Геномный и фенотипический потенциал антимикробной активности штамма бактерии Bacillus megaterium В-4801
Автор: Лаптев Г.Ю., Йылдырым Е.А., Дуняшев Т.П., Ильина Л.А., Тюрина Д.Г., Филиппова В.А., Бражник Е.А., Тарлавин Н.В., Дубровин А.В., Новикова Н.И., Меликиди В.Х., Биконя С.Н.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Ветеринарная микробиология
Статья в выпуске: 4 т.55, 2020 года.
Бесплатный доступ
Генетические детерминанты штаммов бактерий Bacillus sp., определяющие возможность биосинтеза разнообразных антимикробных соединений, представляют особый научный интерес, поскольку благодаря им эти микроорганизмы нашли широкое применение в качестве основы пробиотиков. Важный этап системного анализа механизмов пробиотического действия, в частности антимикробной активности микроорганизмов, - реконструкция его метаболической карты, то есть сбор и визуализация всех потенциально возможных процессов в клетке. В представленной работе впервые описаны потенциально заложенные генетические механизмы синтеза ряда биологически активных веществ у выделенного нами ранее штамма бактерии Bacillus megaterium В-4801, в частности возможность синтезировать каносамин - бактериоцин, относящийся к группе аминогликозидов, который может выполнять важную роль в реализации пробиотических свойств благодаря выраженной антимикробной активности. Нашей целью было изучение антимикробной активности штамма Bacillus megaterium В-4801 в отношении патогенных и условно-патогенных бактерий, а также поиск генов, связанных с антимикробной активностью, на основе полногеномного секвенирования. Штамм B. megaterium В-4801, депонированный в коллекции ООО «БИОТРОФ+», обладает выраженной пробиотической активностью. Антимикробную активность в отношении Staphylococcus aureus , Candida tropicalis , Clostridium sp., Escherichia coli оценивали методом отсроченного антагонизма (метод «колодцев»). Библиотеку ДНК для полногеномного секвенирования готовили с помощью набора Nextera XT («Illumina, Inc.», США). Нуклеотидные последовательности определяли с использованием прибора MiSeq («Illumina, Inc.», США) и комплекта реактивов MiSeq Reagent Kit v3 (300-cycle) («Illumina, Inc.», США). Недостоверные последовательности и адаптеры удаляли с помощью программы Trimmomatic-0.38. Отфильтрованные по длине не менее от 50 до 150 п.н. парноконцевые последовательности собирали de novo с использованием геномного сборщика SPAdes-3.11.1. Функциональную аннотацию генома проводили в программах PROKKA 1.12 и RAST 2.0. Оценку пула генов, связанных с антимикробной активностью, и построение метаболической карты выполняли с помощью базы данных KEGG Pathway (http://www.genome.jp/kegg/). Культуральными методами была выявлена антагонистическая активность B. megaterium В-4801 в отношении патогенных и условно-патогенных микроорганизмов. Зоны задержки роста тест-штаммов составляли от 2±0,15 до 25±1,4 мм. Геном штамма B. megaterium В-4801 был представлен одной кольцевой хромосомой размером 6 113 972 п.н., содержащей 37,5 % ГЦ-пар. Показано, что более 45 % генов B. megaterium В-4801 вовлечены в функции транспорта и метаболизма аминокислот, транскрипции, трансляции, транспорта и метаболизма углеводов, белков. Определены ключевые генетические локусы, детерминирующие синтез антимикробных метаболитов. В составе генома секвенированного штамма локализованы гены ( FabD , FabF , FabG , FabZ , FabI и др.), связанные с продукцией белков, участвующих в синтезе алифатических ненасыщенных карбоновых кислот с числом углеродных атомов от 3 до 18, в частности масляной, капроновой, каприловой, каприновой, лауриновой, миристиновой, пальмитиновой, стеариновой, олеиновой. Согласно имеющимся сведениям, все эти вещества обладают выраженными антимикробными свойствами. Кроме того, нами обнаружен целый кластер генов ( Asm22-24 , Asm43-45 , Asm47 ), связанных с биосинтезом бактериоцина каносамина, который относится к группе аминогликозидов, а также поликетидных ансамициновых антибиотиков из группы макролидов. Установленный пробиотический потенциал свидетельствует о роли исследованного штамма как потенциального кандидата в качестве основы для пробиотиков, в том числе для использования в животноводстве. Проведенный геномный анализ выявил новые системы оперонов, контролирующих метаболические пути синтеза антимикробных веществ, ранее не описанные для B. megaterium .
