Гемогормональный статус организма свиней при стимуляции компенсаторно-адаптационных реакций

использования маточного поголовья, обеспечивая при этом стабильность производственных показателей и рентабельность технологии производства свинины. В то же время, резервы эффективности биотехнологии воспроизведения свиней далеко не исчерпаны, а накопленные к настоящему времени данные науки и практики показывают, что при разведении свиней значительная часть хряков и свиноматок имеет пониженную воспроизводительную способность и показатели продуктивности.

На современном этапе развития физиологической науки особое место занимает выяснение фундаментальных механизмов обеспечения жизненно важных функций животного организма и их использование в практике животноводства. Это позволит разработать новые и совершенствовать существующие адаптивные технологии воспроизведения животных, правильно организовать технологию воспроизводства стада, основанную на закономерностях роста и развития свиней. В настоящее время практика животноводства часто обращается к консервативным методам регуляции функционального гомеостаза, одним из которых является рефлекторное воздействие на биологически активные центры (БАЦ), расположенные на поверхности тела животных [1,6,7]. Методы воздействия на биологически активные центры (акупунктура, электропунктура и т.д.) широко используются в ветеринарной практике с целью коррекции различных нарушений функционального гомеостаза организма сельскохозяйственных животных [3,4]. Бесспорным преимуществом использования рефлекторных методов является отсутствие медикаментозных способов воздействия, относительно высокие результаты, экологическая безопасность, простота в применении. Однако в доступной литературе представлено мало данных о влиянии рефлекторных методов на показатели функционального гомеостаза животных, в частности на гемогормональный статус.

В этой связи, целью настоящей работы было изучение влияния стимуляции компенсаторноадаптационных реакций при воздействии на функциональную систему поверхностно локализованных биологически активных центров на гемогормональный статус свиней.

Материалы и методика исследований

Для активизации компенсаторно-адаптационных реакций организма свиней использовали блокирование одного из биологически активных центров микроинъекциями раствора атропина. Производилось ежедневное отключение БАЦ свиноматок №5, №7, №11, №41, №44 (Нумерация центров принята по Г.В. Казееву, 1994) [2] в течение десяти дней при помощи микроинъекции 2 мл 0,1% раствора атропина, начиная со второго дня после отъёма поросят. Особенностью атропина является его способность блокировать холинорецепторы, делая их нечувствительными к ацетилхолину, образующемуся в области окончаний постганглионарных парасимпатических нервов [5]. Контролем служили данные биопотенциала до отключения. Было сформировано шесть групп свиноматок крупной белой породы в возрасте 3-5 лет средней живой массой 200-220 кг по пять голов в каждой группе. Всего в опытах было использовано 30 животных. Контрольные животные обработке не подвергались.

По окончании цикла воздействия у опытных свиноматок брали кровь для морфологических, биохимических исследований и анализа на содержание гормонов. Кровь у свиноматок отбиралась в утренние часы непосредственно перед кормлением. Анализ крови осуществлялся по общепринятым методикам в лабораторных условиях Орел ГАУ и Орловской областной ветеринарной лаборатории.

При проведении морфологического анализа в крови свиней определяли количество гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов, лимфоцитов традиционными методами. Определение общего белка в сыворотке крови проводили рефрактометрическим способом, с помощью прибора РЛУ. Определение белковых фракций в сыворотке крови проводили нефелометрическим методом . Радиоиммунологическим методом определяли содержание кортизола, прогестерона в сыворотке крови свиней. В основе метода лежит специфическая иммунологическая реакция антиген – антитело. Флюорометрическим методом определяли содержание адреналина и норадреналина в крови опытных животных. Метод основан на том, что растворы адреналина и норадреналина имеют свой спектр флюоресценции, интенсивность которой зависит от концентрации адреналина и норадреналина в растворе, то есть сравнения световых потоков двух каналов – канала кюветы и канала сравнения. Результаты были обработаны методом вариационной статистики с использованием критерия достоверности Стьюдента.

