Филогенетическое разнообразие бактерий, выделенных из ризосферы мари красной (Chenopodium rubrum L.), произрастающей в условиях засоления на территории солеразработок (г. Соликамск, Пермский край)

Автор: Корсакова Е.С., Пьянкова А.А., Назаров А.В.

Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio

Рубрика: Микробиология

Статья в выпуске: 3, 2013 года.

Бесплатный доступ

В ризосфере мари красной (Chenopodium rubrum L.), произрастающей в районе промышлен­ных солеразработок (г. Соликамск, Пермский край), выявлено большое разнообразие бакте­рий различных филогенетических групп. Значительный массив прокариот представлен гра-мотрицательными умеренно галофильными бактериями класса Gammaproteobacteria, а также грамположительными галотолерантными бактериями класса Actinobacteria. Кроме того, в об­разцах ризосферы обнаружены бактерии класса Bacilli филума Firmicutes и класса Flavobacteriia филума Bacteroidetes.

Засоленные почвы, ризосфера, бактерии, филогенетическое разнообразие, ген 16s ррнк

Короткий адрес: https://sciup.org/147204648

IDR: 147204648

Текст научной статьи Филогенетическое разнообразие бактерий, выделенных из ризосферы мари красной (Chenopodium rubrum L.), произрастающей в условиях засоления на территории солеразработок (г. Соликамск, Пермский край)

Засоление почвы является очень важным экологическим фактором из-за его сильного воздействия на продуктивность растений, достаточно широкой распространенности и тенденции к расширению площади почв с увеличенной минерализацией, в том числе и вследствие антропогенного воздействия. Однако, несмотря на рост количества работ по изучению биоразнообразия бактерий засоленных почв и увеличивающийся интерес к галофиль-ным микроорганизмам в связи с их потенциальной важностью для биотехнологии, микробные сообщества данных почв остаются недостаточно изученными. Особенно слабо исследовано биоразнообразие бактерий ризосферы растений, произрастающих на засоленных почвах.

На территории Пермского края засоление почв носит техногенный характер и обусловлено, прежде всего, добычей солей на Верхнекамском месторождении. При промышленной добыче и переработке солей этого месторождения на поверхности складируются отходы производства в шламохрани-лищах и галитовых отвалах, содержание хлорида натрия в которых составляет более 90% [Бабошко, Бачурин, 2009]. Растворение материала отвалов и вынос солей приводят к появлению зон засоления, а в понижениях, прилегающих к подножью, образуются озера с соленой водой (рассолосборники), в которых происходит осаждение солей [Шубин, 2005]. Таким образом, на территории солеразработок формируются местообитания для бактерий, устойчивых к высокой минерализации среды.

Целью настоящей работы было изучение бактериального сообщества ризосферы растений вида марь красная ( Chenopodium rubrum L.), которые преобладали в травяном покрове на наиболее засоленных участках территории района промышленных разработок Верхнекамского месторождения солей в (г. Соликамск, Пермский край).

Материалы и методы исследования

В качестве материалов исследования были отобраны почвенные образцы с трех участков, расположенных в районе разработок Верхнекамского месторождения калийно-магниевых солей Пермского края в окрестностях г. Соликамска, Россия. Участки

расположены в непосредственной близости от двух солеотвалов ОАО «Уралкалий» (г. Соликамск) и имеют засоленную почву. Образцы ризосферы растений мари красной ( Chenopodium rubrum L.) отбирались с использованием стандартных методов [Методы почвенной …, 1991].

Определение содержания катионов Na+ осуществляли из водной вытяжки, приготовленной согласно ГОСТу 26423-85, с последующей их детекцией на атомно-абсорбционном спектрофотометре АА-6300 (“Shimadzu”, Япония), сотрудниками группы физико-химических исследований ИЭГМ УрО РАН.

В работе использовали богатую среду Раймон-да/БСР (г/л): NH4NO3 – 2, MgSO4 x 7H2O – 0.2, KH2PO4 – 2, Na2HPO4 – 3, Na2CO3 – 0.1, CaCl2 x 6H2O – 0.01 с добавлением 5 г/л триптона и 2.5 г/л дрожжевого экстракта [Raymond, 1964]. NaCl вносили в среду до конечной концентрации 50 г/л. Для получения агаризованных сред вносили агар («Sigma», США) 15 г/л. Микробиологический анализ ризосферы растений проводили общепринятыми методами посева почвенной суспензии на ага-ризованную среду с последующим подсчетом колоний микроорганизмов (колонии образующих единиц, КОЕ) и выделением бактерий из единичных колоний для идентификации [Методы почвенной …, 1991].

Для выделения галофильных штаммов бактерий был использован метод накопительного культивирования на БСР с содержанием NaCl 150 г/л. Образцы ризосферы весом 1 г были помещены в 250 мл колбы с 100 мл БСР с содержанием NaCl 150 г/л. Инкубацию проводили в течение 2 недель на термокачалке (100 об/мин.) при температуре

282^8. Из накопительных культур путем высева на агаризованную БСР (концентрация соли составляла 150 г/л) выделяли чистые культуры микроорганизмов.

Амплификацию фрагмента гена 16S рРНК проводили с использованием бактериальных праймеров прямого 27F и обратного 1492R согласно описанной методике [Молекулярная генетика, 2007].

Филогенетический анализ полученных изолятов был основан на определении нуклеотидных последовательностей гена 16S рРНК с применением набора реактивов Big Dye Terminator Cycle Sequencing Kit на автоматическом секвенаторе Genetic Analyser 3500XL («Applied Biosystems», США) в Пермском государственном национальном исследовательском университете. Полученные нуклеотидные последовательности длиной около 800 пн были проанализированы с использованием программ CLUSTAL W, Sequence Scanner v1.0. Поиск гомологичных последовательностей проводили по базам данных GenBank и EzTaxon .

Результаты и обсуждение

Методом прямого высева на агаризованную БСР с содержанием NaCl 50 г/л из образцов ризосферы, отобранных из района солеразработок ОАО «Уралкалий» (г. Соликамск), было выделено 14 морфотипов бактерий, отличающихся морфологическими признаками (табл. 1). Отмечено негативное влияние засоления почвы на численность бактерий в ризосфере. Так, общая численность бактерий в ризосферной зоне растений, произрастающих на почве с содержанием Na+ – 5.18 и 1.24 мг-экв/100 г общая численность бактерий была меньше, чем на почве с концентрацией Na+ – 0.56 мг-экв/100 г в 5,2 и 18,0 раз, соответственно.

Таблица 1

Штаммы бактерий, выделенные из ризосферы мари красной, произрастающей на территории солеразработок ОАО «Уралкалий» (г. Соликамск)

S к 5

О g

сЗ &

ко

5 s.

1

Е

Штаммы, выделенные на БСР, 50 г/л NaCl

Описание морфологии колоний (морфотип)

---■-----

II и

1

10 м от со-леот-вала СКПРУ-2

5

0.56

M105-1

Бледно-желтая, круглая, гладкая, блестящая, профиль выпуклый, край ровный, структура однородная, 1 мм

2 ^ 10 6

M106-5

Красно-оранжевая, круглая, гладкая, блестящая, профиль плоский, край ровный, структура однородная, 3 мм

1 ^ 10 7

M107-2

Желтая, круглая, гладкая, блестящая, профиль выпуклый, край ровный, структура однородная, 1 мм

1 ^ 10 7

M107-4

Темно-белая, круглая, складчатая, матовая, профиль плоский, край ровный, структура мелкозернистая, 8 мм

5 ^ 10 7

2

5 м от со-леот-вала СКПРУ-2

5.18

M115-1

Бело-розовая, круглая, гладкая, блестящая, профиль каплевидный, край ровный, структура однородная, 1 мм

2 ^ 10 5

M115-3N-a

Бежевая, круглая, гладкая, блестящая, профиль выпуклый, край ровный, структура однородная, 5 мм

1.5 1 10 6

M116-2

Желтая, круглая, гладкая, блестящая, профиль плоский, край ровный, структура однородная, 1,5 мм

4 1 10 6

M116-3

Бежевая, круглая, гладкая, блестящая, профиль плоский, край ровный, структура однородная, 6 мм

4 1 10 6

Окончание табл. 1

s и

5

О ч с £

>и И и

И

сЗ & О ю

о

о

со

И

И «и

ИИ

И’Д

ИИ

ы

Штаммы, выделенные на БСР, 50 г/л NaCl

Описание морфологии колоний (морфотип)

to g

и о

S

M116-4

Светло-розовая, круглая, гладкая, блестящая, профиль плоский, край ровный, структура однородная, 3 мм

1 ^ 10 6

M116-7

Светло-оранжевая, круглая, гладкая, блестящая, профиль плоский, край ровный, структура однородная, 1 мм

2 ^ 10 6

M116-8

Светло-розовая, круглая, гладкая, блестящая, профиль плоский, край ровный, структура однородная, 2,5 мм

132 10 6

3

10 м от со-леот-вала СКПРУ-1

1.24

M136-2

Темно-белая, круглая, гладкая, матовая, профиль выпуклый, край зубчатый, структура однородная, 2 мм

1 ^ 10 6

M136-3

Светло-желтая, круглая, гладкая, матовая, профиль выпуклый, край зубчатый, структура однородная, 1,5 мм

1 3 10 6

M136-7

Темно-желтая, круглая, гладкая, блестящая, профиль выпуклый, край ровный, структура однородная, 1 мм

2 3 10 6

Методом накопительного культивирования на БСР с содержанием соли 150 г/л был изолирован единственный штамм MH13R2-2 из образца ризосферы (Na+1.24 мг-экв/100 г), отобранного на расстоянии 10 м от солеотвала СКПРУ-1. Данный штамм был представлен бесцветными блестящими прозрачными колониями округлой формы, размером 1–2 мм, с гладкой поверхностью, плоским профилем, ровным краем и однородной структурой.

У изолированных штаммов были определены нуклеотидные последовательности фрагмента гена 16S рРНК (табл. 2). Установлено, что исследуемые бактерии принадлежат классам Gammaproteo bacteria филума Proteobacteria (рода Salinicola,

Kushneria, Halomonas, Marinobacter, Idiomarina) , Actinobacteria филума Actinobacteria (рода Isoptericola, Microbacterium, Salinibacterium ), Bacilli филума Firmicutes (рода Bacillus, Planomicrobium) и Flavobacteriia филума Bacteroidetes (род Salegentibacter . При этом подавляющее большинство типовых штаммов бактерий, к которым наиболее близки по нуклеотидным последовательностям фрагмента гена 16S рРНК выделенные штаммы, являются галотолерантными или гало-фильными бактериями. Исключение составляет Microbacterium phyllosphaerae DSM 13468T, обитающий на поверхности побегов злаковых растений [Behrendt, Ulrich, Schumann, 2001].

Таблица 2

Анализ нуклеотидных последовательностей генов 16S рРНК изолированных бактерий

Штамм

Идентификация на основе анализа гена 16S рРНК

Типовой штамм

№ GenBank

Сходство, %

Количество нуклеотидов

M105-1

Salinicola salarius M27T

AM229316

99.3

1346

M106-5

Kushneria marisflavi SW32T

AF251143

98.6

1386

M107-2

Microbacterium phyllosphaerae DSM 13468T

AJ277840

100

764

M107-4

Bacillus safensis FO-036bT

AF234854

99.9

834

M115-1

Bacillus hwajinpoensis SW-72T

AF541966

99.7

782

M115-3Na

Halomonas titanicae BH1T

FN433898

98.9

1405

M116-2

Microbacterium terricola KV-448T

AB234025

98.8

1294

M116-3

Halomonas taeanensis BH539T

AY671975

99.3

1377

M116-4

Planomicrobium flavidum ISL-41T

FJ265708

99.1

736

M116-7

Salegentibacter salarius ISL-6T

EF486353

99.1

789

M116-8

Marinobacter maritimus CK47T

AJ704395

97.8

1343

M136-2

Isoptericola chiayiensis 06182M-1T

FJ469988

99.1

1291

M136-3

Isoptericola halotolerans YIM 70177T

AY789835

99.2

779

M136-7

Salinibacterium amurskyense KMM 3673T

AF539697

99.8

863

MH13R2-2

Idiomarina loihiensis L2TRT

AF288370

100

833

Заключение

В ризосфере растений, произрастающих на площадке № 1, доля выделенных бактерий, относящихся к классу Gammaproteobacteria, составляла 16.7% общей численности, на площадках 2 и 3 – 47.4 и 50.0%, соответственно. Для выделенных бактерий, принадлежащих к классу Actinobacteria, данный показатель составлял 13.9, 29.2 и 50.0%, соответственно. Бактерии класса Bacilli были выделены из ризосферы растений с площадок № 1 и 2, доля данных бактерий составляла 69.4 и 8.8%, соответственно. Из ризосферы растений участка № 2 были выделены бактерии, относящиеся к классу Flavobacteriia, доля от общей численности которых была 14.6%.