Полногеномное секвенирование, биосинтез жирных кислот, бактериоцины, антимикробная активность, каносамин, ансамициновые антибиотики, пробиотики
Короткий адрес: https://sciup.org/142226337
IDR: 142226337 | DOI: 10.15389/agrobiology.2020.4.816rus
Список литературы Геномный и фенотипический потенциал антимикробной активности штамма бактерии Bacillus megaterium В-4801
- Hong H.A., Duc L.H., Cutting S.M. The use of bacterial spore formers as probiotics. FEMS Microbiology Reviews, 2010, 29(4): 813-835 ( ). DOI: 10.1016/j.femsre.2004.12.001
- Ильина Л.А. Изучение микрофлоры рубца крупного рогатого скота на основе молекулярно-биологического метода T-RFLP с целью разработки способов ее оптимизации. Канд. дис. СПб, 2012.
- Caulier S., Nannan C., Gillis A., Licciardi F., Bragard C., Mahillon J. Overview of the antimicrobial compounds produced by members of the Bacillus subtilis. Frontiers in Microbiology, 2019, 10: 302 ( ). DOI: 10.3389/fmicb.2019.00302
- Stein T. Bacillus subtilis antibiotics: structures, syntheses and specific functions. Molecular Microbiology, 2005, 56(4): 845-857 ( ). DOI: 10.1111/j.1365-2958.2005.04587.x
- Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. What's in a name? Class distinction for bacteriocins. Nature Reviews Microbiology, 2006, 4(2): 160 ( ). DOI: 10.1038/nrmicro1273-c2
- Gabrielsen C., Brede D.A., Nes I.F., Diep D.B. Circular bacteriocins: biosynthesis and mode of action. Applied and Environmental Microbiology, 2014, 80(22): 6854-6862 ( ).
- DOI: 10.1128/AEM.02284-14
- Begley M., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. Identification of a novel two-peptide lantibiotic, lichenicidin, following rational genome mining for LanM proteins. Applied and Environmental Microbiology, 2009, 75(17): 5451-5460 ( ).
- DOI: 10.1128/AEM.00730-09
- Saising J., Dube L., Ziebandt A.-K., Voravuthikunchai S.P., Nega M., Götz F. Activity of gallidermin on Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2012, 56(11): 5804-5810 ( ).
- DOI: 10.1128/AAC.01296-12
- Field D., Cotter P.D., Hill C., Ross R.P. Bioengineering lantibiotics for therapeutic success. Frontiers in Microbiology, 2015, 6: 1363 ( ).
- DOI: 10.3389/fmicb.2015.01363
- Abriouel H., Franz C.M., Ben Omar N., Gálvez A. Diversity and applications of Bacillus bacteriocins. FEMS Microbiology Reviews, 2011, 35(1): 201-232 ( ).
- DOI: 10.1111/j.1574-6976.2010.00244.x
- Poudel P., Tashiro Y., Miyamoto H., Miyamoto H., Okugawa Y., Sakai K. Direct starch fermentation to L-lactic acid by a newly isolated thermophilic strain, Bacillus sp. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 2015, 42: 143-149 ( ).
- DOI: 10.1007/s10295-014-1534-0
- Alakomi H.L., Skyttä E., Saarela M., Mattila-Sandholm T., Latva-Kala K., Helander I.M. Lactic acid permeabilizes gram-negative bacteria by disrupting the outer membrane. Applied and Environmental Microbiology, 2000, 66(5): 2001-2005 ( ).
- DOI: 10.1128/aem.66.5.2001-2005.2000
- Ortiz A., Sansinenea E. Succinic acid production as secondary metabolite from Bacillus megaterium ELI24. The Natural Products Journal, 2020, 10(2): 154-157 ( ).
- DOI: 10.2174/2210315509666190410153811
- Chuanqing Z., Jiang A.U., Huang A., Qi W. Cao X. Guangxiang studies on the acid-production characteristics of Bacillus megaterium strain P17. AIP Conference Proceedings, 2017, 1839(1): 020054 ( ).
- DOI: 10.1063/1.4982419
- Li P., Tian W., Jiang Z., Liang Z., Wu X., Du B. Genomic characterization and probiotic potency of Bacillus sp. DU-106, a highly effective producer of L-lactic acid isolated from fermented yogurt. Frontiers in Microbiology, 2018, 9: 2216 ( ).
- DOI: 10.3389/fmicb.2018.02216
- Khatri I., Sharma G., Subramanian S. Composite genome sequence of Bacillus clausii, a probiotic commercially available as Enterogermina®, and insights into its probiotic properties. BMC Microbiology, 2019, 19(1): 307 ( ).
- DOI: 10.1186/s12866-019-1680-7
- Eppinger M., Boyke B., Mitrick A.J., Janaka N.E., Kirthi K.K., Koenig S.S.K., Creasy H.H., Rosovitz M.J., Riley D.R., Daugherty S., Martin M., Elbourne L.D.H., Paulsen I., Biedendieck R., Braun C., Grayburn S., Dhingra S., Lukyanchuk V., Ball B., Ul-Qamar R., Seibel J., Bremer E., Jahn D., Ravel J., Vary P.S. Genome sequences of the biotechnologically important Bacillus megaterium strains QM B1551 and DSM319. Journal of Bacteriology, 2011, 193(16): 4199-4213 ( ).
- DOI: 10.1128/JB.00449-11
- Vílchez J.I., Tang Q., Kaushal R., Wang W., Suhui L., Danxia H., Zhaoqing C., Heng Z., Renyi L., Huiming Z. Complete genome sequence of Bacillus megaterium strain TG1-E1, a plant drought tolerance-enhancing bacterium. Microbiology Resource Announcements, 2018, 7(12): e00842-18 ( ).
- DOI: 10.1128/MRA.00842-18
- Liu L., Li Y., Zhang J., Zou W., Zhou Z., Liu J., Li X., Wang L., Chen J. Complete genome sequence of the industrial strain Bacillus megaterium WSH-002. Journal of Bacteriology, 2011, 193(22): 6389-6390 ( ).
- DOI: 10.1128/JB.06066-11
- Bolger A.M., Lohse M., Usadel B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics, 2014, 30(15): 2114-2120 ( ).
- DOI: 10.1093/bioinformatics/btu170
- Nurk S., Bankevich A., Antipov D., Gurevich A., Korobeynikov A., Lapidus A., Prjibelsky A., Pyshkin A., Sirotkin A., Sirotkin Y., Stepanauskas R., McLean J., Lasken R., Clingenpeel S.R., Woyke T., Tesler G., Alekseyev M.A., Pevzner P.A. Assembling genomes and mini-metagenomes from highly chimeric reads. In: Research in Computational Molecular Biology. RECOMB 2013. Lecture Notes in Computer Science, vol. 7821. Springer, Berlin, Heidelberg, 2013: 158-170 ( ).
- DOI: 10.1007/978-3-642-37195-0_13
- Seemann T. Prokka: rapid prokaryotic genome annotation. Bioinformatics, 2014, 30(14): 2068-2069 ( ).
- DOI: 10.1093/bioinformatics/btu153
- Aziz R.K. The RAST server: rapid annotations using subsystems technology. BMC Genomics, 2008, 9(75) ( ).
- DOI: 10.1186/1471-2164-9-75
- Kanehisa M., Goto S. KEGG: Kyoto encyclopedia of genes and genomes. Nucleic Acids Research, 2000, 28(1): 27-30 ( ).
- DOI: 10.1093/nar/28.1.27
- Kanehisa M., Goto S., Sato Y., Furumichi, M. Tanabe M. KEGG for integration and interpretation of large-scale molecular datasets. Nucleic Acids Research, 2012, 40(D1): D109-D114 ( ).
- DOI: 10.1093/nar/gkr988
- Boss R., Cosandey A., Luini M., Artursson K., Bardiau M., Breitenwieser F., Hehenberger E., Lam Th., Mansfeld M., Michel A., Mösslacher G., Naskova J., Nelson S., Podpečan O., Raemy A., Ryan E., Salat O., Zangerl P., Steiner A., Graber H.U. Bovine Staphylococcus aureus: Subtyping, evolution, and zoonotic transfer. Journal of Dairy Science, 2016, 99(1): 515-528 ( ).
- DOI: 10.3168/jds.2015-9589
- Loken K.I., Thompson E.S., Hoyt H.H., Ball R.A. Infection of the bovine udder with Candida tropicalis. Journal of the American Veterinary Medical Association, 1959, 134(9): 401-403.
- Wohlgemuth K., Knudtson W. Bovine abortion associated with Candida tropicalis. Journal of the American Veterinary Medical Association, 1973, 162(6): 460-461.
- Porwal S., Lal S., Cheema S., Kalia V.C. Phylogeny in aid of the present and novel microbial lineages: diversity in Bacillus. PLoS ONE, 2009, 4(2): e4438 ( ).
- DOI: 10.1371/journal.pone.0004438
- Ondov B.D., Treangen T.J., Melsted P., Mallonee A.B., Bergman N.H., Koren S., Phillippy A.M. Mash: fast genome and metagenome distance estimation using MinHash. Genome Biology, 2016, 17: 132 ( ).
- DOI: 10.1186/s13059-016-0997-x
- Wattam A.R., Davis J.J., Assaf R., Boisvert S., Brettin T., Bun C., Conrad N., Dietrich E.M., Disz T., Gabbard J.L., Gerdes S., Henry C.S., Kenyon R.W., Machi D., Mao C., Nordberg E.K., Olsen G.J., Murphy-Olson D.E., Olson R., Overbeek R., Parrello B., Pusch G.D., Shukla M., Vonstein V., Warren A., Xia F., Yoo H., Stevens R.L. Improvements to PATRIC, the all-bacterial bioinformatics database and analysis resource center. Nucleic Acids Research, 2017, 45(D1): D535-D542 ( ).
- DOI: 10.1093/nar/gkw1017
- Frye T.M., Williams S.N., Graham T.W. Vitamin deficiencies in cattle. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 1991, 7(1): 217-275 (
- DOI: 10.1016/s0749-0720(15)30817-3)
- Szafranska A.E., Hitchman T.S., Cox R.J., Crosby J., Simpson T.J. Kinetic and mechanistic analysis of the malonyl CoA:ACP transacylase from Streptomyces coelicolor indicates a single catalytically competent serine nucleophile at the active site. Biochemistry, 2002, 41(5): 1421-1427 ( ).
- DOI: 10.1021/bi012001p
- Cronan J.E., Thomas J. Bacterial fatty acid synthesis and its relationships with polyketide synthetic pathways. Methods in Enzymology, 2009, 459: 395-433 (
- DOI: 10.1016/S0076-6879(09)04617-5)
- Wang H., Cronan J.E. Functional replacement of the FabA and FabB proteins of Escherichia coli fatty acid synthesis by Enterococcus faecalis FabZ and FabF homologues. Journal of Biological Chemistry, 2004, 279(33): 34489-34495 ( ).
- DOI: 10.1074/jbc.M403874200
- Yu X., Liu T., Zhu F., Khosla C. In vitro reconstitution and steady-state analysis of the fatty acid synthase from Escherichia coli. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2011, 108(46): 18643-18648 ( ).
- DOI: 10.1073/pnas.1110852108
- Johnson S.L., Daligault H.E., Davenport K.W., Jaissle J., Frey K.G., Ladner J. T., Broomall S.M., Bishop-Lilly K.A., Bruce D.C., Gibbons H.S., Coyne S.R., Lo C.-C., Meincke L., Munk A.C., Koroleva G.I., Rosenzweig C.N., Palacios G.F., Redden C.L., Minogue T.D., Chain. P.S. Complete genome sequences for 35 biothreat assay-relevant Bacillus species. Genome Announcements, 2015, 3(2): e00151-15 ( ).
- DOI: 10.1128/genomeA.00151-15
- Kovanda L., Zhang W., Wei X., Luo J., Wu X., Atwill E.R., Vaessen S., Li X., Liu Y. In vitro antimicrobial activities of organic acids and their derivatives on several species of gram-negative and gram-positive bacteria. Molecules, 2019, 24(20): 3770 ( ).
- DOI: 10.3390/molecules24203770
- Huang C.B., Alimova Y., Myers T.M., Ebersole J.L. Short- and medium-chain fatty acids exhibit antimicrobial activity for oral microorganisms. Archives of Oral Biology, 2011, 56(7): 650-654 ( ).
- DOI: 10.1016/j.archoralbio.2011.01.011
- Prabhadevi V., Sahaya S.S., Johnson M., Venkatramani B., Janakiraman N. Phytochemical studies on Allamanda cathartica L. using GC-MS. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 2012, 2(2): S550-S554 (
- DOI: 10.1016/S2221-1691(12)60272-X)
- Rahman M.M., Ahmad S.H., Mohamed M.T., Ab Rahman M.Z. Antimicrobial compounds from leaf extracts of Jatropha curcas, Psidium guajava, and Andrographis paniculata. Scientific World Journal, 2014, 2014: 635240 ( ).
- DOI: 10.1155/2014/635240
- Umezawa S., Shibahara S., Omoto S., Takeuchi T., Umezawa H. Studies on the biosynthesis of 3-amino-3-deoxy-D-glucose. The Journal of Antibiotics, 1968, 21(8): 485-491 ( ).
- DOI: 10.7164/antibiotics.21.485
- Milner J.L., Silo-Suh L., Lee J.C., He H., Clardy J., Handelsman J. Production of kanosamine by Bacillus cereus UW85. Applied and Environmental Microbiology, 1996, 62(8): 3061-3065.
- Kevany B.M., Rasko D.A., Thomas M.G. Characterization of the complete zwittermicin A biosynthesis gene cluster from Bacillus cereus. Applied and Environmental Microbiology, 2009, 75(4): 1144-1155 ( ).
- DOI: 10.1128/AEM.02518-08
- Vetter N.D., Langill D.M., Anjum S., Boisvert-Martel J., Jagdhane R.C., Omene E., Zheng H., van Straaten K.E., Asiamah I., Krol E.S., Sanders D.A., Palmer D.R. A previously unrecognized kanosamine biosynthesis pathway in Bacillus subtilis. Journal of the American Chemical Society, 2013, 135(16): 5970-5973 ( ).
- DOI: 10.1021/ja4010255
- Arakawa K., Müller R., Mahmud T., Yu T.W., Floss H.G. Characterization of the early stage aminoshikimate pathway in the formation of 3-amino-5-hydroxybenzoic acid: the RifN protein specifically converts kanosamine into kanosamine 6-phosphate. Journal of the American Chemical Society, 2002, 124(36): 10644-10645 ( ).
- DOI: 10.1021/ja0206339
- Kim W.-G., Song N.-K., Yoo I.-D. Trienomycin G, a new inhibitor of nitric oxide production in microglia cells, from Streptomyces sp. 91614. The Journal of Antibiotics, 2002, 55(2): 204-207 ( ).
- DOI: 10.7164/antibiotics.55.204
- Kang Q., Shen Y., Bai L. Biosynthesis of 3,5-AHBA-derived natural products. Natural Product Reports, 2012, 29: 243-263 ( ).
- DOI: 10.1039/C2NP00019A
- Wrona I.E., Agouridas V., Panek J.S. Design and synthesis of ansamycin antibiotics. Comptes Rendus Chimie, 2008, 11: 1483-1522 ( ).
- DOI: 10.1016/j.crci.2008.07.003
- Yu T.W., Bai L., Clade D., Hoffmann D., Toelzer S., Trinh K.Q., Xu J., Moss S.J., Leistner E., Floss H.G. The biosynthetic gene cluster of the maytansinoid antitumor agent ansamitocin from Actinosynnema pretiosum. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2002, 99(12): 7968-7973 ( ).
- DOI: 10.1073/pnas.092697199
- Khatri I., Sharma G., Subramanian S. Composite genome sequence of Bacillus clausii, a probiotic commercially available as Enterogermina®, and insights into its probiotic properties. BMC Microbiology, 2019, 19(1): 307 ( ).
- DOI: 10.1186/s12866-019-1680-7
- Al-Thubiani A.S.A., Maher Y.A., Fathi A., Abourehab M.A.S., Alarjah M., Khan M.S.A., Al-Ghamdi S.B. Identification and characterization of a novel antimicrobial peptide compound produced by Bacillus megaterium strain isolated from oral microflora. Saudi Pharmaceutical Journal, 2018, 26(8): 1089-1097 ( ).
- DOI: 10.1016/j.jsps.2018.05.019
- Malanicheva I.A., Kozlov D.G., Sumarukova I.G., Efremenkova O.V., Zenkova V.A., Katrukha G.S., Reznikova M.I., Tarasova O.D., Sineokiĭ S.P., Él'-Registan G.I. Antimicrobial activity of Bacillus megaterium strains. Microbiology, 2012, 81: 178-185 ( ).
- DOI: 10.1134/S0026261712020063