Фотосинтетическая продуктивность и структура урожая яровой пшеницы под влиянием нанокремния в сравнении с биологическим и химическим препаратами

Хорошилов А.А.; Павловская Н.Е.; Бородин Д.Б.; Яковлева И.В.; Khoroshilov A.A.; Pavlovskaya N.E.; Borodin D.B.; Yakovleva I.V.

doi:10.15389/agrobiology.2021.3.487rus

Фотосинтетическая продуктивность и структура урожая яровой пшеницы под влиянием нанокремния в сравнении с биологическим и химическим препаратами

Автор: Хорошилов А.А., Павловская Н.Е., Бородин Д.Б., Яковлева И.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Нанопрепараты

Статья в выпуске: 3 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Пшеница широко используется как пищевая, техническая и кормовая культура. Увеличение урожайности культуры возможно за счет смягчения последствий биотических и абиотических стрессов посредством различных технологий, включающих применение микроэлементов и регуляторов роста. Одним из перспективных препаратов представляется микроудобрение Нанокремний (ООО «НаноКремний», Россия) - экологически чистый продукт, содержащий в своей основе 50 % чистого кристаллического кремния с частицами коллоидного размера. В настоящей работе впервые было показано положительное влияние препарата Нанокремний на фотосинтетический потенциал и величину чистой продуктивности фотосинтеза, синтез хлорофилла, каротиноидов и сахаров, а также преимущество этого микроудобрения перед пестицидом Винцит, КС и экспериментальным биопрепаратом. Под влиянием Нанокремния изменилась структура урожая яровой пшеницы: увеличилось число продуктивных стеблей, колосьев и масса 1000 зерен. Нашей целью было изучение влияния препарата Нанокремний на фотосинтетическую продуктивность и структуру урожая яровой пшеницы в условиях Орловской области и сравнение его действия с таковым химического пестицида и биоактивного препарата. Полевые опыты проводили в 2016-2019 годах (ФГБУ ФНЦ зернобобовых и крупяных культур, пос. Стрелецкое, Орловская обл.) на яровой пшенице ( Triticum aestivum L.) сорта Дарья. В эксперименте было два контрольных (вода и химический пестицид Винцит, КС) и два опытных (биопрепарат на основе биофлаваноидов гречихи и препарат Нанокремний) варианта. Во всех вариантах семена перед посевом замачивали в течение 2 ч. Обработку по вегетации проводили дважды опрыскиванием вегетирующих растений в фазу кущения и выхода в трубку. Энергию прорастания и всхожести семян определяли по ГОСТ 12038-84, развитие семенной инфекции - по ГОСТ 12044-93. Фенологические наблюдения выполняли в фазы 2-3-го листа, кущения, выхода в трубку, колошения, цветения, молочной спелости и полной спелости зерна. Оценивали фотосинтетический потенциал (ФП) и чистую продуктивность фотосинтеза (ЧПФ), измеряли площадь листьев и содержание пигментов в растениях. Установлено, что предпосевная обработка семян яровой пшеницы Нанокремнием способствовала увеличению энергии прорастания на 18,5 %, всхожести - на 5,5 % (р 2ʺсут/га. Показатели ЧПФ при обработке Нанокремнием были выше контрольных на 60-80 % (вода) и 22,2 % (Винцит, КС). Наибольшее количество хлорофиллов и каротиноидов в растениях образовывалось в фазу колошение-цветение. Под влиянием Нанокремния и биопрепарата синтез пигментов увеличился по сравнению с контрольными вариантами на 20-30 %. Нанокремний способствовал увеличению синтеза сахаров в процессе фотосинтеза в меньшей степени, чем биопрепарат, что можно объяснить разницей в перераспределении ассимилятов и большим накоплением белков. Показаны незначительные преимущества обработки Нанокремнием перед биоактивным препаратом по числу зерен в колосе и массе 1000 семян. Под влиянием обработки Нанокремнием число продуктивных стеблей увеличивалось на 33,7, колосьев - на 38,7, масса колоса - на 26,8, число зерен в колосе - на 19,2, масса 1000 семян - на 19,7 % по сравнению с контролем (вода). Показатели по биопрепарату были несколько ниже, чем по Нанокремнию, но выше контрольных. Урожайность пшеницы

Еще

Яровая пшеница, нанокремний, биопрепарат, энергия прорастания, всхожесть, чистая продуктивность фотосинтеза, пигменты, структура урожая