Известно, что в ризосфере растений гумидного климата доминируют бактерии рода Pseudomonas (класс Gammaproteobacteria) , кроме того, для ризосферной зоны типичны бактерии родов Agrobacterium (класс      Alphaproteobacteria ) ,

Xanthomonas (класс Gammaproteobacteria) и Flavobacterium (класс Flavobacteriia) [Звягинцев, Добровольская, Лысак, 1993], при этом доля бацилл и актиномицетов невысока и составляет обычно около 1% [Юрчак, Утеуш, Омельченко, 1977; Калакуцкий, Шарая, 1990]. Высокая численность бактерий, принадлежащих к классам Actinobacteria и Bacilli, отмечена для ризосферы растений, произрастающих в пустынях, при этом доля данных бактерий возрастет в течение сухих периодов [Marasco et al., 2012; Kavamura et al., 2013].

Таким образом, установлено, что техногенное засоление почвы в окрестностях г. Соликамска оказывает сильное влияние на микробное сообщество ризосферной зоны растений вида марь красная ( Chenopodium rubrum L.), приводящее к развитию галотолерантных и галофильных бактерий, а также в увеличении доли бактерий классов Actinobacteria и Bacilli в ризосферной зоне. Отмечено негативное влияние засоления почвы на численность бактерий в ризосфере.

Работа поддержана грантом РФФИ Урал № 1304-96048 «Изучение механизмов функционирования микробно-растительных систем в условиях засоления почвы».

Список литературы Филогенетическое разнообразие бактерий, выделенных из ризосферы мари красной (Chenopodium rubrum L.), произрастающей в условиях засоления на территории солеразработок (г. Соликамск, Пермский край)

  • Бабошко А.Ю., Бачурин Б.А. Тяжелые металлы в отходах калийной промышленности//Горный информационно-аналитический бюллетень. 2009. № 5. С. 369-376.
  • ГОСТ 26423-85. Почвы. Методы определения удельной электрической проводимости, pH и плотного остатка водной вытяжки. М., 1985.
  • Звягинцев Д.Г., Добровольская Т.Г., Лысак Л.В. Растения как центры формирования бактериальных сообществ//Журнал общей биологии. 1993. Т. 54, № 2. С. 183-199.
  • Калакуцкий Л.В., Шарая Л.С. Актиномицеты и высшие растения//Успехи микробиологии. 1990. Т. 24. С. 26-65.
  • Методы почвенной микробиологии и биохимии: учеб. пособие/под ред. Д. Г. Звягинцева. М., 1991. 304 с.
  • Молекулярная генетика: учеб.-метод. пособие/под ред. С.В. Боронниковой. Пермь, 2007. 150 с.
  • Шубин А.А. Решение экологических проблем на заключительной стадии функционирования горного предприятия//Горный информационно-аналитический бюллетень. 2005. № 11. С. 168-173.
  • Юрчак Л.Д., Утеуш Ю.А., Омельченко Т.В. Микрофлора и аллелопатические способности растений семейства крестоцветных//Взаимодействие растений и микроорганизмов в фитоценозах. Киев, 1977. C. 161-167.
  • Behrendt U., Ulrich A., Schumann P. Description of Microbacterium foliorum sp. nov. and Microbacterium phyllosphaerae sp. nov., isolated from the phyllosphere of grasses and the surface litter after mulching the sward, and reclassification of Aureobacterium resistens (Funke et al. 1998) as Microbacterium resistens comb. nov.//International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2001. Vol. 51. P. 1267-1276.
  • Kavamura V. et al. Water Regime Influences Bulk Soil and Rhizosphere of Cereus jamacaru Bacterial Communities in the Brazilian Caatinga Biome//PLoS ONE. 2013. Vol. 9, № 8. P. 1-10.
  • Marasco R. et al. A Drought Resistance-Promoting Microbiome Is Selected by Root System under Desert Farming//PLoS ONE. 2012. Vol. 10, № 7. P. 1-14.
  • Raymond R.L. Microbial oxidation of n-paraffinic hydrocarbons//Develoments in Industrial Microbiology. 1961. Vol. 2, № 1. P. 23-32.
Еще
Статья научная