang H., Wang X., Wei M., Yang F., Shi Q. Exogenous hydrogen sulfide enhanced antioxidant capacity, amylase activities and salt tolerance of cucumber hypocotyls and radicles. Journal of Integrative Agriculture, 2013, 12(3): 445-456 (doi: 10.1016/S2095-3119(13)60245-2).
  • Janicka M., Reda M., Czyzewska K., Kabala K. Involvement of signalling molecules NO, H2O2 and H2S in modification of plasma membrane proton pump in cucumber roots subjected to salt or low temperature stress. Functional Plant Biology, 2018, 45(4): 428-439 (doi: 10.1071/FP17095).
  • Ушаков А.А., Козарь Е.Г., Енгалычева И.А. Влияние Xanthomonas campestris pv. campestris на рост этиолированных и фотосинтезирующих проростков Brassica oleracea. Овощи России, 2019, 6: 133-140 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-133-140).
  • Ушаков А.А., Бондарева Л.Л., Енгалычева И.А. Эффективность иммунологической оценки линий капусты белокочанной к Plasmodiophora brassicae Wor. на искусственном инфекционном фоне. Овощи России, 2018, 6(44): 97-100 (doi: 10.18619/2072-9146-20186-97-100).
  • Козарь Е.Г., Ветрова С.А., Енгалычева И.А., Федорова М.И. Оценка устойчивости селекционного материала свеклы столовой к церкоспорозу на фоне эпифитотии в условиях защищенного грунта Московской области. Овощи России, 2019, 6: 124-132 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-124-132).
  • Пивоваров В.Ф., Добруцкая Е.Г. Экологические основы селекции и семеноводства овощных культур. М., 2000.
  • Поляков А.В., Азопкова М.А., Лебедева Н.Н., Муравьёва И.В. In vitro регенерация растений чеснока озимого (Allium sativum L.) из воздушных луковичек. Вестник Московского государственного областного университета. Серия: естественные науки, 2018, 4: 115-124 (doi: 10.18384/2310-7189-2018-4-115-124).
  • Бунин М.С., Шмыкова Н.А. Использование биотехнологических методов для получения исходного селекционного материала капусты. М., 2004.
  • Верба В.М., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Шмыкова Н.А. Клональное микроразмножение баклажана путем органогенеза. Вестник РАСХН, 2010, 6: 57-59.
  • Верба В.М., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Супрунова Т.П., Шмыкова Н.А. Получение межвидовых гибридов баклажана методом эмбриокультуры. Сельскохозяйственная биология, 2010, 45(5): 66-71.
  • Blakeslee A.F., Belling J., Farnham M.E., Bergner A.D. A haploid mutant in the jimson weed, «Datura stramonium». Science, 1922, 55(1433): 646-647 (doi: 10.1126/science.55.1433.646).
  • Maluszynski M., Kasha K.J., Szarejko I. Published doubled haploid protocols in plant species. In: Doubled haploid production in crop plants /M. Maluszynski, K.J. Kasha, B.P. Forster, I. Szarejko (eds.). Springer, Dordrecht, 2003: 309-335 (doi: 10.1007/978-94-017-1293-4_46).
  • Forster B.P., Heberle-Bors E., Kasha K.J., Touraev A. The resurgence of haploids in higher plants. Trends in Plant Science, 2007, 12(8): 368-375 (doi: 10.1016/j.tplants.2007.06.007).
  • Advances in haploid production in higher plants /A. Touraev, B.P. Forster, S.M. Jain (eds.). Netherlands, 2009 (doi: 10.1007/978-1-4020-8854-4).
  • Dunwell J.M. Haploids in flowering plants: origins and exploitation. Plant Biotechnology Journal, 2010, 8(4): 377-424 (doi: 10.1111/j.1467-7652.2009.00498.x).
  • Germanà M.A. Gametic embryogenesis and haploid technology as valuable support to plant breeding. Plant Cell Reports, 2011, 30(5): 839-857 (doi: 10.1007/s00299-011-1061-7).
  • Тюкавин Г.Б. Основы биотехнологии моркови. М., 2007.
  • Lichter R. Induction of haploid plants from isolated pollen of Brassica napus. Zeitschrift fur Pflanzenphysiologie, 1982, 105(5): 427-434 (doi: 10.1016/s0044-328X(82)80040-8).
  • Pechan P.M., Keller W.A. Identification of potentially embryogenic microspores in Brassica napus. Physiologia Plantarum, 2006, 74(2): 377-384 (doi: 10.1111/j.1399-3054.1988.tb00646.x).
  • Seo M., Sohn S., Park B., Ko H., Jin M. Efficiency of microspore embryogenesis in Brassica rapa using different genotypes and culture conditions. Journal of Plant Biotechnology, 2014, 41(3): 116-122 (doi: 10.5010/JPB.2014.41.3.116).