Короткий адрес: https://sciup.org/142231365

IDR: 142231365 | УДК: 633.11:581.13:631.559:539.2 | DOI: 10.15389/agrobiology.2021.3.487rus

A nanosilicon preparation is superior to a biological preparation and a chemical preparation in activity towards photosynthetic productivity and yield parameters of spring wheat

Wheat is widely used as a food, technical and feed crop. Increased wheat yields can be achieved by mitigating biotic and abiotic stresses using a variety of technologies that include trace elements and growth regulators. Nanosilicon microfertilizer (NanoSilicon LLC, Russia) is an environmentally friendly product containing 50 % of pure colloidal-sized crystalline silicon. This work, for the first time, confirms the positive effect of the Nanosilicon preparation on photosynthetic potential and the net productivity of photosynthesis, the synthesis of chlorophyll, carotenoids and sugars and shows an advantage of Nanosilicon over the pesticide Vincite and an experimental biological product. Under the influence of Nanosilicon, the component structure of the spring wheat yield changed, namely, the number of productive stems, ears and 1000 grain weight increased. Our goal was to examine the effect of Nanosilicon preparation on spring wheat photosynthetic productivity and yield components in the conditions of the Orel region and to compare the effect of Nanosilicon with that of a chemical pesticide and a bioactive preparation. The experiment design included four treatments of spring wheat ( Triticum aestivum L.) cv. Darya seeds (Federal Research Center for Grain-Legumes and Cereals, Streletskoe village, Oryol region, 2016-2019). The seeds were soaked for 2 hours before sowing in water, in chemical pesticide Vinzit (two controls), in a novel biological product based on buckwheat bioflavonoids, and in Nanosilicon concentrate (tests). During vegetation, the control and test treatments were twice applied to the growing plants at tillering and at stem extension phases. The energy of seed germination and germination rate were determined, the development of seed infections was assessed. The phenological phases (three leaves, tillering, stem extension, earing, flowering, milk ripeness, and full ripeness of the grain) were recorded. Photosynthetic potential (PP), photosynthetic productivity and net photosynthetic productivity (NPP) were evaluated, leaf area and the pigment content were measured. It was found that pre-sowing treatment of spring wheat seeds with Nanosilicon contributed to an 18.5 % increase in germination energy and a 5.5 % increase in germination rate as compared to the control treatments. Due to the Nanosilicon application, the plants were taller, resulting in more leaves until the end of the growing season, which indicates a longer leaf life compared to controls. The leaf area was 20.0 % larger at the earing-flowering period compared to the control (water), that was, 14.6 % larger for the biopreparation and 8.3 % larger for the pesticide Vincit. Photosynthetic capacity for control (water), Vincit, Nanosilicon, and the biopreparation was 633360, 686022, 1560384, and 1104894 m2ʺday/ha, respectively. NPP value for Nanosilicon was greater as compared to the controls, by 60-80 % for water and by 22.2 % for Vincit. The amounts of chlorophylls and carotenoids in plants were the greatest at the earing-flowering phase. Under the influence of Nanosilicon and the biological preparation, the synthesis of pigments increased by 20-30 % compared to the controls. Nanosilicon contributed to an increase in the synthesis of sugars in the process of photosynthesis to a lesser extent than the biological product, which can be explained by the difference in the distribution of assimilates and a large accumulation of proteins. The advantages of the Nanosilicon over the bioactive preparation in the number of grains and the 1000-seed weight were minor. Under the effect of Nanosilicon, the number of productive stems increased by 33.7 %, the number of ears by 38.7 %, the ear weight by 26.8 %, the number of grains per ear by 19.2 ear, and the 1000-grain weight by 19.7 % as compared to the control. These indicators for the bioactive preparation were slightly lower than for Nanosilicon, but higher than in control treatments. For four years, the

Еще

Список литературы Фотосинтетическая продуктивность и структура урожая яровой пшеницы под влиянием нанокремния в сравнении с биологическим и химическим препаратами