Результаты исследований и их обсуждение

Труды многочисленных авторов по физиологии центральной нервной системы, а также результаты классических исследований некоторых авторов по изучению реакций биологически активных центров на раздражения (И.И. Русецкий, 1959; И.А. Булыгин, 1976; Н.А. Барбараш, Г.Я. Двуреченская, 1986; Р.А. Дуринян, 1984; Г. Лувсан, 1992; А.Н. Голиков, 1986; В.И. Георгиевский, 1990 и др.) позволяют соотнести БАЦ с различными отделами вегетативной нервной системы животного организма. Изучение материалов исследований по строению и связям вегетативной нервной системы и результаты собственных исследований свойств БАЦ позволили сделать заключение о том, что центры представлены в организме единой функциональной системой, которой присущи компенсаторно-адаптационные механизмы в многообразной гомеостатической деятельности целого организма [3,6,7].

По-видимому, после атропинового воздействия на систему БАЦ повышается уровень общей реактивности организма, что отражается на картине крови (таблица 1). Причём, В.А. Петров в соавт. (1997,2000) также отмечает, что изменение клеточного состава периферической крови происходит в здоровом организме при действии рефлекторных методов. Установленное нами повышение уровня гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов и лимфоцитов, очевидно, говорит о мобилизации энергетических ресурсов, усилении внутриклеточного обмена, бактерицидной и фагоцитарной активности клеточных элементов. Затем мы изучили влияние микроинъекций раствора атропина в область БАЦ на биохимический состав крови животных (таблица 2).

Таблица 1 - Влияние атропиновой стимуляции системы биологически активных центров свиноматок на морфологический состав крови, М ± т

Номер группы	Количество животных, голов	Гемоглобин, г/л	Эритроциты, млн. в 1 мкл.	Лейкоциты, тыс. в1 мкл.	Лимфоциты, %
1. Контроль	5	95,0 ± 1,41	6,22 ± 0,19	9,0 ± 1,09	39,1 ± 0,43
2.(БАЦ № 5)	5	106,8 ± 1,06**	7,00 ± 0,11*	13,3 ± 1,14	42,2 ± 1,14
3.(БАЦ №7)	5	128,6 ± 2,21***	10,70 ± 1,12*	16,0 ± 2,11*	47,9 ± 1,33**
4.(БАЦ №11)	5	121,8 ± 2,28***	8,70 ± 1,04	14,3 ± 1,12*	49,7 ± 1,53**
5.(БАЦ № 41)	5	117,6 ± 2,12***	8,62 ± 1,14	19,9 ± 2,24**	54,9 ± 2,15***
6.(БАЦ № 44)	5	107,2 ± 3,22*	7,50 ± 1,18	15,9 ± 2,11*	47,8 ± 1,04***

Различия статистически достоверны по сравнению с контролем: *- р < 0,05; ** - р < 0,01; *** - р < 0,001

Таблица 2 - Влияние атропиновой стимуляции системы биологически активных центров на биохимические показатели крови животных, М ± т

Номер группы	Количество животных, голов	Общий белок, г%	Альбумины, %	а - глобулины, %	в - глобулины, %	Y - глобулины, %
1. Контроль	5	7,44±0,45	47,41±1,16	13,86±1,70	13,80±1,29	24,93±1,64
2.(БАЦ № 5)	5	7,85±0,39	45,36±1,54	14,15±1,06	14,14±1,14	27,35±1,25
3.(БАЦ №7)	5	8,33±0,22	43,20±1,06*	18,93±0,85*	16,52±1,69	30,11±1,12*
4.(БАЦ №11)	5	9,22±0,26*	41,17±1,29*	19,42±1,32*	20,14±1,25*	32,52±1,72*
5.(БАЦ № 41)	5	7,45±1,37	47,51±2,09	14,10±1,18	20,39±0,66**	24,02±2,44
6.(БАЦ № 44)	5	9,81±0,37**	46,65±1,45	13,42±0,60	13,42±0,60	33,39±1,57*

Различия статистически достоверны по сравнению с контролем: *- р < 0,05; ** - р < 0,01