  • Reeta B., Dey S.S., Parkash C., Sharma K., Sood S., Kumar R. Modification of important factors for efficient microspore embryogenesis and doubled haploid production in field grown white cabbage (Brassica oleracea var. capitata L.) genotypes in India. Scientia Horticulturae, 2018, 233: 178-187 (doi: 10.1016/j.scienta.2018.01.017).
  • Ferrie A.M.R. Microspore culture of Brassica species. In: Doubled haploid production in crop plants /M. Maluszynski, K.J. Kasha, B.P. Forster, I. Szarejko (eds.). Springer, Dordrecht, 2003: 205-215 (doi: 10.1007/978-94-017-1293-4_31).
  • Smykalova I., Vetrovcova M., Klima M., Machackova M., Griga M. Efficiency of microspore culture for doubled haploid production in the breeding project «Czech Winter Rape». Czech Journal of Genetics and Plant Breeding, 2006, 42(2): 58-71 (doi: 10.17221/3655-CJGPB).
  • Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Заячковская Т.В., Минейкина А.И., Козарь Е.В., Ахраменко В.А., Шевченко Л.Л., Кан Л.Ю., Бондарева Л.Л., Домблидес А.С. Технология получения удвоенных гаплоидов в культуре микроспор семейства капустные: методические рекомендации. М., 2016.
  • Пивоваров В.Ф., Бондарева Л.Л., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Минейкина А.И. Создание гибридов капусты белокочанной (Brassica oleracea L. convar. capitata var. alba DC) нового поколения с использованием линий удвоенных гаплоидов. Сельскохозяйственная биология, 2017, 1(52): 143-151 (doi: 10.15389/agrobiology.2017.1.143rus).
  • Коротцева К.С., Домблидес Е.А., Домблидес А.С. Совершенствование технологии получения удвоенных гаплоидов капусты белокочанной в культуре микроспор in vitro. Мат. конф. «Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии». М., 2019, 17-19.
  • Домблидес Е.А., Козарь Е.В., Шумилина Д.В., Заячковская Т.В., Ахраменко В.А., Солда-тенко А.В. Эмбриогенез в культуре микроспор брокколи. Овощи России, 2018, 1(39): 3-7 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-1-3-7).
  • Заблоцкая Е.А., Бондарева Л.Л., Сирота С.М. Корреляционные связи между некоторыми хозяйственно ценными признаками у капусты брокколи. Овощи России, 2018, 1(39): 8-11 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-1-8-11).
  • Shumilina D., Kornyukhin D., Domblides E., Soldatenko A., Artemyeva A. Impact of genotype and culture conditions on microspore embryogenesis and plant regeneration in Brassica rapa L. ssp. rapa. Plants, 2020, 9(2): 278 (doi: 10.3390/plants9020278).
  • Козарь Е.В., Коротцева К.С., Романова О.В., Чичварина О.А., Кан Л.Ю., Ахраменко В.А., Домблидес Е.А. Получение удвоенных гаплоидов Brassica purpuraria. Овощи России, 2019, (6): 3-7 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-10-18).
  • Домблидес Е.А., Чичварина О.А., Минейкина А.И., Курбаков Е.Л., Харченко В.А., Домблидес А.С., Солдатенко А.В. Ускоренное создание гомозиготных линий листовых культур семейства Brassicaceae Burnett в культуре микроспор in vitro. Овощи России, 2019, 4: 8-12 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-4-8-12).
  • Козарь Е.В., Домблидес Е.А., Солдатенко А.В. Факторы, влияющие на получение DH-растений в культуре микроспор in vitro редиса европейского. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2020, 24(1): 31-39 (doi: 10.18699/VJ20.592).
  • Matsubara S., Dohya N., Murakami K. Callus formation and regeneration of adventitious embryos from carrot, fennel and mitsuba microspores by anther and isolated microspore cultures. Acta Horticulturae, 1995, 392: 129-138 (doi: 10.17660/ActaHortic.1995.392.15).
  • Kiszczak W., Kowalska U., Kapuscinska A., Burian M., Gorecka K. Comparison of methods for obtaining doubled haploids of carrot. Acta Societatis Botanicorum Poloniae, 2017, 86(2): 3547 (doi: 10.5586/asbp.3547).
  • Li J.-R., Zhuang F.-Y., Ou C.-G., Hu H., Zhao Z.-W., Mao J.-H. Microspore embryogenesis and production of haploid and doubled haploid plants in carrot (Daucus carota L.). Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2013, 112: 275-287 (doi: 10.1007/s11240-012-0235-5).
  • Вюртц Т.С., Шмыкова Н.А., Федорова М.И., Заячковская Т.В., Домблидес Е.А. Создание удвоенных гаплоидных линий моркови столовой (Daucus carota L.) с использованием биотехнологических методов. Вестник защиты растений, 2016, 3(89): 43-44.
  • Mineikina A., Bondareva L., Domblides E. The economic benefits of the production of double haploid for selection of white cabbage. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 2019, 395: 012081 (doi: 10.1088/1755-1315/395/1/012081).