Food and Agriculture Organization Corporate Statistical Database. Режим доступа: http://www.fao.org/faostat/ru/#data/QC. Без даты.
Khoury С.К., Bjorkman А.D., Dempewolf H., Ramirez-Villegas J., Guarino L., Jarvis A., Rieseberg L.H., Struik P.C. Increasing homogeneity in global food supplies and the implications for food security. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2014, 111(11): 4001-4006 (doi: 10.1073/pnas.1313490111).
Johnson V.A., Briggle L.W., Axtel J.D., Bauman L.F., Leng E.R., Johnston T.H. Grain crops. In: Protein resources and technology /M. Milner, N.S. Scrimshaw, D.I.C. Wang (eds.). AVI Pub-lishin, Westport, CT, USA, 1978: 239-255.
Giraldo P., Benavente E., Manzano-Agugliaro F., Gimenez E. Worldwide research trends on wheat and barley: a bibliometric comparative analysis. Agronomy, 2019, 9(7): 352 (doi: 10.3390/agronomy9070352).
Singh R.P., Singh P.K., Rutkoski J., Hodson D.P., He X., Jorgensen L.N., Hovmøller M.S., Huerta-Espino J. Disease impact on wheat yield potential and prospects of genetic control. Annual Review of Phytopathology, 2016, 54: 303-322 (doi: 10.1146/annurev-phyto-080615-095835).
Hawkesford M.J., Araus J.-L., Park R., Calderini D., Miralles D., Shen T., Zhang J., Parry M.A.J. Prospects of doubling global wheat yields. Food and Energy Security, 2013, 2(1): 34-48 (doi: 10.1002/fes3.15).
Slafer G.A., Savin R., Sadras V.O. Coarse and fine regulation of wheat yield components in response to genotype and environment. Field Crops Research, 2014, 157: 71-83 (doi: 10.1016/j.fcr.2013.12.004).
Trnka M., Rötter R.P., Ruiz-Ramos M., Kersebaum K.C., Olesen J.E., Žalud Z., Semenov M.A. Adverse weather conditions for European wheat production will become more frequent with climate change. Nature Climate Change, 2014, 4(7): 637-643 (doi: 10.1038/NCLIMATE2242).
Wang J., Vanga S.K., Saxena R., Orsat V., Raghavan V. Effect of climate change on the yield of cereal crops: a review. Climate, 2018, 6(2): 41 (doi: 10.3390/cli6020041).
Yavaş İ., Ünay A. The role of silicon under biotic and abiotic stress conditions. Türkiye Tarımsal Araştırmalar Dergisi, 2017, 4(2): 204-209 (doi: 10.19159/tutad.300023).
Cooke J., Leishman M.R. Consistent alleviation of abiotic stress with silicon addition: a meta-analysis. Functional Ecology, 2016, 30(8): 1340-1357 (doi: 10.1111/1365-2435.12713).
Mir R.A., Bhat K.A., Shah A.A., Zargar S.M. Role of silicon in abiotic stress tolerance of plants. In: Improving abiotic stress tolerance in plants. CRC Press, 2020 (doi: 10.1201/9780429027505-15).
Frew A., Weston L.A., Reynolds O.L., Gurr G.M. The role of silicon in plant biology: a paradigm shift in research approach. Annals of Botany, 2018, 121(7): 1265-1273 (doi: 10.1093/aob/mcy009).
Abdel-Haliem M.E.F., Hegazy H.S., Hassan N.S., Naguib D.M. Effect of silica ions and nano silica on rice plants under salinity stress. Ecological Engineering, 2017, 99: 282-289 (doi: 10.1016/j.ecoleng.2016.11.060).
Luyckx M., Hausman J.-F., Lutts S., Guerriero G. Silicon and plants: current knowledge and technological perspectives. Front. Plant Sci., 2017, 8: 411 (doi: 10.3389/fpls.2017.00411).
Liang Y., Nikolic M., Bélanger R., Gong H., Song A. Silicon uptake and transport in plants: physiological and molecular aspects. In: Silicon in agriculture /Y. Liang, M. Nicolic, R. Bélanger, H. Gong, A. Song (eds). Springer, Dordrecht, 2015: 69-82 (doi: 10.1007/978-94-017-9978-2).
Козлов А.В., Куликова А.Х., Яшин Е.А. Роль и значение кремния и кремнийсодержащих веществ в агроэкосистемах. Вестник Мининского университета, 2015, 2: 23-31.
Al-Aghabary K., Zhu Z., Shi Q. Influence of silicon supply on chlorophyll content, chlorophyll fluorescence and anti-oxidative enzyme activities in tomato plants under salt stress. Journal of Plant Nutrition, 2005, 27(12): 2101-2115 (doi: 10.1081/PLN-200034641).
Molero G., Joynson R., Pinera-Chavez F.J., Gardiner L., Rivera-Amado C., Hall A., Reyn-olds M.P. Elucidating the genetic basis of biomass accumulation and radiation use efficiency in spring wheat and its role in yield potential. Plant Biotechnology Journal, 2019, 17(7): 1276-1288 (doi: 10.1111/pbi.13052).
Richards R.A. Selectable traits to increase crop photosynthesis and yield of grain crops. Journal of Experimental Botany, 2000, 51(Suppl. 1): 447-458 (doi: 10.1093/jexbot/51.suppl_1.447).
Curtis T., Halford N.G. Food security: the challenge of increasing wheat yield and the importance of not compromising food safety. Annals of Applied Biology, 2014, 164(3): 354-372 (doi: 10.1111/aab.12108).
Косачев И.А., Чернышков В.Н. Влияние кремнийсодержащего препарата «Нанокремний» на рост, развитие и продуктивность сельскохозяйственных культур в условиях Алтайского края. Вестник Алтайского государственного аграрного университета, 2018, 9(167): 23-28.
Семина С.А., Остробородова Н.И. Перспективы применения препарата нанокремний на посевах яровой пшеницы. Мат. Межд. науч.-практ. конф., посвященной 80-летию д.с.-х.н., проф. Созырко Х.Д. «Актуальные вопросы применения удобрений в сельском хозяйстве». Владикавказ, 2017: 63-65.
Серкова О.П., Жандарова С.В. Влияние нанокремния на урожайность зерна яровой пшеницы в условиях умеренно засушливой колочной степи Алтайского края. Мат. XIV Межд. науч.-практ. конф. «Аграрная наука — сельскому хозяйству». Барнаул, 2019, кн. 2: 246-247.
Мнатсаканян А.А., Чуварлеева Г.В. Эффективность препарата нанокремний на озимой пшенице. Мат. Межд. науч.-практ. конф. молодых ученых и специалистов «Фундаментальные основы управления селекционным процессом создания новых генотипов растений с высокими хозяйственно ценными признаками продуктивности, устойчивости к био- и абиострессорам». Орел, 2017: 135-139.
Чуварлеева Г.В., Мнатсаканян А.А. Влияние препарата нанокремний на урожайность и качество озимого ячменя. Мат. науч.-практ. конф., посвященной 110-летию со дня рождения академика В.И. Шемпеля. Жодино, 2018: 114-116.
Павловская Н.Е., Горькова И.В., Гагарина И.Н., Бородин Д.Б., Борзенкова Г.А. Средство для предпосевной обработки семян гороха. RU 2463759 C1 МПК A01C 1/06, A01C 1/08. Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Орловский государственный аграрный университет» (РФ). № 2011117691/13. Заявл. 03.05.2011. Опубл. 20.10.2012. Бюл. № 29.
Ничипорович A.A., Строгонова Л.Е., Чмора С.Н., Власова М.П. Фотосинтетическая деятельность растений в посевах (Методы и задачи учета в связи с формированием урожаев). М., 1961.
Моисеев В.П., Решецкий Н.П. Физиология и биохимия растений: метод. указ. Горки, 2009.
Гавриленко В.Ф., Ладыгина М.Е., Хандобина Л.М. Большой практикум по физиологии растений /Под ред. Б.А. Рубина. М., 1975.
Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки резуль-татов исследований). М., 1985.
Westfall C.S., Muehler A.M., Jez J.M. Enzyme action in the regulation of plant hormone responses. Journal of Biological Chemistry, 2013, 288(27): 19304-19311 (doi: 10.1074/jbc.R113.475160).
Zhang Y., Xu S., Ji F., Hu Y., Gu Z., Xu B. Plant cell wall hydrolysis process reveals structure—activity relationships. Plant Methods, 2020, 16: 147 (doi: 10.1186/s13007-020-00691-5).
Liu P., Yin L., Wang S., Zhang M., Deng X., Zhang S., Tanaka K. Enhanced root hydraulic conductance by aquaporin regulation accounts for silicon alleviated salt-induced osmotic stress in Sorghum bicolor L. Environmental and Experimental Botany, 2015, 111: 42-51 (doi: 10.1016/j.envexpbot.2014.10.006).
Андрианова Ю.Е., Тарчевский И.А. Хлорофилл и продуктивность растений. М., 2000.
Орт Д., Меландри Б.А., Юнге В., Уитмарш Дж. Фотосинтез. Т. 2 /Под ред. Д.Р. Говинджи. М., 1987.
Heyneke Е., Fernie A.R. Metabolic regulation of photosynthesis. Biochem. Soc. Trans., 2018, 46(2): 321-328 (doi: 10.1042/BST20170296).
Timm S. The impact of photorespiration on plant primary metabolism through metabolic and redox regulation. Biochem. Soc. Trans., 2020, 48(6): 2495-2504 (doi: 10.1042/BST20200055).
Andralojc P.J., Carmo-Silva E., Degen G.E., Parry M.A.J. Increasing metabolic potential: C-fixation. Essays Biochem., 2018, 62(1): 109-118 (doi: 10.1042/EBC20170014).
Мокроносов А.Т. Фотосинтез и продукционный процесс. В сб.: Физиология растений на службе продовольственной программы СССР. М., 1988, ч. 2: 3-18.
Никитин С.Н. Фотосинтетическая деятельность растений в посевах и динамика ростовых процессов при применении биологических препаратов. Успехи современного естествознания, 2017, 1: 33-38.
Ничипорович А.А. Реализация регуляторной функции света и жизнедеятельности растений как целого и в его продуктивности. В сб.: Фоторегуляция метаболизма и морфогенеза растений. М., 1975: 228-244.
Синеговская В.Т., Абросимова Т.Е. Активизация фотосинтетической деятельности яровой пшеницы при длительном применении удобрений. Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук, 2006, 5: 43-45.
Тимошенко Э.В. Действие биопрепаратов на показатели фотосинтеза и урожайность яровой пшеницы в Амурской области. МНИЖ Международный научно-исследовательский журнал, 2015, 41(10-3): 68-70 (doi: 10.18454/IRJ.2015.41.092).
Isaychev V., Andreev N., Bogapova M. The influence of growth regulators on the productive capacity of spring wheat. BIO Web Conf. Int. Scientific-Practical Conf. Agriculture and Food Security: Technology, Innovation, Markets, Human Resources. Ulyanovsk, 2020, 17: 5 (doi: 10.1051/bioconf/20201700106).
Waqas M.A., Khan I., Akhter M.J., Noor M.A., Ashraf U. Exogenous application of plant growth regulators (PGRs) induces chilling tolerance in short-duration hybrid maize. Environmental Science and Pollution Research, 2017, 24: 11459-11471 (doi: 10.1007/s11356-017-8768-0).
Kaya C., Sonmez O., Aydemir S., Ashraf M., Dikilitas M. Exogenous application of mannitol and thiourea regulates plant growth and oxidative stress responses in salt-stressed maize (Zea mays L.). Journal of Plant Interactions, 2013, 8(3): 234-241 (doi: 10.1080/17429145.2012.725480).
Li X., Schmid B., Wang F., Paine C.E.T. Net assimilation rate determines the growth rates of 14 species of subtropical forest trees. PLoS ONE, 2016, 11(3): e0150644 (doi: 10.1371/jour-nal.pone.0150644).
Evans J.R. Improving photosynthesis. Plant Physiology, 2013, 162(4): 1780-1793 (doi: 10.1104/pp.113.219006).
Long S.P., Zhu X.-G., Naidu S.L., Ort D.R. Can improvement in photosynthesis increase crop yields? Plant, Cell & Environment, 2006, 29(3): 315-330 (doi: 10.1111/j.1365-3040.2005.01493.x).
Condon A.G., Farquhar G.D., Richards R.A. Genotypic variation in carbon isotope discrimi-nation and transpiration efficiency in wheat: leaf gas-exchange and whole plant studies. Australian Journal of Plant Physiology, 1990, 17(1): 9-22 (doi: 10.1071/PP9900009)
Rebetzke G.J., Rattey A.R., Farquhar G.D., Richards R.A., Condon A.G. Genomic regions for canopy temperature and their genetic association with stomatal conductance and grain yield in wheat. Functional Plant Biology, 2013, 40(1): 14-33 (doi: 10.1071/FP12184).
Ничипорович А.А., Асроров К.А. О некоторых принципах оптимизации фотосинтетиче-ской деятельности растений в посевах. В кн.: Фотосинтез и использование солнечной энергии. Л., 1971: 5-18.
Myśliwa-Kurdziel B., Latowski D., Strzałka K. Chapter Three. Chlorophylls c — Occurrence, synthesis, properties, photosynthetic and evolutionary significance. Advances in Botanical Re-search, 2019, 90: 91-119 (doi: 10.1016/bs.abr.2019.04.002).
Головко Т.К., Табаленкова Г.Н., Дымова О.В. Пигментный комплекс растений Припо-лярного Урала. Ботанический журнал, 2007, 92: 1732-1742.
Hashimoto H., Uragami C., Cogdell R.J. Carotenoids and photosynthesis. In: Carotenoids in nature. Subcellular biochemistry, vol. 79 /C. Stange (eds.). Springer, Cham, 2016: 111-139 (doi: 10.1007/978-3-319-39126-7_4).
Иванов Л.А., Иванова Л.А., Ронжина Д.А., Юдина П.К. Изменение содержания хлоро-филлов и каротиноидов в листьях степных растений вдоль широтного градиента на Юж-ном Урале. Физиология растений, 2013, 60(6): 856-864 (doi: 10.7868/S0015330313050072).
Bae E.J., Lee K.S., Huh M.R., Lim C.S. Silicon significantly alleviates the growth inhibitory effects of NaCl in salt-sensitive «Perfection» and «Midnight» Kentucky bluegrass (Poa pratensis L). Hortic. Environ. Biotechnol., 2012, 53: 477-483 (doi: 10.1007/s13580-012-0094-3).
Lee S.K., Sohn E.Y., Hamayun M., Yoon J.Y., Lee I.J. Effect of silicon on growth and salinity stress of soybean plant grown under hydroponic system. Agroforest Syst., 2010, 80: 333-340 (doi: 10.1007/s10457-010-9299-6).
Al-Aghabary K., Zhu Z., Shi Q. Influence of silicon supply on chlorophyll content, chlorophyll fluorescence and anti-oxidative enzyme activities in tomato plants under salt stress. Journal of Plant Nutrition, 2005, 27(12): 2101-2115 (doi: 10.1081/PLN-200034641).
Romero-Aranda M.R., Jurado O., Cuartero J. Silicon alleviates the deleterious salt effect on tomato plant growth by improving plant water status. J. Plant Physiol., 2006, 163(8): 847-855 (doi: 10.1016/j.jplph.2005.05.010).
Murillo-Amador B., Yamada S., Yamaguchi T., Rueda-Puente E., Ávila-Serrano N., García‐Hernández J.L., López‐Aguilar R., Troyo‐Diéguez E., Nieto-Garibay A. Influence of calcium silicate on growth, physiological parameters and mineral nutrition in two legume species under salt stress. Journal of Agronomy and Crop Science, 2007, 193(6): 413-421 (doi: 10.1111/j.1439-037X.2007.00273.x).
Artyszak A. Effect of silicon fertilization on crop yield quantity and quality — a literature review in Europe. Plants, 2018, 7(3): 54 (doi: 10.3390/plants7030054).
Виноградова В.С., Мартынцева А.А., Казарин С.Н. Влияние гуминовых и микроудобре-ний на урожайность яровой пшеницы. Земледелие, 2015, 1: 32-34.
Богомазов С.В., Левин А.А., Ткачук О.А., Лянденбурская А.В. Урожайность и качество зерна яровой мягкой пшеницы в зависимости от применения гуминового и минеральных удобрений. Нива Поволжья, 2019, 3(52): 68-73.
Lavoy I., Croy R., Hageman H. Relationship of nitrate reductase activity to grain protein production in wheat. Crop Science, 1970, 10(3): 280-285 (doi: 10.2135/crop-sci1970.0011183X001000030021x).
Tao Z., Chang X., Wang D., Wang Y., Ma S., Yang Y., Zhao G. Effects of sulfur fertilization and short-term high temperature on wheat grain production and wheat flour proteins. The Crop Journal, 2018, 6(4): 413-425 (doi: 10.1016/j.cj.2018.01.007).
Khursheed M.Q. Effect of foliar application of Salicylic acid on growth, yield components and chemical constituents of Wheat (Triticum aestivum L. var. Cham 6). 5th Scientific Conference of College of Agriculture. Article Salahaddin University. Erbil, 2011. Режим доступа: https://www.re-searchgate.net/publication/313968252. Без даты.
Janda T., Gondor O.K., Yordanova R., Szalai G., Pál M. Salicylic acid and photosynthesis: signalling and effects. Acta Physiol. Plant, 2014, 36: 2537-2546 (doi: 10.1007/s11738-014-1620-y).
Мокроносов А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М., 1981.

Еще