Установлено, что при атропиновой стимуляции БАЦ №5, №7, №11, №41, №44 произошло достоверное (р < 0,05; р < 0,01) повышение уровня общего белка в сыворотке крови относительно контрольной группы на 14,3% в среднем по пяти группам. Наибольшее влияние на уровень общего белка оказала стимуляция БАЦ №7, №11, №44. Количество общего белка в крови животных этих групп увеличилось на 10,6%, 23,9%, 31,8% соответственно. Уровень альбуминов в среднем по пяти группам достоверно (р < 0,05) снижается относительно контроля на 6,2%. При стимуляции БАЦ №11 максимальное снижение уровня альбуминов в сыворотке крови установлено на 15,1% относительно контрольной группы. Наименьшее влияние на количество альбуминовой фракции оказала стимуляция БАЦ №41 и №44. Уровень альбуминов снизился на 2% и 1,6% соответственно относительно контрольной группы свиней. Установлено увеличение количества глобулиновой фракции в сыворотке крови у опытных животных. Определено, что наибольшее влияние стимуляция системы БАЦ свиней методом атропинового блокирования оказала на уровень в-глобулинов и у-глобулинов. Уровень в-глобулинов при стимуляции БАЦ №5, №7, №11, №41 и №44 повысился на 2,4%, 16,4%, 31,4%, 32,3% и 28,4% соответственно относительно контрольной группы при высокодостоверных различиях (р < 0,05; р < 0,01). Уровень Y-глобулинов повысился на 8,8%, 17,2%, 23,3%, 3,7%, 25,3% соответственно относительно контроля. Так уровень Y-глобулинов в сыворотке крови наивысшего значения достиг при воздействии на БАЦ №7, №11, №44. В среднем по пяти группам количество Y-глобулинов достоверно (р < 0,05) увеличилось на 15,6% относительно контроля. Уровень а-глобулинов возрос в среднем на 12,4%, а в-глобулинов на 22,8% при достоверных (р < 0,05) различиях относительно контрольной группы.

Таким образом, на основании проведённых исследований можно сделать предположение о том, что атропиновое воздействие на систему БАЦ активизирует ряд жизненно важных функций, связанных с участием а- и в- глобулинов в транспортировке липидов, стероидных гормонов, витаминов, а также выполнении Y-глобулинами защитных функций, являясь факторами специфического и неспецифического иммунитета.

Создать целостную картину влияния атропиновой стимуляции системы БАЦ свиней на функциональный гомеостаз животных невозможно без изучения уровня гормонов. Вначале было изучено влияние атропиновой стимуляции системы БАЦ на уровень катехоламинов, в частности, адреналина и норадреналина в крови опытных животных (таблица 3).

Установлено, что уровень адреналина в крови опытных животных при стимуляции системы ПЛБАЦ методом атропинового блокирования одного из центров вырос в среднем по пяти группам на 29,8% при высокодостоверных (р < 0,001) различиях относительно контроля. Наибольшее влияние на уровень этого гормона в крови оказало воздействие на ПЛБАЦ №5, №11 и №44 при высокодостоверных (р < 0,01) различиях относительно контрольной группы. Соотношение уровня адреналина в крови животных установлено как: №11>№44>№5>№41>№7.

Таблица 3 - Влияние стимуляции системы биологически активных центров свиноматок на уровень катехоламинов в крови, М ± т

Номер группы	Количество животных, голов	Адреналин, мкг%	Норадреналин, мкг%
1. Контроль	5	2,85 ± 0,12	7,04 ± 1,34
2. (БАЦ № 5)	5	4,11 ± 0,30*	9,21 ± 1,28
3. (БАЦ № 7)	5	3,00 ± 0,03	9,41 ± 1,05
4. (БАЦ № 11)	5	5,19 ± 0,21***	15,47 ± 2,21*
5. (БАЦ № 41)	5	3,85 ± 0,22*	7,98 ± 0,13
6. (БАЦ № 44)	5	4,96 ± 0,11***	9,85 ± 1,15

Различия статистически достоверны по сравнению с контролем: *- р < 0,05; *** - р < 0,001

Уровень норадреналина в крови опытных животных вырос в среднем по пяти группам на 28,6% при достоверных (р< 0,05) различиях относительно контрольной группы. Наибольшее влияние на уровень норадреналина оказала стимуляция БАЦ №11. Примерно одинаковое влияние на количество этого гормона оказало воздействие на БАЦ №5, №7 и №44. Увеличение количества норадреналина в крови опытных свиноматок установлено на 23,5%, 25,1% и 28,5% соответственно. Однако не отмечается достоверности различий относительно контрольной группы. Соотношение уровня норадреналина в крови животных установлено как: №11>№44>№7>№5>№41. В целом, наиболее заметное влияние на уровень адреналина и норадреналина в крови оказало блокирование поверхностно локализованных биологически активных центров №11 и №44. Наименьшее влияние на уровень этих гормонов в крови оказало воздействие на БАЦ №41.

Далее был изучен уровень кортизола, как наиболее физиологически активного глюкокортикоидного гормона, воздействующего на липидный, белковый и углеводный метаболизмы, и прогестерона, имеющего самостоятельное физиологическое значение и, наряду с этим, являющегося важным промежуточным продуктом при синтезе других стероидных гормонов (таблица 4).

Таблица 4 - Влияние атропиновой стимуляции системы биологически активных центров свиноматок на уровень прогестерона и кортизола в крови, М ± т

Номер группы	Кол-во животных, голов	Прогестерон, нг/мл	Кортизол, нмоль/л
1. Контроль	5	6,46 ± 0,29	90,46 ± 1,50
2. (БАЦ № 5)	5	6,98 ± 0,96	101,56 ± 2,81*
3. (БАЦ № 7)	5	6,93 ± 0,12	92,12 ± 1,54
4. (БАЦ № 11)	5	7,64 ± 0,16*	112,86 ± 2,50***
5. (БАЦ № 41)	5	7,14 ± 1,13	97,62 ± 1,82*
6. (БАЦ № 44)	5	8,22 ± 1,12	101,60 ± 2,52*

Различия статистически достоверны по сравнению с контролем: *- р < 0,05; *** - р < 0,001

Установлено, что в результате атропинового блокирования БАЦ №11 произошло достоверное ( р < 0,05) увеличение уровня прогестерона в среднем на 15% относительно контрольной группы. По-видимому, это связано с более активной реализацией механизмов, связанных с процессами оплодотворения, образования белковой оболочки яйцеклетки и создания условий для имплантации, вследствие атропиновой стимуляции системы БАЦ. Уровень кортизола в крови опытных животных увеличился в среднем по пяти группам на 10,1%. Максимальное повышение уровня кортизола установлено при стимуляции БАЦ №5, №11 и №44. Увеличение количества кортизола произошло на 10,9%, 19,8% и 10,9% соответственно при высокодостоверных (р< 0,01) различиях относительно контрольной группы. Соотношение уровня кортизола в крови установлено как: №11>№44>№5>№41>№7.

Выводы . На основании исследований можно сделать заключение о том, что в результате атропинового блокирования происходит усиление активности системы биологически активных центров свиней, вследствие чего повышается уровень общей реактивности организма, что отражается на картине крови, в том числе периферической. Установленное повышение уровня гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов и лимфоцитов свидетельствует о мобилизации энергетических ресурсов, усилении внутриклеточного обмена, бактерицидной и фагоцитарной активности клеточных элементов. На основании биохимических исследований можно сделать вывод о том, что атропиновое воздействие на систему БАЦ активизирует ряд жизненно важных функций, связанных с участием а- и в- глобулинов в транспортировке липидов, стероидных гормонов, витаминов, а также выполнении Y-глобулинами защитных функций, являясь факторами специфического и неспецифического иммунитета.

Повышение секреции катехоламинов мозговым слоем надпочечников, вследствие атропинового воздействия свидетельствует об активации гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы, что создаёт возможность быстрого перехода организма от состояния покоя к возбуждению.

Таким образом, атропиновое воздействие на систему биологически активных центров свиней способствует переходу организма на новый гомеостатический уровень и поддержанию стрессорных возможностей и реактивности организма в целом, что возможно использовать при разведении свиней в условиях промышленных комплексов, характеризующихся большим количеством стресс-факторов, действующих на животных.

НОВЫ Е СПОСОБЫ ПОДГОТОВКИ САМЦОВ - ПРОБНИКОВ И ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЕ В КАЧЕСТВЕ « БИОЛОГИЧЕСКИХ СТИМУЛЯТОРОВ »

Рассматриваются способы подготовки самцов - пробников , которых мож но использовать как для выявления половой охоты , так и для биологической стимуляции половой функции у самок .

Состояние половой функции у животных зависит от многих факторов, к которым можно отнести наследственность , условия содержания, кормление, период года, инсоляцию и другие. Для самки важным раздражающим фактором является самец, который оказывает стимулирующее влияние на её репродуктивную систему. Известно, что дозированный контакт самок с самцами повышает у самок функциональную активность аденогипофиза и яичников, усиливает секрецию желёз слизистой оболочки матки, положительно влияет на рост и развитие репродуктивных органов в целом . В свою очередь длительное раздельное содержание самок и самцов отрицательно сказывается на половой функции, у самок задерживается наступление полового созревания, плохо проявляются феномены стадии возбуждения полового цикла. Учитывая это, животноводы-практики используют самцов-пробников не только для выявления половой охоты, но и стимуляции у самок половой функции.

В настоящее время существует много способов подготовки самцов-пробников. Наиболее известные из них – вазэктомия, отведение полового члена «в сторону», сшивание S-образного изгиба полового члена. (В.С. Ш ипилов, 1977). Эти способы имеют как положительные , так и отрицательные стороны. Так

Ways of preparation of males-samplers which can be used both for revealing of sexual hunting and for biological stimulation of sexual function at females are stated.

одни из способов сложные в исполнении и часто сопровождаются осложнениями, другие малоэффективны. Например, сшивание S-образного изгиба вызывает при эрекции полового члена болезненные ощущения у самцов, что приводит к ослаблению полового рефлекса, а при отведении полового члена «в сторону» многие пробники «приспосабливаются» и осуществляют половой акт в боковом положении.

Учитывая вышеизложенное, нами были разработаны новые способы подготовки пробников, которые прошли производственные испытания и получили положительную оценку.

Для подготовки быка–пробника использовали модифицированный нами способ вазектомии (патент на изобретение №2314063). С этой целью подбирали хорошо развитого бычка и готовили его к операции с соблюдением общепринятых правил хирургии. После повала и фиксации быка в боковом положении, мыли место операционного поля дезинфицирующим раствором , протирали насухо и дважды обрабатывали 5%-ной настойкой йода. Затем рассекали кожу в области шейки мошонки, мускульно-эластическую оболочку, фасцию и общую влагалищную оболочку. Подтягивали к раневому отверстию семенник и в области головки придатка перпендикулярно

Вестник

№ 2(23)

ОрелГАУ

апрель

Теоретический и научно - практический журнал . Основан в 2005 году

Учредитель и издатель : Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования « Орловский государственный аграрный Университет »

Редакционный совет: Парахин Н . В . (председатель) Амелин А . В . (зам. председателя) Астахов С . М .

Белкин Б . Л .

Блажнов А . А .

Брыкля О . А .

Буяров В . С .

Гуляева Т . И .

Гурин А . Г .

Гущина Т . В .

Дегтярев М . Г .

Зотиков В . И .

Иващук О . А .

Козлов А . С .

Кузнецов Ю . А .

Лобков В . Т .

Лысенко Н . Н .

Ляшук Р . Н .

Мамаев А . В .

Масалов В . Н .

Новикова Н . Е .

Павловская Н . Е .

Попова О . В .

Прока Н . И .

Савкин В . И .

Степанова Л . П .

Хромов В . Н .

Ш ендаков А . И . (ответств . секретарь) Ермакова Н . Л . (редактор)

Адрес редакции: 302019, г. Орел, ул. Генерала Родина, 69.

Тел ефо н: (4862)454037

Свидетельство о регистрации ПИ №ФС77–21514 от 11.07. 2005 г.

Технический редактор Мосина А.И.

Сдано в набор 02.04.2010

Подписано в печать 23.04.2010 Формат 60х84/8. Бумага офсетная.

Гарнитура Таймс.

Объём 12,5 усл. печ. л. Тираж 300 экз. Издательство Орел ГАУ, 302028, г. Орел, бульвар Победы, 19.

Лицензия ЛР№021325 от 23.02.1999 г.

Ж урнал рекомендован ВАК Минобрнауки России для публикаций научных работ, отражающих основное научное содержание кандидатских и докторских диссертаций

Содерж ание номераНаучное обеспечение развития вы сокотехнологичны х сфер ж ивотноводства

Сальникова И . Н . Особенности и тенденции развития воспроизводственного потенциала отрасли животноводства в Орловской области ………………………………………………...……... 2

Буяров В.С., Крайс В.В.,  Буяров А.В., Миронов Д.С., Беленихин В.А. Эффективность современных технологий производства мяса бройлеров и практика их внедрения…….…………. 7

Ш ендаков А . И . Комплексный анализ результатов селекции молочного скота в Орловской области …………………………………………………………………………….…………………….. 16

Мошкина С . В ., Козлов А . С . Научное обоснование кормления высокопродуктивного молочного скота ………………………………………………………………………………………… 22

Феофилова Ю . Б ., Козлов А . С . Влияние режима скармливания кормов коровам на количественный состав микроорганизмов симбионтов рубца ………………………………………. 24

Михеева Е . А ., Масалов В . Н . Иммунохимические реакции организма крупного рогатого скота под влиянием антигенов в разных радиационных зонах ………………………………………….…. 26

Зулев Г . С . Изменение концентрации общих липидов в крови телят под влиянием разных доз препарата « Эмицидин »…………………………………………………………………………….…… 28

Ляшук Р . Н . , Ш ендаков А . И . , Сурженков А . В . Селекционно - генетический потенциал импортированного молочного скота ………………………………………………………………..…. 30

Лещуков К . А ., Мамаев А . В . Гемогормональный статус организма свиней при стимуляции компенсаторно - адаптационных реакций ……………………………………………………..……….. 32

Масалов В . Н ., Сеин О . Б ., Сеин Д . О . Новые способы подготовки самцов - пробников и их использование в качестве « биологических стимуляторов »………………………………….………. 36

Мосягин В . В ., Максимов В . И ., Фурман Ю . В . Особенность АТФаз ядерных и цитоплазматических мембран эритроцитов цыплят - бройлеров …………………………………….. 39

Горлов И . Ф ., Емельянов А . А ., Ш алимова О . А ., Козлова Т . А ., Киреева О . С ., Стромская И . Я .

Разработка состава съедобных пищевых плёнок и исследование фрактальных свойств дистиллятов плодовых и ягодных культур в технологии производства мясных продуктов …….… 42

Крюков В . И . Основные положения теории управления биологическими системами в генетическом мониторинге …………………………………………………………………………….. 46

Инновации в растениеводстве

Козлов Ю . В ., Самсонова Н . Е ., Новикова Н . Е . Сравнительная оценка Мивала - Агро , брассиностероидных препаратов и протравителя семян при выращивании яровых зерновых на дерново - подзолистой почве …………………………………………………………………….……… 54

Овсиенко С . М . Биостимуляторы – резерв повышения продуктивности яровой пшеницы …….… 59

Воронкова М . В ., Павловская Н . Е . Оценка эффективности использования биологически активных компонентов растений в защите картофеля от колорадского жука (leptinotarsa decemlineata Say)…………………………………………………………………………………...…… 62

Петелько А . И ., Богачёва О . В . Влияние природных факторов на сток талых вод в центральном

Нечерноземье ……………………………………………………………………………………………. 65

Интродукция и зелёное строительство

Волчанская А . В ., Фирсов Г . А ., Лаврентьев Н . В . Клён японский (Acer japonicum Thunb.)

в Санкт - Петербурге …………………………………………………………………………...………… 68

Дубовицкая О . Ю ., Золотарева Е . В . Красивоцветущие деревья и кустарники для озеленения объектов малоэтажного строительства …………………………………………………...…………… 72

Соверш енствование экономических механизмов развития аграрного сектора

Клевцов С . М ., Сафронов В . В ., Клевцова М . Г . Региональный лизинговый потенциал для отраслей АПК : исследование и анализ …………………………………………………..……………. 77

Ш алимов Д . В . Роль государственной поддержки кадрового потенциала АПК ………...…………. 82

Бердник - Бердыченко Е . Е ., Алейнова М . В . Основы современного подхода к управлению предприятием ……………………………………………………………………………………………. 87

Суворова С . П ., Ханенко М . Е ., Панкратова Л . А . Принципы организации внутреннего аудита .. 91

Скрипка В . Н ., Мельникова Е . В . Совершенствование порядка ведения расчетов по принятым обязательствам в бюджетном учете ……………………………………………...……………………. 95