  • Vurtz T., Domblides E., Soldatenko A. Economic efficiency of obtaining carrot lines using classical and biotechnological methods. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 2019, 395: 012084 (doi: 10.1088/1755-1315/395/1/012084).
  • Шмыкова Н.А., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Домблидес Е.А. Перспективы получения удвоенных гаплоидов растений семейства Cucurbitaceae L. Овощи России, 2015, 3(28): 2831 (doi: 10.18619/2072-9146-2015-3-4-28-31).
  • Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Заячковская Т.В., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Кан Л.Ю., Домблидес А.С. Получение удвоенных гаплоидов в культуре неопыленных семяпочек кабачка (Cucurbita pepo L.). В сб.: Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира (физиолого-биохимические, эмбриологические, генетические и правовые аспекты). Симферополь, 2016: 28-29.
  • Домблидес ЕА., Шмыкова Н.А., Белов С.Н., Коротцева И.Б., Солдатенко А.В. Получение DH-растений огурца (Cucumis sativus l.) в культуре неопыленных семяпочек in vitro. Овощи России, 2019, 6: 3-9 (doi: 10.18619/2072-9146-2019-6-3-9).
  • Chen J., Vanek E., Pieper M. Method for producing haploid, dihaploid and doubled haploid plants by isolated microspore culture. A01H 1/00 (2006.01). Application filed by Vilmorin and Cie (FR). № PCT/EP20 16/067825. Priority data 26.07.2016. Publication 02.02.2017 WO 2017/017108A1.
  • Lofti M., Alan A.R., Henning M.J., Jahn M.M., Earle E.D. Production of haploid and double haploid plants of melon (Cucumis melo L.) for use in breeding for multiple virus resistance. Plant Cell Rep., 2003, 21(11): 1121-1128 (doi: 10.1007/s00299-003-0636-3).
  • Baktemur G., Ta§krn H., Buyukalaca S. Comparison of different methods for separation of haploid embryo induced through irradiated pollen and their economic analysis in melon (Cucumis melo var. inodorus). The Scientific World Journal, 2013, 10: 529502 (doi: 10.1155/2013/529502).
  • Gal^zka J., Niemirowicz-Szczytt K. Review of research on haploid production in cucumber and other cucurbits. Folia Horticulturae, 2013, 25(1): 67-78 (doi: 10.2478/fhort-2013-0008).
  • Galazka J., Slomnicka R., Goral-Radziszewska K., Niemirowicz-Szczytt K. From pollination to DH-lines — verification and optimization of protocol for production of double haploids in cucumber. Acta Scientiarum Polonorum Hortorum Cultus, 2015, 14(3): 81-92.
  • Домблидес Е.А., Шмыкова Н.А., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Домблидес А.С. Образование аномальных цветков в потомстве удвоенных гаплоидов кабачка (Cucurbita pepo L.). Овощи России, 2018, 5(43): 13-17 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-5-13-17).
  • Домблидес Е.А., Кан Л.Ю., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Домблидес А.С. Цитологическая оценка удвоенных гаплоидов кабачка (Cucurbita pepo L.). Овощи России, 2018, 6(44): 3-7 (doi: 10.18619/2072-9146-2018-6-3-7).
  • Kochieva E.Z., Suprunova T.P. Identification of inter- and intraspecific polymorphism in tomato. Genetika, 1999, 35(10): 1386-1389.
  • Домблидес Е.А., Домблидес А.С., Заячковская Т.В., Бондарева Л.Л. Определение типа цитоплазмы у растений семейства капустные (Brassicaceae Burnett) с помощью ДНК маркеров. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2015, 19(5): 529-537 (doi: 10.18699/VJ15.069).
  • Пышная О.Н., Мамедов М.И., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Супрунова Т.П., Джос Е.А., Матюкина А.А. Использование классических и современных методов в селекции перца Capsicum L. Труды Кубанского государственного аграрного университета, 2015, 55: 213-216.
  • Супрунова Т.П., Логунов А.Н., Логунова В.В., Агафонов А.Ф. Определение типа цито-плазматической мужской стерильности лука репчатого (Allium cepa L.) селекции ВНИИССОК с помощью молекулярных маркеров. Овощи России, 2011, 4(13): 20-21.
  • Домблидес А.С. Поиск генисточников признака стерильности у образцов лука репчатого с использованием ДНК маркеров. Овощи России, 2019, 5: 15-19 (doi: 10.18619/2072-91462019-5-15-19).
  • Химич Г.А. Новые сорта тыквенных культур ВНИИССОК. Овощи России, 2016, 1(30): 48-49 (doi: 10.18619/2072-9146-2016-1-48-49).
  • Пивоваров В.Ф., Шмыкова Н.А., Бондарева Л.Л., Заблоцкая Е.А. Полиморфизм удвоенных гаплоидных линий капусты брокколи, полученных в культуре микроспор in vitro. Вестник Российской сельскохозяйственной науки, 2015, 5: 33-35.
Еще
Статья обзорная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp